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HCLS1抗体的应用

发布日期:2024/8/12 9:03:46

背景[1-3]

HCLS1抗体也称为造血细胞特异性Lyn底物1(hematopoietic cell-specific Lyn substrate 1)抗体,是针对HCLS1蛋白的一种特异性抗体。HCLS1蛋白在造血干细胞和其他血液细胞中表达,并可能在细胞信号传导和细胞骨架重排中发挥作用。以下是关于HCLS1抗体的详细介绍:

HCLS1抗体.png

HCLS1抗体

抗原识别:HCLS1抗体特异性地识别并结合HCLS1蛋白。

类型:根据制备方法和来源,HCLS1抗体可分为多克隆抗体和单克隆抗体。多克隆抗体通常由多个B细胞克隆产生,具有较广泛的抗原结合能力;而单克隆抗体则由单一B细胞克隆产生,具有高度的特异性和均一性。

浓度与保存:HCLS1抗体的浓度通常较高,如1mg/ml,并建议贮存于-20℃以下的环境中以保持其活性和稳定性。保存时,应避免反复冻融和长时间暴露于高温或强光环境中。

科研实验:HCLS1抗二、应用领域

体在生物医学研究中具有广泛应用,特别是在探究HCLS1蛋白在造血干细胞和其他血液细胞中的功能、相互作用以及疾病发生机制等方面。

临床诊断:虽然HCLS1抗体在临床诊断中的直接应用可能较少,但其研究结果可能为相关疾病的诊断和治疗提供重要线索。

Western Blotting(WB):HCLS1抗体可用于Western Blotting实验,以检测样品中HCLS1蛋白的存在和表达水平。在实验过程中,需要注意抗体的稀释比例、孵育时间和温度等条件。

Immunohistochemistry(IHC):在免疫组织化学实验中,HCLS1抗体可用于定位组织切片中HCLS1蛋白的分布和表达情况。这有助于研究HCLS1蛋白在特定组织或细胞类型中的功能。

Immunofluorescence(IF):通过免疫荧光技术,HCLS1抗体可结合荧光标记物,用于观察活细胞或固定细胞中HCLS1蛋白的实时动态和定位。这种方法对于研究HCLS1蛋白在细胞内的分布和功能具有重要意义。

应用[4][5]

HCLS1抗体可以用于视神经脊髓炎和多发性硬化症外周血生物学标志物的筛选与鉴定&Thorase调控蛋白的鉴定

研究NMO患者和MS患者血清中的自身抗体,鉴定新的疾病特异性自身抗体,对我们理解这两种疾病的起因、病程变化以及在疾病的诊断和个体化治疗等方面具有重大意义。

本研究采用了17K人源重组蛋白高通量蛋白芯片技术对15例NMO患者和15例MS患者进行了血清自身抗体的筛查,同时以15例健康人(healthy control,HC)血清作为对照。三组中每5人的血清分为一个小组,样本混合后用一张蛋白芯片检测。MS患者血清中共筛出27种自身抗体,SLC16A4、NOL3和DTX1的自身抗体在三次蛋白芯片检测中重复检出了两次。通过对这些自身抗体对应蛋白的聚类分析发现,MS血清中自身抗体主要针对神经相关的蛋白质。NMO患者血清中共筛选出26类自身抗体,其中针对AGO1、PRKRA自身抗体在其中三次蛋白芯片检测出,而HCLS1抗体、NOL3在其中两次检测出。聚类分析结果显示这些自身抗体主要针对核蛋白,与细胞选择性剪切和RNA沉默有关。通过蛋白质印迹对蛋白芯片结果进行验证,发现抗AGO1(Argonaute1)自身抗体有望作为临床诊断NMO的血清标志物。索瑞酶(Thorase)属于AAA+(ATPases Associated with diverse cellularActivities,AAA)ATP水解酶家族成员,是通过一种功能性筛选策略发现的对神经元具有保护作用的新蛋白。Thorase基因敲除(knockout,KO)小鼠在25-30天高死亡率的原因未知。前期实验结果显示Thorase与375种蛋白质可能存在相互作用,但并不清楚在小鼠体内Thorase敲除究竟影响哪些蛋白。在这部分研究中,采用定量TMT蛋白质谱分析Thorase前脑条件性敲除(cKO)小鼠的前脑蛋白组与野生型(WT)小鼠的差异,为下一步研究Thorase的功能奠定基础。18种蛋白在cKO和WT小鼠前脑中存在表达差异。由于胶质纤维酸性蛋白(Glial Fibrillary Acidic Protein,GFAP)蛋白在神经系统炎症反应方面发挥重要的角色,我们选择验证GFAP蛋白。

HCLS1抗体免疫组化结果显示Thorase KO小鼠在中枢神经系统中表达量提高。GFAP主要表达于星形胶质细胞,免疫组化分析显示在Thorase KO小鼠的丘脑及纹状体存在大量活化星形胶质细胞浸润的现象。结果提示Thorase在星形胶质细胞活化和中枢系统炎症的调控中扮演着重要的角色。

参考文献

[1]Neuromyelitis optica spectrum disorders:comparison of clinical and magnetic resonance imaging characteristics of AQP4‐IgG versus MOG‐IgG seropositive cases in the Netherlands[J].E.D.Pelt;;Y.Y.M.Wong;;I.A.Ketelslegers;;D.Hamann;;R.Q.Hintzen.Eur J Neurol,2016(3)

[2]Increased occurrence of anti-AQP4 seropositivity and unique HLA Class II associations with neuromyelitis optica(NMO),among Muslim Arabs in Israel[J].Livnat Brill;;Micha Mandel;;Dimitrios Karussis;;Panayiota Petrou;;Keren Miller;;Tamir Ben-Hur;;Arnon Karni;;Ora Paltiel;;Shoshana Israel;;Adi Vaknin-Dembinsky.Journal of Neuroimmunology,2016

[3]Expression of DNA methylation genes in secondary progressive multiple sclerosis[J].Paolo Fagone;;Katia Mangano;;Roberto Di Marco;;Chafia Touil-Boukoffa;;Tinatin Chikovan;;Santo Signorelli;;Giuseppe A.G.Lombardo;;Francesco Patti;;Santa Mammana;;Ferdinando Nicoletti.Journal of Neuroimmunology,2016

[4]An investigation into the association between HLA-G 14bp insertion/deletion polymorphism and multiple sclerosis susceptibility[J].Nabiallah Mohammadi;;Minoo Adib;;Fereshteh Alsahebfosoul;;Mohammad Kazemi;;Masoud Etemadifar.Journal of Neuroimmunology,2016

[5]周瑜.视神经脊髓炎和多发性硬化症外周血生物学标志物的筛选与鉴定&Thorase调控蛋白的鉴定[D].北京协和医学院,2016.

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