人肝内胆管癌细胞的应用
发布日期:2023/7/25 8:58:24
背景[1-3]
人肝内胆管癌细胞源自一位女性肝胆管细胞癌患者,呈上皮细胞样。HCCC-9810细胞染色体模式数为71,但其染色体数目可以在22-117的范围内变动。HCCC-9810细胞倍增时间为20.4小时;细胞内AFP、CEA和CA19-9的分泌水平低,HCCC-9810细胞在裸鼠中的成瘤率为20%。
人肝内胆管癌细胞
人肝内胆管癌细胞的培养
1)准备RPMI-1640培养基;优质胎牛血清,10%;双抗,1%。
2)人肝内胆管癌细胞培养条件:气相:空气,95%;二氧化碳,5%。温度:37摄氏度,培养箱湿度为70%-80%。
3)人肝内胆管癌细胞冻存液:90%血清,10%DMSO,现用现配。
人肝内胆管癌细胞处理:
1)冻存人肝内胆管癌细胞的复苏:
将含有1mL细胞悬液的冻存管在37℃水浴中迅速摇晃解冻,加入到含4-6mL完全培养基的离心管中混合均匀。在1000RPM条件下离心3-5min,弃去上清液,完全培养基重悬细胞。然后将细胞悬液加入含6-8ml完全培养基的培养瓶(或皿)中37℃培养过夜。第二天显微镜下观察细胞生长情况和细胞密度。
2)人肝内胆管癌细胞传代:如果细胞密度达80%-90%,即可进行传代培养。
对于贴壁细胞传代可以参考以下方法:
1.弃去培养上清,用不含钙、镁离子的PBS润洗细胞1-2次。
2.加入0.25%(w/v)胰蛋白酶-0.53mMEDTA于培养瓶中(T25瓶1-2mL,T75瓶2-3mL),置于37℃培养箱中消化1-2分钟(难消化的细胞可以适当延长消化时间),然后在显微镜下观察细胞消化情况,若细胞大部分变圆并脱落,迅速拿回操作台,轻敲几下培养瓶后加入3-4ml含10%FBS的培养基来终止消化。
3.轻轻打匀后吸出,在1000RPM条件下离心3-5min,弃去上清液,补加1-2mL培养液后吹匀。将细胞悬液按1:2的比例分到新T25瓶中,添加6-8ml按照说明书要求配置的新的完全培养基以保持细胞的生长活力,后续传代根据实际情况按1:2~1:5的比例进行。
3)人肝内胆管癌细胞冻存:收到细胞后建议在培养前3代时冻存一批细胞种子以备后续实验使用。
应用[4][5]
人肝内胆管癌细胞可以用于谷氨酰胺酶2介导MDR1表达调控肝内胆管癌细胞对5-氟尿嘧啶化疗敏感性的研究
探讨GLS2在ICC中的化疗耐药的作用及其潜在机制。
方法:首先,通过UALCN在线分析工具在生物信息数据库中检索ICC中GLS2、MDR1表达水平及两者的相关性。运用Western blot、免疫组化临床进一步验证40例ICC组织、癌旁组织GLS2和MDR1表达水平及两者相关性并分析,GLS2表达水平与临床病理因素及患者预后之间的相关性。然后,过表达RBE细胞GLS2表达,Western blot验证过表达效率。之后使用细胞计数试剂盒(CCK-8)法检测过表达GLS2细胞及NC细胞对化疗药物5-氟尿嘧啶的化疗敏感性。
最后,Western blot检测过表达GLS2的ICC细胞及NC细胞MDR1的表达,初步阐明GLS2调控ICC化疗耐药潜在分子机制。
结果:1、数据库分析结果显示在ICC癌组织中GLS2表达水平显著低于正常肝组织,而MDR1表达水平显著高于正常肝组织,并且GLS2表达与MDR1表达呈负相关。进一步Western blot和免疫组化验证,可以得到与之前一致的结果。GLS2蛋白表达与肿瘤数量、包膜、淋巴结转移、临床分期有关,GLS2表达越高,ICC患者预后越好。
2、上调RBE细胞GLS2表达后,可显著提高RBE细胞对5-氟尿嘧啶化疗敏感性。
3、上调RBE细胞GLS2表达后可显著降低MDR1表达。
结论:GLS2通过介导MDR1表达提高ICC细胞对5-氟尿嘧啶化疗敏感性化疗敏感性,并且GLS2的表达越高提示患者预后越好。
参考文献
[1]Plasma Membrane Transporters as Biomarkers and Molecular Targets in Cholangiocarcinoma.Jose J.G.Marin;;Rocio I.R.Macias;;Candela Cives-Losada;;Ana Peleteiro-Vigil;;Elisa Herraez;;Elisa Lozano;;Pietro Invernizzi;;Chiara Raggi.Cells,2020
[2]Chinese Expert Consensus on Multidisciplinary Diagnosis and Treatment of Hepatocellular Carcinoma with Portal Vein Tumor Thrombus(2018 Edition)..Cheng Shuqun;;Chen Minshan;;Cai Jianqiang;;Sun Juxian;;Guo Rongping;;Bi Xinyu;;Lau Wan Yee;;Wu Mengchao.Liver cancer,2020
[3]Physcion 8-O-β-glucopyranoside induced ferroptosis via regulating miR-103a-3p/GLS2 axis in gastric cancer.Ying Niu;;Jinping Zhang;;Yalin Tong;;Jiansheng Li;;Bingrong Liu.Life Sciences,2019
[4]Liver-Type Glutaminase GLS2 Is a Druggable Metabolic Node in Luminal-Subtype Breast Cancer.Michael J.Lukey;;Ahmad A.Cluntun;;William P.Katt;;Miao-chong J.Lin;;Joseph E.Druso;;Sekar Ramachandran;;Jon W.Erickson;;Henry H.Le;;Zhihan-Emily Wang;;Bryant Blank;;Kai Su Greene;;Richard A.Cerione.Cell Reports,2019
[5]刘康俊.谷氨酰胺酶2介导MDR1表达调控肝内胆管癌细胞对5-氟尿嘧啶化疗敏感性的研究[D].扬州大学,2020.
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