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Avasimibe(P450抑制剂)

发布日期:2020/2/12 8:19:56

背景[1-7]

Avasimibe(P450抑制剂)是是一种可口服的酰基辅酶A:胆固醇酰基转移酶(ACAT)抑制剂,IC50分别为24和9.2µM。特同时也抑制人P450同工酶CYP2C9,CYP1A2和CYP2C19,IC50分别为2.9μM,13.9μM和26.5μM。Avasimibe浓度为1μg/ml时,作用于人类单核细胞衍生的巨噬细胞(HMMs),通过在泡沫细胞形成期,抑制LDL结合和降低清除剂受体数,而降低总胆固醇(TC)和酯化胆固醇(EC)。Avasimibe浓度为2μg/ml时,与10μg/ml LDL预温育,增强胆固醇从HMM泡沫细胞中外排。

Avasimibe抑制原代猴肝脏细胞培养基中的脂蛋白(a)累积,抑制达11.9%-31.3%,这种作用存在剂量依赖性,这种改变与ApoA的降低有关。Avasimibe在浓度为10 nM,1μM,和10μM时,在HepG2细胞中温育24小时,分别使ApoB分泌到培养基中降低25%,27%,和43%。Avasimibe通过增强ApoB的细胞内降解而不是降低ApoB合成,来降低ApoB分泌。Avasimibe作用于IC-21巨噬细胞,抑制ACTC,IC50为3.3μM。Avasimibe抑制人类P450同工酶CYP2C9,CYP1A2和CYP2C19,IC50分别为2.9μM,13.9μM和26.5μM。

Avasimibe作用于胶质瘤细胞,抑制ACAT-1表达和胆固醇酯的合成。Avasimibe通过诱导细胞周期停滞和caspase-8和caspase-3激活引起的凋亡,而抑制胶质瘤细胞生长。细胞色素P450的活性位点含有血红素-铁中心。铁通过半胱氨酸硫醇盐配体与蛋白质连接。这个半胱氨酸和几个侧翼残基在已知的CYP中高度保守,并具有正式的PROSITE特征共识模式[FW]-[SGNH]-x-[GD]-{F}-[RKHPT]-{P}-C-[LIVMFAP]-[GAD]。

人类CYP主要是膜相关蛋白,位于线粒体的内膜或细胞的内质网中。CYP代谢数千种内源性和外源性化学物质。一些CYP仅代谢一种(或极少数)底物,例如CYP19(芳香酶),而其他CYP可代谢多种底物。这两个特征都是它们在医学中的核心重要性。细胞色素P450酶存在于身体的大多数组织中,并在激素合成和分解中起重要作用(包括雌激素和睾酮合成和代谢),胆固醇合成和维生素D代谢。细胞色素P450酶还可以代谢潜在的有毒化合物,包括内源性代谢的药物和产品,如胆红素,主要是肝脏。

应用[8][9]

Avasimibe(P450抑制剂)可用于高血脂的临床治疗:

胆固醇对细胞的存活至关重要,胆固醇及其代谢产物与动脉粥样硬化、癌症、神经退行性疾病等的发病机制有关。酯酰辅酶A:胆固醇酰基转移酶(ACAT)催化细胞内胆固醇的酯化,在细胞内胆固醇的稳态中发挥重要作用,是多种疾病治疗干预的药物靶点。乙酰辅酶A乙酰转移酶(ACAT),是在甲羟戊酸途径中将两个单位的乙酰-CoA转化为乙酰乙酰CoA的酶。硫解酶是普遍存在的酶,其在许多重要的生物化学途径中起关键作用,包括脂肪酸降解的β氧化途径和各种生物合成途径。

硫解酶家族成员可分为两大类:降解性硫羟化酶(EC 2.3.1.16)和生物合成硫醇酶(EC 2.3.1.9)。在真核生物和原核生物中均发现这两种不同类型的硫解酶:乙酰乙酰-CoA硫解酶(EC:2.3.1.9)和3-酮酰基-CoA硫解酶(EC:2.3.1.16)。3-酮脂酰辅酶A硫解酶(也称为硫解酶I)对其底物具有广泛的链长特异性,并参与降解途径,例如脂肪酸β-氧化。

乙酰乙酰辅酶A硫解酶(也称为硫解酶II)特异于乙酰乙酰辅酶A的硫解,并参与生物合成途径,例如β-羟基丁酸合成或类固醇生物发生。硫解酶是进化相关酶的家族。在真核生物和原核生物中发现了两种不同类型的硫解酶:乙酰乙酰辅酶A硫解酶(EC 2.3.1.9)和3-酮酰辅酶A硫解酶(EC 2.3.1.16))。3-酮脂酰辅酶A硫解酶(也称为硫解酶I)对其底物具有宽链长特异性,并参与降解途径,例如脂肪酸β-氧化。乙酰乙酰辅酶A硫解酶(也称为硫解酶II)特异于乙酰乙酰辅酶A的硫解,并参与生物合成途径,例如聚β-羟基丁酸合成或类固醇生物发生。

参考文献

[1] Thompson S,Mayerl F,Peoples OP,Masamune S,Sinskey AJ,Walsh CT(July 1989)."Mechanistic studies on beta-ketoacyl thiolase from Zoogloea ramigera:identification of the active-site nucleophile as Cys89,its mutation to Ser89,and kinetic and thermodynamic characterization of wild-type and mutant enzymes".Biochemistry.28(14):5735–42.

[2] Heath RJ,Rock CO(October 2002)."The Claisen condensation in biology".Nat Prod Rep.19(5):581–96.

[3] Haapalainen AM,Meriläinen G,Wierenga RK(January 2006)."The thiolase superfamily:condensing enzymes with diverse reaction specificities".Trends Biochem.Sci.31(1):64–71.

[4] Baker ME,Billheimer JT,Strauss JF(November 1991)."Similarity between the amino-terminal portion of mammalian 58-kD sterol carrier protein(SCPx)and Escherichia coli acetyl-CoA acyltransferase:evidence for a gene fusion in SCPx".DNA Cell Biol.10(9):695–8.

[5] Yang SY,Yang XY,Healy-Louie G,Schulz H,Elzinga M(June 1990)."Nucleotide sequence of the fadA gene.Primary structure of 3-ketoacyl-coenzyme A thiolase from Escherichia coli and the structural organization of the fadAB operon".J.Biol.Chem.265(18):10424–9.

[6] Igual JC,González-Bosch C,Dopazo J,Pérez-Ortín JE(August 1992)."Phylogenetic analysis of the thiolase family.Implications for the evolutionary origin of peroxisomes".J.Mol.Evol.35(2):147–55.

[7] Enzymatic reaction mechanisms.San Francisco:W.H.Freeman.1979.ISBN 978-0-7167-0070-8.

[8] Masamune,Satoru;Walsh,Christopher T.;Gamboni,Remo;Thompson,Stuart;Davis,Jeffrey T.;Williams,Simon F.;Peoples,Oliver P.;Sinskey,Anthony J.;Walsh,Christopher T.(1989)."Bio-Claisen condensation catalyzed by thiolase from Zoogloea ramigera.Active site cysteine residues".J.Am.Chem.Soc.111(5):1879,1991.

[9] Gilbert HF,Lennox BJ,Mossman CD,Carle WC(July 1981)."The relation of acyl transfer to the overall reaction of thiolase I from porcine heart".J.Biol.Chem.256(14):7371–7.

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