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小鼠CD19分子(CD19)ELISA KIT的应用

发布日期:2022/12/16 11:24:37

背景[1-3]

小鼠CD19分子(CD19)ELISA KIT可以检测血清、血浆、组织中CD19分子(CD19)的含量。

实验原理:本试剂盒应用双抗体夹心法测定标本中CD19分子(CD19)水平。用纯化的CD19分子(CD19)捕获抗体包被微孔板,制成固相抗体,往包被的微孔中依次加入血栓调节蛋白(TM),再与HRP标记的检测抗体结合,形成抗体-抗原-酶标抗体复合物,经过彻底洗涤后加底物TMB显色。TMB在HRP酶的催化下转化成蓝色,并在酸的作用下转化成终的黄色。颜色的深浅和样品中的血栓调节蛋白(TM)呈正相关。用酶标仪在450nm波长下测定吸光度(OD值),通过标准曲线计算样品中CD19分子(CD19)含量。

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鼠CD19分子(CD19)ELISA KIT

小鼠CD19分子(CD19)ELISA KIT操作步骤

标准品的加样:设置标准品孔和样本孔,标准品孔各加不同浓度的标准品50μL。

加样:分别设空白孔(空白对照孔不加样品及酶标试剂,其余各步操作相同)、待测样品孔。在酶标包被板上待测样品孔中先加样品稀释液40μl,然后再加待测样品10μl(样品终稀释度为5倍)。加样将样品加于酶标板孔底部,尽量不触及孔壁,轻轻晃动混匀。

加酶:每孔加入酶标试剂100μl,空白孔除外。

温育:用封板膜封板后置37℃温育60分钟。

配液:将20倍浓缩洗涤液用蒸馏水20倍稀释后备用。

洗涤:小心揭掉封板膜,弃去液体,甩干,每孔加满洗涤液,静置30秒后弃去,如此重复5次,拍干。

显色:每孔先加入显色剂A50μl,再加入显色剂B50μl,轻轻震荡混匀,37℃避光显色15分钟.

终止:每孔加终止液50μl,终止反应(此时蓝色立转黄色)。

测定:以空白孔调零,450nm波长依序测量各孔的吸光度(OD值)。测定应在加终止液后15分钟以内进行。

应用[4][5]

用于应用表达人CD19分子和luciferase的EG7细胞构建小鼠淋巴瘤模型的实验研究

为进一步明确表达抗人CD19-CAR新型效应细胞的抗肿瘤作用,阐明其直接抗肿瘤或与其他免疫细胞协同抗肿瘤的作用机制,拟构建能够稳定表达人CD19分子及用于监测肿瘤生长的luciferase的小鼠淋巴瘤EG7细胞,应用免疫功能正常的野生型C57BL/6小鼠建立淋巴瘤模型,为阐明来源于小鼠的抗人CD19-CAR-新型效应细胞在淋巴瘤中的作用及机制奠定基础。

研究方法:(1)构建含有人CD19分子以及luciferase的基因载体,通过慢病毒转染方式感染小鼠野生型EG7淋巴瘤细胞,获得稳定表达人CD19分子和luciferase的EG7细胞。

(2)将构建成功的稳定表达人CD19分子和luciferase的EG7细胞经皮下接种给C57BL/6小鼠,监测小鼠体重、肿瘤生长;小动物活体成像仪检测小鼠体内表达人CD19分子和luciferase的EG7肿瘤细胞增殖和分布情况;应用流式细胞仪对小鼠外周血、脾脏、淋巴结、骨髓以及肿瘤组织中肿瘤细胞及各种免疫细胞比率进行检测。

(3)将构建成功的稳定表达人CD19分子和luciferase的EG7细胞经腹腔接种给C57BL/6小鼠,监测小鼠体重、肿瘤生长;小动物活体成像仪检测小鼠体内表达人CD19分子和luciferase的EG7淋巴瘤细胞的增殖和分布情况;应用流式细胞仪对小鼠外周血、脾脏、淋巴结、骨髓以及肿瘤组织中肿瘤细胞及各种免疫细胞比率进行检测。

研究结果:(1)成功构建可稳定表达人CD19分子以及luciferase的小鼠淋巴瘤EG7细胞。

(2)稳定表达人CD19分子以及luciferase的EG7细胞可以在免疫系统健全的C57BL/6小鼠皮下形成肿瘤,肿瘤大小及成瘤率与接种细胞数量呈现正相关的关系;肿瘤组织中人CD19分子表达降低,但肿瘤组织内各种免疫细胞的比例与对照组相比没有显著变化。

(3)腹腔接种稳定表达人CD19分子以及luciferase的EG7细胞可以在免疫系统健全的C57BL/6小鼠的肠系膜以及肠壁处形成肿瘤,但流式细胞术未检测到肿瘤细胞表面人CD19分子的表达。

研究结论:(1)应用稳定表达人CD19分子以及luciferase的EG7细胞,通过皮下接种的方法可以建立免疫系统健全的C57BL/6小鼠淋巴瘤模型,用于研究正常免疫环境下抗人CD19-CAR-新型效应细胞的抗肿瘤作用及与其他免疫细胞相互作用的机制。

(2)腹腔接种稳定表达人CD19分子以及luciferase的EG7细胞可在小鼠肠系膜及肠壁处形成肿瘤,但未检测到肿瘤细胞表达人CD19分子,腹腔构建淋巴瘤模型的条件还需要进一步摸索和优化。

参考文献

[1]Chimeric antigen receptor T-cell therapy-assessment and management of toxicities.[J].Neelapu Sattva S,Tummala Sudhakar,Kebriaei Partow,Wierda William,Gutierrez Cristina,Locke Frederick L,Komanduri Krishna V,Lin Yi,Jain Nitin,Daver Naval,Westin Jason,Gulbis Alison M,Loghin Monica E,de Groot John F,Adkins Sherry,Davis Suzanne E,Rezvani Katayoun,Hwu Patrick,Shpall Elizabeth J.Nature reviews.Clinical oncology.2018(1)

[2]Chimeric antigen receptor T-cell therapies for lymphoma.[J].Brudno Jennifer N,Kochenderfer James N.Nature reviews.Clinical oncology.2018(1)

[3]Resistance to anti-CD19/CD3 BiTE in acute lymphoblastic leukemia may be mediated by disrupted CD19 membrane trafficking[J].Friederike Braig,Anna Brandt,Mariele Goebeler,Hans-Peter Tony,Anna-Katharina Kurze,Peter Nollau,Thomas Bumm,Sebastian Bottcher,Ralf C.Bargou,Mascha Binder.Blood.2017(1)

[4]Optimizing chimeric antigen receptor(CAR)T cell therapy for adult patients with relapsed or refractory(r/r)acute lymphoblastic leukemia(ALL).[J].Frey Noelle V.,Shaw Pamela A,Hexner Elizabeth O.,Gill Saar,Marcucci Katherine,Luger Selina M.,Mangan James K.,Grupp Stephan A.,Maude Shannon L.,Ericson Solveig,Levine Bruce,Lacey Simon F.,Melenhorst Jan J.,June Carl H.,Porter David L..Journal of Clinical Oncology.2016(15_s)

[5]支馨仪.应用表达人CD19分子和luciferase的EG7细胞构建小鼠淋巴瘤模型的实验研究[D].吉林大学,2018.

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