人凋亡诱导因子(AIF)ELISA KIT的应用
发布日期:2022/7/21 15:20:04
背景[1-3]
人凋亡诱导因子(AIF)ELISA KIT运用双抗夹心法ELISA法定量测定血清、血浆、组织匀浆、细胞裂解液、细胞培养上清液和其他生物液体中AIF含量。
样品收集:
1.血清:全血样品于室温放置2小时或4℃过夜后于1000×g离心20分钟,取上清即可检测,收集血液的试管应为一次性的无热原,无内毒素试管。
2.血浆:抗凝剂推荐使用EDTA或肝素,样品采集后30分钟内于1000×g离心15分钟,取上清即可检测。避免使用溶血,高血脂样品。
3. 细胞培养上清:取细胞培养上清于1000×g离心20分钟,除去杂质及细胞碎片。取上清检测。
人凋亡诱导因子(AIF)ELISA KIT
操作步骤:
实验开始前,各试剂均应平衡至室温;试剂或样品配制时,均需充分混匀,并尽量避免起泡。
1.加样:分别设空白孔、标准孔、待测样品孔。空白孔加标准品稀释液100μL,余孔分别加样品稀释液50ul和样品50μL,注意不要有气泡,轻轻晃动混匀。给酶标板覆膜,37℃孵育30分钟。
2.洗板3次,弃去液体,甩干或吸干。每个孔中加入配制好的酶标抗体工作液100μL(在使用前30分钟内配制),酶标板加上覆膜,37℃温育30分钟。
3.弃去孔内液体,甩干,洗板5次,每次浸泡1-2分钟,大约350μL/每孔,甩干并在吸水纸上轻拍将孔内液体拍干。
4.提前将TMB A组分和B组分37℃温育15分钟
5.按用量1:1混合TMB A组分和B形成TMB工作液(用干净的枪头分别吸取B组分和A组分),每孔加(TMB工作液)90μL,酶标板加上覆膜37℃避光孵育7-10分钟(根据实际显色,情况酌情缩短或延长,但不可超过30分钟。当标准孔出现明显梯度时,即可终止)。
7.每孔加终止液50μL,终止反应,此时蓝色立转黄色。终止液的加入顺序应尽量与底物溶液的加入顺序相同。
8.立即用酶标仪在450nm波长测量各孔的光密度(OD值)。应提前打开酶标仪电源,预热仪器,设置好检测程序。
9.实验完毕后将未用完的试剂按规定的保存温度放回冰箱保存。
应用[4][5]
用于水蜡树果实提取物对结肠癌HCT-15细胞的增殖、千移及凋亡诱导因子AIF表达的影响研究
通过体外实验研究水蜡树果实提取物(Fruit of Ligustrum Obtusifolium Extract,FLOE)对结肠癌HCT-15细胞的增殖、迁移及凋亡诱导因子(Apoptosisi Iducing Fctor,AIF)表达的影响,探讨其可能的作用机制,为中药在结肠癌治疗中的研发及AIF应用于结肠癌治疗提供更多的理论依据。
方法:体外培养结肠癌细胞株HCT-15,取对数期细胞用于实验。将FLOE用不完全培养基RPMI-1640稀释成不同浓度:0μg/ml(对照组)、2.5μg/ml、5μg/ml、10μg/ml、20μg/ml组,并用RPMI-1640不完全培养基稀释75%酒精(20μg/ml),设置阴性对照。
采用普通光学显微镜观察在不同浓度药物分别处理24h、48h、72h、96h后细胞形态学变化,并在显微镜下计算贴壁细胞数量。采用MTS法检测不同浓度药物分别处理24h、48h、72h、96h后,对HCT-15细胞存活率的影响。采用集落实验检测不同浓度FLOE对结肠癌HCT-15细胞生存能力的影响;划痕实验检测在不同浓度药物处理后,对HCT-15细胞迁移能力的影响。采用Western bolt法检测在不同浓度药物作用48h后,对HC15细胞凋亡相关蛋白及AIF表达的影响。
结果:随着FLOE药物浓度的增高及作用时间的延长,HCT-15细胞伸展变差、细胞间隙增大、空泡化、细胞漂浮,细胞计数发现贴壁细胞也随之减少。MTS结果表明与对照组相比FLOE处理后的细胞存活率降低(P<0.05),且呈时间及浓度依赖性。划痕实验结果表明与对照组相比FLOE处理后的细胞划痕区域相对宽度较宽(P<0.05)。集落实验结果表明FLOE处理后细胞集落形成数量明显降低,与对照组相比集落抑制率有统计学意义(P<0.05)。
Western bolt实验结果表明随着FLOE浓度的增高,Survivin、Mcl-1蛋白表达水平明显降低,而凋亡诱导因子AIF表达增加。结论:水蜡树果实提取物能抑制HCT-15细胞增殖及迁移,且呈浓度及时间依赖性。其机制可能通过下调抗凋亡蛋白的表达及上调凋亡诱导因子AIF的表达实现。
参考文献
[1]Lebein,a snake venom disintegrin,suppresses human colon cancer cells proliferation and tumor‐induced angiogenesis through cell cycle arrest,apoptosis induction and inhibition of VEGF expression[J].Ons Zakraoui,Cezary Marcinkiewicz,Zohra Aloui,Houcemeddine Othman,Renaud Grépin,Meriam Haoues,Makram Essafi,Najet Srairi‐Abid,Ammar Gasmi,Habib Karoui,Gilles Pagès,Khadija Essafi‐Benkhadir.Molecular Carcinogenesis.2017(1)
[2]Miltirone induced mitochondrial dysfunction and ROS-dependent apoptosis in colon cancer cells[J].Lin Wang,Tao Hu,Jing Shen,Lin Zhang,Long-fei Li,Ruby Lok-Yi Chan,Ming-xing Li,William Ka-Kei Wu,Chi-Hin Cho.Life Sciences.2016
[3]Risk of recurrence in patients with colon cancer stage II and III:A systematic review and meta-analysis of recent literature[J].Camilla B&ouml,ckelman,Bodil E.Engelmann,Tuomas Kaprio,Torben F.Hansen,Bengt Glimelius.Acta Oncologica.2015(1)
[4]Crude extract of Rheum palmatum L induced cell death in LS1034 human colon cancer cells acts through the caspase‐dependent and‐independent pathways[J].Yi‐Shih Ma,Shu‐Chun Hsu,Shu‐Wen Weng,Chien‐Chih Yu,Jai‐Sing Yang,Kuang‐Chi Lai,Jing‐Pin Lin,Jaung‐Geng Lin,Jing‐Gung Chung.Environ.Toxicol.2014(9)
[5]鲁梦甜.水蜡树果实提取物对结肠癌HCT-15细胞的增殖、千移及凋亡诱导因子AIF表达的影响[D].中国医科大学,2019.
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