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酵母RNA分离的应用

发布日期:2020/10/20 9:12:51

背景[1-6]

酵母RNA分离是用TransZol Up裂解样品,加入氯仿后,溶液分为无色水相和粉红色有机相,RNA在水相中;用硅胶膜离心柱特异吸附水相中的RNA,与其它总RNA提取方法相比,既具有TransZol Up裂解能力强、提取量高,应用范围广的优点。酵母是一种具有特殊细胞壁结构的真菌,其细胞壁是由内层葡聚糖的细纤维,覆盖在细纤维上面的中间层糖蛋白和外层甘露聚糖,由1,6一磷酸二酯键共价连接,形成复杂的,紧密交联的网状结构。与细菌细胞壁一样,酵母细胞壁比其它种类的细胞壁都相对会厚,并且交联又紧密,所以这就给RNA的提取纯化工作带来很大困难。

目前,市场中酵母RNA提取的产品均很难对酵母细胞壁进行有效地破碎,TRIZOL主要成份是异硫氰酸胍和苯酚,没有有效破壁的成分,提取的酵母总RNA利用电泳分析只具有5s rRNA,很显然不完整;玻璃珠型的不是破碎不充分,得率低,就是破碎太剧烈片段断裂,很难掌控;而利用传统的苯酚法提取,要经过组织匀浆,苯酚处理而后乙醇沉淀等一些列步骤,虽然最后能得到生物活性的RNA。但步骤复杂,耗时较长且不利于多个样品同时操作,也并非理想的提取方法。后来有些公司虽然对以上方法又作出了改进,但提取效果仍不是很理想。

酵母菌是一些单细胞真菌,目前已知的酵母菌有1000多种。酵母菌有三类:子囊菌、担子菌和“假酵母”。目前已知大部分酵母都属于子囊菌门,这是一种产生孢子的菌。酵母菌主要生长在潮湿或液态环境,有些也会生存在生物体内。目前,尤其是食品行业中,酵母菌显得异常兴盛,比如啤酒发酵,酸奶污染等都与酵母息息相关。所以,科研人员对酵母菌的研究工作也是越来越热。

总RNA提取的纯度与完整性,对于许多分子生物学实验的进展都至关重要,比如,Northern印迹及杂交分析,cDNA文库构建等,这些实验的成败在很大程度上取决于总RNA的提取质量。对于RNA含量丰富,易于破碎的样品来说,高质量RNA的提取并非难事,但对于破壁较为困难的材料——酵母来说,就并非人人都能很好地提取出高质量的RNA。

应用[7][8]

可用于树干毕赤酵母cDNA文库构建及EST序列测定:

将植物纤维水解液中30%左右的木糖有效利用转化为酒精是降低酒精生产成本的关键。树干毕赤酵母是研究得最多、最具工业应用前景的木糖发酵酵母,目前对于树干毕赤酵母木糖代谢的生理学机制还知之甚少。以cDNA文库为基础的EST(Expressed Sequence Tag,表达序列标签)技术是一种快速的进行基因功能分析及发现新基因的有效方法。

以约900mg(干重)酵母为材料提取获得了约1.2mg总RNA,提取得率达到1.3‰,提取出的RNA具备完整性,质量高,是cDNA文库构建的良好材料。以提取出的RNA为材料,纯化出mRNA(messager RNA,信使RNA),经反转录酶反转录出cDNA链,以置换合成法合成cDNA双链,通过胶纯化回收的方法筛选出其中大于500bp的片段与载体连接,最后用电转化法转化宿主菌,构建出树干毕赤酵母P5776的cDNA文库,经质量检测,初级文库滴度达到1.0×106pfu(plaque forming units,噬菌斑形成单位)/mL,扩增文库总克隆数达到1.25×109,文库中71%的重组子插入片段大于300bp,达到cDNA文库构建要求,完全可以用于大规模EST序列测定及数据分析。

参考文献

[1]Adaptive response of yeasts to furfural and 5-hydroxymethylfurfural and new chemical evidence for HMF conversion to 2,5-bis-hydroxymethylfuran[J].Z.L.Liu,P.J.Slininger,B.S.Dien,M.A.Berhow,C.P.Kurtzman,S.W.Gorsich.Journal of Industrial Microbiology&Biotechnology.2004(8)

[2]Inhibition of ethanol-producing yeast and bacteria by degradation products produced during pre-treatment of biomass[J].H.B.Klinke,A.B.Thomsen,B.K.Ahring.Applied Microbiology and Biotechnology.2004(1)

[3]Metabolic engineering for improved fermentation of pentoses by yeasts[J].T.W.Jeffries,Y.-S.Jin.Applied Microbiology and Biotechnology.2004(5)

[4]Two different pathways for D-xylose metabolism and the effect of xylose concentration on the yield coefficient of L-lactate in mixed-acid fermentation by the lactic acid bacterium Lactococcus lactis IO-1[J].K.Tanaka,A.Komiyama,K.Sonomoto,A.Ishizaki,S.Hall,P.Stanbury.Applied Microbiology and Biotechnology.2002(1-2)

[5]On-line estimation of sugar concentration for control of fed-batch fermentation of lignocellulosic hydrolyzates by Saccharomyces cerevisiae[J].A.Nilsson,M.Taherzadeh,G.Lidén.Bioprocess and Biosystems Engineering.2002(3)

[6]Fermentation performance and intracellular metabolite patterns in laboratory and industrial xylose-fermenting Saccharomyces cerevisiae[J].J.Zaldivar,A.Borges,B.Johansson,H.Smits,S.Villas-B?as,J.Nielsen,L.Olsson.Applied Microbiology and Biotechnology.2002(4-5)

[7]Iogen’s process for producing ethanol from cellulosic biomass[J].Jeffrey S.Tolan.Clean Technologies and Environmental Policy.2002(4)

[8]范一民.树干毕赤酵母cDNA文库构建及EST序列测定[D].南京林业大学,2005.

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