细胞周期与细胞凋亡检测试剂盒的应用

背景^[1-3]

细胞周期与细胞凋亡检测试剂盒是一种用于检测细胞周期和细胞凋亡的生物试剂，通常包含用于染色的荧光染料和用于流式细胞仪检测的缓冲液等成分。

细胞周期是指细胞从前一次分裂结束起到下一次分裂结束为止的活动过程，通常由G0/G1期、S期、G2期和M期组成。细胞凋亡则是指细胞程序性死亡的过程。

细胞周期与细胞凋亡检测试剂盒利用了细胞内DNA能够和荧光染料结合的特性。在细胞各个时期，其DNA含量不同，因此结合的荧光染料也不同。流式细胞仪可以检测荧光强度，从而确定细胞周期各个阶段的DNA分布状态，计算出各个期的百分含量。

使用细胞周期与细胞凋亡检测试剂盒可以同时检测细胞周期和细胞凋亡，从而更好地了解细胞的增殖和死亡情况，有助于研究肿瘤、免疫系统等领域中的细胞生物学过程。

细胞周期与细胞凋亡

细胞周期与细胞凋亡检测试剂盒是一种用于研究细胞周期和细胞凋亡的试剂盒。该试剂盒通常包括以下成分：

细胞周期检测试剂：包括PI染料、RNase A等，用于染色细胞并分析细胞周期。

细胞凋亡检测试剂：包括Annexin V-FITC/PI双染料、Caspase-3底物等，用于检测细胞凋亡。

培养基：提供细胞生长所需的营养物质。

其他辅助试剂：如缓冲液、离心管、移液器等。

使用该试剂盒时，首先需要收集细胞样本，并将其加入到含有培养基的培养皿中进行培养。然后，根据试剂盒说明书中的步骤，加入相应的试剂进行染色和分析。通过观察染色结果和数据分析，可以了解细胞周期和细胞凋亡的情况，为进一步的研究提供基础数据。

应用^[4-5]

细胞周期与细胞凋亡检测试剂盒可以用于DHA对脂肪细胞凋亡调控作用机制研究

以3T3-L1脂肪细胞为模型探讨DHA对前体脂肪细胞和成熟脂肪细胞凋亡的影响及其机制,为应用DHA进行肥胖的防治提供科学依据。

方法3T3-L1前脂肪细胞常规培养,MTT法检测DHA处理24、48、72h对3T3-L1前脂肪细胞活力的影响,流式细胞术检测DHA作用24h对前脂肪细胞周期的影响,细胞周期与细胞凋亡检测试剂盒Hoechst染色法观察DHA处理24h对前脂肪细胞凋亡的影响,线粒体膜电位JC-1染色法检测DHA处理24h前脂肪细胞线粒体膜电位的改变,蛋白免疫印迹法检测DHA处理对前脂肪细胞中p-ERK1/2、p21、Bcl-2、Bax和p53蛋白水平的影响,试剂盒法检测DHA处理后前脂肪细胞凋亡效应因子Caspase 3的活性变化,从而探讨DHA对前脂肪细胞凋亡的影响及其作用机制。

MDI法诱导前体脂肪细胞分化为成熟脂肪细胞并进行以下检测:MTT法检测DHA处理对成熟脂肪细胞活力的影响,油红O染色法测定DHA处理48h对成熟脂肪细胞脂质含量的影响,细胞周期与细胞凋亡检测试剂盒Hoechst染色法观察DHA处理48h对成熟脂肪细胞凋亡的影响,JC-1染色法检测DHA处理24h成熟脂肪细胞线粒体膜电位的改变,蛋白免疫印迹法检测DHA处理对成熟脂肪细胞凋亡相关蛋白Akt、p-Akt、CREB、ERK1/2、p-ERK1/2、Bcl-2、Bax和Bad水平的影响,试剂盒法检测DHA处理48h对成熟脂肪细胞凋亡效应因子Caspase 3活性的影响,从而研究DHA对成熟脂肪细胞凋亡的影响及其作用机制。

结果MTT结果表明DHA可降低3T3-L1前脂肪细胞的活力。对3T3-L1前脂肪细胞周期的研究发现,DHA能诱导前脂肪细胞G2/M期阻滞,增强ERK1/2的活化、上调p21的表达。Hoechst染色显示DHA可诱导3T3-L1前脂肪细胞凋亡,JC-1染色表明DHA可降低线粒体膜电位,蛋白免疫印迹分析发现DHA可上调凋亡相关蛋白p53表达、降低Bcl-2/Bax比值。同时发现DHA可增强前脂肪细胞凋亡效应因子Caspase 3的活性。对成熟脂肪细胞的研究发现,DHA可降低3T3-L1成熟脂肪细胞的活力、降低脂质含量,细胞周期与细胞凋亡检测试剂盒Hoechst染色结果显示DHA能诱导3T3-L1成熟脂肪细胞凋亡,JC-1染色表明DHA处理24h可降低成熟脂肪细胞的线粒体膜电位,蛋白免疫印迹分析发现DHA可降低Bcl-2/Bax比值、抑制成熟脂肪细胞抗凋亡蛋白Akt和ERK1/2的活化、抑制CREB表达,上调促凋亡蛋白Bad水平,还发现DHA可增强成熟脂肪细胞凋亡效应因子Caspase 3的活性。

结论DHA可激活ERK1/2/p21途径诱导G2/M期阻滞,抑制3T3-L1前脂肪细胞增殖,并通过上调p53表达、降低Bcl-2/Bax比值、升高Caspase 3活性,诱导前脂肪细胞凋亡。DHA通过抑制Akt/CREB和ERK途径、降低Bcl-2/Bax比值、上调促凋亡蛋白Bad水平、升高Caspase 3活性,诱导成熟脂肪细胞凋亡。

参考文献

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[3]Docosahexaenoic acid induces apoptosis in lung cancer cells by increasing MKP-1 and down-regulating p-ERK1/2 and p-p38 expression[J].Simona Serini;;Sonia Trombino;;Francesco Oliva;;Elisabetta Piccioni;;Giovanni Monego;;Federica Resci;;Alma Boninsegna;;Nevio Picci;;Franco Oreste Ranelletti;;Gabriella Calviello.Apoptosis,2008(9)

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