人肺微血管内皮细胞

取材自伦理批准的人源组织的微血管组织,经胶原酶IV消化获取原代内皮细胞,接种于胶原预包被培养皿中,采用MEM基础培养基培养;通过共聚焦显微镜观察鉴定CD34表达特征,划痕愈合实验检测Tie-2表达水平,并采用空间转录组学评估细胞功能状态。 细胞形态经倒置显微镜观察符合内皮细胞典型形态特征。

产品名称:人肺微血管内皮细胞
英文名称: Human Pulmonary Microvascular Endothelial Cells (HPMEC)
组织来源: 肺组织
默认种属 :人
产品规格:5×10^5Cells/T25
方法简介 实验室分离的人肺微血管内皮细胞采用胶原酶-中性蛋白酶联合消化结合差速贴壁法,并通过专用培养基培养筛选制备而来。
质量检测 实验室分离的人肺微血管内皮细胞经特异性标志物免疫荧光鉴定,纯度可达85%以上,且不含有HIV-1、HBV、HCV、支原体、细菌、酵母和真菌等。
包被条件: 鼠尾胶原Ⅰ(2-5 μg/cm²)
培养基: 人肺微血管内皮细胞完全培养基(含FBS、生长添加剂、Penicillin、Streptomycin等)
换液频率: 每2-3天换液一次
生长特性: 贴壁
细胞形态: 内皮细胞样
传代比例: 1:2
传代特性: 可传3-5代
消化液: 0.25%胰蛋白酶
人肺微血管内皮细胞体外培养周期有限;建议使用配套的专用生长培养基及正确的操作方法来培养,以此保证该细胞的最佳培养状态。

一、实验前准备
1. 手术器械(剪刀、镊子、止血钳)及培养耗材经121℃高压灭菌20min;超净台紫外照射30min。
2. 配制冰预冷PBS缓冲液、Ⅳ型胶原酶+透明质酸酶混合消化液、DMEM/F12 + 20% FBS + 50μg/mL 肝素 + 1% 双抗、胎牛血清、双抗,全部冰浴预冷。
3. 人源组织样本(临床手术废弃组织)处理。
二、取材与预处理
1. 经伦理委员会批准获取,体表酒精消毒,暴露目标组织器官。
2. 无菌条件下摘取肺组织,冰预冷PBS缓冲液漂洗去除血液及杂质,去除周围结缔组织和脂肪。
3. 眼科剪将组织剪碎至1mm³小块,转入离心管。
三、细胞分离与消化
1. 剪碎组织加入Ⅳ型胶原酶消化液,37℃水浴消化30min,期间每隔5-10min振荡吹打。
2. 用含血清培养基终止反应,经200目筛网过滤获取单细胞悬液。
3. 4℃、200g离心10min,弃上清,PBS洗涤两次,重悬细胞沉淀。
四、纯化与接种培养
1. 细胞悬液经40μm滤膜过滤,采用Percoll密度梯度离心纯化内皮细胞,去除大颗粒杂质。
2. 用DMEM/F12 + 20% FBS + 50μg/mL 肝素 + 1% 双抗重悬细胞沉淀,调整接种密度后接种至胶原预包被的培养器皿。
3. 37℃、5% CO2培养,每2-3天换液一次,定期倒置显微镜观察鹅卵石样铺路石状排列,贴壁生长,细胞边界清晰及生长情况。

取材前动物需禁食12小时,手术切除法处死后立即取肺组织,置于预冷的PBS中运输至实验室,从取材到开始消化处理不超过20分钟。
培养皿需用胶原蛋白-I型(5μg/cm2)包被过夜,次日PBS洗涤3次后使用,未包被表面微血管内皮难以正常贴附和铺展。
该细胞贴壁生长,每2-3天换液一次,传代比例为1:2至1:3,过度传代(>P5)会导致细胞衰老和功能性下降。
培养基中应加入GM299培养基含20% FBS、5ng/ml VEGF和10ng/ml FGF,使用前需预热至37°C并预平衡CO2浓度至5%,血清批次更换前需进行预实验验证促生长效果。
日常维护中需每日检查细胞形态和培养基颜色,出现浑浊或颜色异常应立即换液并排查污染,传代后24小时内避免换液以利于细胞贴附恢复。

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