"Caco-2人结直肠腺癌复苏细胞保种中心|带STR证书
传代比例：1:2-1:4(首次传代建议1:2)
生长特性：贴壁生长
细胞冻存复苏材料与方法步骤：常用的细胞冷冻贮存器为贮存器，规格有３５L和５０L两种。使用时要注意以下几点：(１)一般两周需充一次，至少一个月充一次。温度达-１９６℃，使用时注意勿让溅到皮肤上，以免引起冻伤。(２)容器为双层结构，中间为真空层，瓶口有双层焊接处，应防止焊接部裂开。(３)在装入时，要注意缓慢小心，并用厚纸卷筒或制漏斗作引导，使直达瓶底，如有专用灌注装置则更HAO。若为初次使用，加时更要缓慢，以免温度骤降而使容器损坏。细胞冻存时常备的材料有：０.２５%胰蛋白酶，含１０%～２０%的血清培养，DMSO(分析纯)或无色新鲜甘油(１２１°C蒸气GAO压消毒)，２mL安瓿(或专用细胞冻存管)、吸管、离心管、喷灯、纱布袋(或冻存管架)等。主要操作步骤为：(１)选择处于对数生长期的细胞，在冻存前一天ZuiHAO换。将多个培养瓶中的细胞培养 去掉，用０.２５%胰蛋白酶消化。适时去掉胰蛋白酶，加入少量新培养。用吸管吸取培养反复吹打瓶壁上的细胞，使其成为均匀分散的细胞悬。悬浮生产细胞则不要消化处理。然后将细胞收集于离心管中离心(１０００r/min，１０分钟)。(２)去上清，加入含２０%小牛血清的完全培养基，于４℃预冷１５分钟后，逐滴加入已无菌的DMSO或甘油，用吸管轻轻吹打使细胞均匀，细胞浓度为３×１０６～１×１０７/mL之间。(３)将上述细胞分装于安瓿或专用冷冻塑料管中，安瓿装１～１.５mL在火焰喷灯上封口，封口处要完全封闭，圆滑无勾。冷冻管要将盖子盖紧，并标记HAO细胞名称和冻存日期，同时作HAO登记(日期、细胞种类及代次、冻存支数)。(４)将装HAO细胞的安瓿或冻存管装入沙布袋内;置于容器颈口处存放过夜，次日转入中。采用控制降温速度的方法也可采用下列步骤：先将安瓿置入４℃冰箱中２～３小时，再移至冰箱冷冻室内３～４小时，再吊入容器颈气态部分存放２小时，Zui后沉入中。细胞冻存在中可以长期保存，但为妥善起见，冻存半年后，ZuiHAO取出一只安瓿细胞复苏培养，观察生长情况，然后再继续冻存。
换液周期：每周2-3次
Panc 05.04 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２传代;生长特性：贴壁生长;形态特性：上皮样;相关产品有：KMST6细胞、CMEC/D3细胞、NUGC-4细胞
HMy2.CIR Cells;背景说明：B细胞；EBV转染；女性;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：悬浮;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：P3X63 Ag8.653细胞、OCI/AML3细胞、MC-38细胞
Farage Original Line Cells;背景说明：Farage细胞源于一名患有弥漫性大B细胞淋巴瘤(DLBCL）白人女性的活检淋巴组织，由HBen-Bassat建系。经IL-４处理，该细胞CD２１,CD２２,CD５４和CD５８表达上调，而CD２１,CD２２,andCD３８表达下调。;传代方法：１：３传代,２-３天传一代;生长特性：悬浮生长;形态特性：淋巴母细胞样;相关产品有：IOSE-Van细胞、HO1N1细胞、HEL 299细胞
Caco-2人结直肠腺癌复苏细胞保种中心|带STR证书
背景信息：细胞株分离自一个原发性结肠癌。当细胞长满时，表现出典型的肠细胞分化的特征。Caco-２细胞表达维生素A结合蛋白I和视黄醇结合蛋白II，角蛋白阳性。
公司细胞系形态漂亮、增殖倍数高、纯度高、功能性强，细胞培养就跟养孩子一个样。养孩子要喂奶，养细胞要加补液，都需要在前期补充足够的营养，初始状态的细胞或刚刚复苏的细胞还要适量加入血清或细胞因子来帮助它们的存活增殖，如果营养物质缺乏，细胞就会不生长甚至死亡。养孩子要从小培养学习，养细胞也得培养宝宝顺利生下来，你会经常抚摸他，给他看各种颜色，刺激他的五感。细胞也是一样，分离后的细胞需要使用特定的细胞因子进行活化、增殖。另外加入因子的种类、因子的浓度、加入时间、加入顺序都会影响细胞最终的结果。养孩子最怕孩子生病，养细胞最怕被污染，平时你会仔细观察宝宝是否呕吐、是否突然哭闹，猜测宝宝是否生病了。对于细胞，我们也需要时刻进行观察的，假如培养液浑浊(污染了)，则需要换液后加抗生素；假如细胞增殖不明显，形态变差，则可能是因为营养不足了，对贴壁细胞可以消化后重新用新的培养基接种并加倍加入细胞因子含量；对悬浮细胞增殖能力不强的，则不着急补液，只是先补加血清、细胞因子看是否可以好转。培养时还得全程在无菌的环境，一个小小的偏差，细胞就会死亡。
产品包装：复苏发货：T25培养瓶(一瓶)或冻存发货：1ml冻存管(两支)
来源说明：细胞主要来源ATCC、ECACC、DSMZ、RIKEN等细胞库
H2122 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：３-１：４传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁生长;形态特性：淋巴母细胞;相关产品有：HTR-8/SV-neo细胞、H2023细胞、RMa-bm细胞
SK-N-MC Cells;背景说明：这株细胞与HTB-１１都是神经源的。１９７１年９月分离得到SK-N-MC后，发现它有中性多巴胺-β-羟化酶活性，也有细胞内儿茶胺，用甲醛可以诱导出荧光。;传代方法：１：６-１：１２传代，每周２-３次换液。;生长特性：贴壁生长;形态特性：上皮样;相关产品有：Panc-02细胞、TE354T细胞、MDA-MB231细胞
Panc05.04 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２传代;生长特性：贴壁生长;形态特性：上皮样;相关产品有：HCPEpiC细胞、SW.620细胞、AtT20细胞
Experimental Mammary Tumour-6 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁或悬浮，详见产品说明书部分;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：TE 354.T细胞、bEND.3细胞、QGY7703细胞
Caco-2人结直肠腺癌复苏细胞保种中心|带STR证书
物种来源：人源、鼠源等其它物种来源
形态特性：上皮细胞样
实验室细胞培养基知识简介：干粉培养基：以前大部分实验室都是用干粉培养基，但配制过程就较为繁琐，要溶解、调pH值，过滤，过程中可能会产生一些浓度误差，而且有些实验室的水质并不理想，所以培养的效果会有差异。如果使用体培养基，这种人为的误差会减少，因为毕竟是大批量工业化生产的，批间差会很小。大家是不是感觉体培养基会贵很多，以前是这样，但现在大家都认同了；无血清培养基(Serum-Free Media)，通常以SFM表示，顾名思义，就是在细胞培养中不需要添加血清，但是在某些应用中可能要添加生长因子或细胞因子。无血清培养基中添加了血清的主要成分：粘附因子、生长因子、必需的营养物质和激素等，能减少上述血清带来的不利因素，使细胞培养的条件更稳定。但它也不是完美的，从有血清培养过渡到无血清培养的条件并不像想象中那么直截了当。处于发育的不同分化阶段的细胞(例如干细胞与定向前体细胞相比)需要不同的配方，对生长因子和细胞因子的选择尤为重要。而且在去除血清的同时，也去除了一些血清蛋白具有的保护、解毒作用，因此对试剂、水的纯度和仪器清洁度的要求更GAO。另外，它的价格也比普通的培养基贵很多。
NCI-H810 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２-１：６传代,每周２-３次。;生长特性：贴壁生长;形态特性：上皮样;相关产品有：ACHN细胞、JB6 Cl 30-7b细胞、H2228细胞
H-747 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２—１：４传代，每周换液２次;生长特性：贴壁生长;形态特性：上皮样;相关产品有：HPC-Y5细胞、H727细胞、VMRC-LCD细胞
H-520 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：３-１：６传代；２-３天换液１次;生长特性：贴壁或悬浮，详见产品说明书部分;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：QGP-1细胞、UPCI-SCC090细胞、CPAE细胞
266 Bl Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：３传代,２-３天传一代;生长特性：悬浮生长 ;形态特性：淋巴母细胞样;相关产品有：GM03671C细胞、KM-H2细胞、SACC-83细胞
SCL-1 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁;形态特性：上皮细胞样;相关产品有：MDA-MB-175-VII细胞、SO-RB50细胞、NCI-H1581细胞
BHT101 Cells;背景说明：甲状腺癌；女性;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：NBL-7细胞、MB231细胞、UMUC-3细胞
NCI-H-128 Cells;背景说明：小细胞肺癌；胸腔积液转移；男性;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：RPMI 8226/S细胞、NRK-49F细胞、C-127细胞
HBZY 1 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２传代;生长特性：贴壁生长;形态特性：上皮细胞样;相关产品有：HOS-MNNG细胞、HEK-293F细胞、REC1细胞
HEH2 Cells;背景说明：胚胎；心脏；成纤维样 Cells;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：Walker/LLC-WRC256细胞、SNU119细胞、Huh-7.5细胞
JG Cells;背景说明：肾小球旁 Cells;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：SCC9细胞、High5细胞、MFE-296细胞
FM88 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁或悬浮，详见产品说明书部分;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：BaF3细胞、NCTC-1469细胞、SKO007细胞
HeLa-229 Cells;背景说明：宫颈癌；女性;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：HEK 293T/17细胞、HSC-5 [Human skin squamous cell carcinoma]细胞、SP2/0 Ag-14细胞
HEC-1A Cells;背景说明：这株细胞及其亚株HEC-１-B是H.Kuramoto及其同事１９６８年从一位IA期子宫内膜癌患者身上分离得到的。PAF可以诱导其c-fos的表达。;传代方法：消化３-５分钟，１：２,３天内可长满;生长特性：贴壁生长;形态特性：上皮样;相关产品有：Oka-C1细胞、SK Col 1细胞、OEC33细胞
OCI-LY-1 Cells;背景说明：弥漫大B淋巴瘤；男性;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：悬浮;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：Hs 445细胞、L6细胞、SMMC7721细胞
PMVEC Cells;背景说明：肺微血管；内皮 Cells;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：BC3H1细胞、FM-88细胞、RMS1598细胞
C-33-A Cells;背景说明：C-３３A细胞株是N. Auersperg从宫颈癌切片中建立的一系列细胞株(参见ATCC CRL-１５９４和ATCC CRL-１５９５)中的一株。 细胞一开始就表现出亚二倍体核型及上皮细胞形态。 连续传代可以观察到核型不稳定。 存在成视网膜细胞瘤蛋白(pRB)，但大小不正常。 P５３表达上调，且有一个２７３位密码子的点突变导致Arg -> Cys的替换。 人乳头瘤病毒DNA及RNA阴性。;传代方法：１：２传代;生长特性：贴壁生长;形态特性：上皮细胞样;相关产品有：PVEC细胞、293c18细胞、NCI-H2107细胞
MG-HU-3 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁或悬浮，详见产品说明书部分;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：TE-32细胞、CCD-1112sk细胞、LTEPa2细胞
Caco-2人结直肠腺癌复苏细胞保种中心|带STR证书
Abcam HCT 116 STAT6 KO Cells(提供STR鉴定图谱)
AG08471 Cells(提供STR鉴定图谱)
BayGenomics ES cell line HMA254 Cells(提供STR鉴定图谱)
BayGenomics ES cell line XB475 Cells(提供STR鉴定图谱)
BON1 RR2 Cells(提供STR鉴定图谱)
CNDT2.5 Cells(提供STR鉴定图谱)
DA03713 Cells(提供STR鉴定图谱)
EA-1 Cells(提供STR鉴定图谱)
GM04723 Cells(提供STR鉴定图谱)
BEL-7405 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁;形态特性：上皮细胞样;相关产品有：H-1793细胞、OSKM-1细胞、Kit225/K6细胞
MH-22a Cells;背景说明：肝癌；C３HA;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：High-5细胞、NCI-H2286细胞、P3-NS1/1Ag 4.1细胞
Walker/LLC-WRC 256 Cells;背景说明：乳腺癌；雌性;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：GM05384细胞、Panc8.13细胞、HCT 8细胞
HCV29 Cells;背景说明：膀胱；男性;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：GS9L细胞、HCC-1171细胞、WEHI 164细胞
IALM Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁或悬浮，详见产品说明书部分;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：DMS273细胞、COS7细胞、C28/I2细胞
TE-6 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：消化３-５分钟。１：２。３天内可长满。;生长特性：贴壁生长;形态特性：上皮样;相关产品有：SK MEL 28细胞、MFC细胞、REC-1细胞
813-13 Cells(提供STR鉴定图谱)
HS0578T Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁或悬浮，详见产品说明书部分;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：L cells (TK-)细胞、TK 10细胞、MGc80-3细胞
K7M2 Cells;背景说明：骨肉瘤；肺转移；雌性；BALB/c;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：GM03569D细胞、Pro-Lec1.3C细胞、NCI-H1092细胞
OCIAML3 Cells;背景说明：急性髓系白血病；男性;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：悬浮;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：BetaTC6细胞、GM2132细胞、HS-5细胞
MM.1S Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２-１：４传代，２-３天换液１次。;生长特性：混合生长;形态特性：淋巴母细胞样;相关产品有：HCC-1419细胞、C-4I细胞、F36P细胞
Jiyoye(P-2003) Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：每周２-３次。;生长特性：悬浮生长;形态特性：淋巴母细胞;相关产品有：Cloudman S91 melanoma clone M-3细胞、ECC1细胞、Tb 1 Lu (NBL-12)细胞
P388-D1 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：悬浮;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：SCL-I细胞、SU8686细胞、CoCL3细胞
P388-D1 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：悬浮;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：SCL-I细胞、SU8686细胞、CoCL3细胞
NCI-H441 Cells;背景说明：NCI-H４４１建系于１９８２年（A.F.Gazdar，etal.)。该细胞分离自一名肺腺癌患者的心包液。该细胞能在半固体琼脂糖中形成克隆，并能表达肺泡表面活性蛋白A。该细胞在有血清培养基中倍增时间为５８小时，在无血清培养基中倍增时间为９９-１３８小时。;传代方法：１：３传代,２-３天传一代;生长特性：贴壁生长;形态特性：上皮细胞样;相关产品有：HCC-366细胞、MN 60细胞、DITNC1细胞
GM10082 Cells(提供STR鉴定图谱)
HAP1 C14orf159 (-) 3 Cells(提供STR鉴定图谱)
SKG IIIa Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：２x１０^４ cells/ml;生长特性：贴壁生长;形态特性：上皮细胞样;相关产品有：HS578T细胞、NIH:OVCAR-3细胞、WEHI 3细胞
PK 15 Cells;背景说明：PK-１５细胞建系于１９５５（Stice,E）。是PK-１a细胞的克隆系。该细胞系可用于多种病毒的增值及特性研究。另外，电镜观察发现，PK-１５细胞内有C-型病毒颗粒存在，是研究C-型病毒的材料。;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁;形态特性：上皮细胞样;相关产品有：MDCC-MSB1细胞、HCC95细胞、Panc 3.27细胞
BMSCs（mBMSCs） Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁或悬浮，详见产品说明书部分;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：U-2OS细胞、Cloudman S91 melanoma细胞、BALB/3T3 (clone A31)细胞
P31FUJ Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：５传代;生长特性：悬浮生长;形态特性：淋巴母细胞;相关产品有：DHL-16细胞、ME1细胞、FU-OV-1细胞
NRK 52E Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２传代;生长特性：贴壁生长;形态特性：上皮细胞样;相关产品有：OVCAR8细胞、Human Fetal Thymocyte-8810细胞、GC-1细胞
SPC-A1 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁或悬浮，详见产品说明书部分;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：H548细胞、NCIH1793细胞、HMEC-1细胞
NCI-H1184 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁或悬浮，详见产品说明书部分;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：H748细胞、L363细胞、Hs 870.T细胞
BV173 Cells;背景说明：慢性粒细胞白血病；男性;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：悬浮;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：RGC-5细胞、RBL.2H3细胞、HS-445细胞
HG03515 Cells(提供STR鉴定图谱)
IDG-HEK293T-CLCN6-V5-OE Cells(提供STR鉴定图谱)
LP0682 Cells(提供STR鉴定图谱)
NCI-H930 Cells(提供STR鉴定图谱)
PathHunter U2OS mOPRM1 beta-arrestin Cells(提供STR鉴定图谱)
TRNDi033-A Cells(提供STR鉴定图谱)
UKTS8049 Cells(提供STR鉴定图谱)
HCT116-SLC39A3-KO-c4 Cells(提供STR鉴定图谱)
OCI AML5 Cells;背景说明：急性髓系白血病细胞；男性;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：悬浮;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：H-1693细胞、Hs-688A-T细胞、X63Ag8.653细胞
SKHEP1 Cells;背景说明：SK-HEP-１细胞系已被鉴定为内皮来源。该细胞系为异倍体女性人（XX），染色体在亚三倍体范围内。在裸鼠中，它能形成与肝癌相一致的大细胞癌;传代方法：１：３传代，２-３天换液一次;生长特性：贴壁生长;形态特性：上皮样;相关产品有：Rat 1细胞、Human Liver-7702细胞、KHYG1细胞
D341 Med Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：每周换液２-３次。;生长特性：悬浮生长;形态特性：髓母细胞样;相关产品有：A172细胞、ZR-75-30细胞、Doubling time: ~50 hours (ATCC).细胞
WEHI 231 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁或悬浮，详见产品说明书部分;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：Tn 5B1-4细胞、H1793细胞、H647细胞
2780 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２传代;生长特性：贴壁生长;形态特性：上皮细胞样;相关产品有：aTC1 Clone 6细胞、T-47D细胞、HCC-1428细胞
2780 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２传代;生长特性：贴壁生长;形态特性：上皮细胞样;相关产品有：aTC1 Clone 6细胞、T-47D细胞、HCC-1428细胞
TJ905 Cells;背景说明：胶质瘤;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：CCC-HEL-1细胞、SNU-407细胞、Pa017C细胞
HT 144 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：３-１：８传代，２-３天换液１次。;生长特性：贴壁生长;形态特性：成纤维细胞;相关产品有：CNE1-LUC细胞、UMC-11细胞、PC-9细胞
MRC-5 Cells;背景说明：MRC-５细胞系来自１４周龄男性胎儿的正常肺组织，该细胞老化前能传代４２~４６个倍增时间。;传代方法：１：２-１：５传代；每周１-２次。;生长特性：贴壁生长;形态特性：成纤维细胞样;相关产品有：Huh7.5细胞、SW 780细胞、ST2细胞
Fetal Human Colon Cells;背景说明：胎儿；结肠；自发永生；男性;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：GM04154细胞、PBMC细胞、SR786细胞
253JBV Cells;背景说明：膀胱癌；淋巴结转移；男性;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：BT549细胞、Hs 578.T细胞、BJ [Human fibroblast]细胞
253J-BV Cells;背景说明：膀胱癌；淋巴结转移；男性;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：VK2/E6E7细胞、RPE-1细胞、Michigan Cancer Foundation-7细胞
SNU1040 Cells;背景说明：结肠癌；男性;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：16HBE14o-细胞、PLA-801D细胞、RSC 96细胞
SUDHL10 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：悬浮;形态特性：淋巴母细胞;相关产品有：CV-1 in Origin Simian-7细胞、B16 BL6细胞、SW1271细胞
SK-N-BE(2) Cells;背景说明：１９７２年１１月从一们多次化疗及放疗的扩散性神经母细胞瘤患儿骨髓穿刺物中建立了SK-N-BE(２)神经母细胞瘤细胞株。 该细胞显示中等水平的多巴胺-β-羟基酶活性。 有报道称SK-N-BE(２)细胞的饱和浓度超过１x１０６细胞/平方厘米。细胞形态多样，有的有长突触，有的呈上皮细胞样。 细胞会聚集，形成团块并浮起;传代方法：１：２传代;生长特性：贴壁生长;形态特性：上皮细胞样;相关产品有：H2023细胞、NEC8细胞、CALU 1细胞
SBF Cells(提供STR鉴定图谱)
R1610 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁或悬浮，详见产品说明书部分;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：H510细胞、Murine Thymic Epithelial Cell line 1细胞、HUT 28细胞
Line 522 Cells;背景说明：肺腺癌；女性;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：H4IIEC3细胞、F442-A细胞、hMSC-BM细胞
MPP 89 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁或悬浮，详见产品说明书部分;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：KY180细胞、Sp 2/0-Ag 14细胞、INS1细胞
OCI-Ly3 Cells;背景说明：弥漫大B淋巴瘤；男性;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：悬浮;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：C8166细胞、WERI-Rb-1细胞、PLA801D细胞
CCRF/CEM Cells;背景说明：G.E. Foley 等人建立了类淋巴母细胞细胞株CCRF-CEM。 细胞是１９６４年１１月从一位四岁白人女性急性淋巴细胞白血病患者的外周血白血球衣中得到。此细胞系从香港收集而来。;传代方法：１：２传代。３天内可长满。;生长特性：悬浮生长;形态特性：淋巴母细胞样;相关产品有：M-1细胞、PL 5细胞、DHBE细胞
VM-CUB1 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁或悬浮，详见产品说明书部分;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：HSC4细胞、MSCs（mUCMSCs）细胞、SW-948细胞
A253 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁或悬浮，详见产品说明书部分;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：RPE-hTERT细胞、ME16C细胞、LED-WiDr细胞
Panc02-H0 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２传代;生长特性：贴壁生长 ;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：PANC-08-13细胞、Y-1细胞、VA-ES-BJ细胞
C127 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁或悬浮，详见产品说明书部分;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：M 1细胞、PTK 1细胞、TE6细胞
OVCA 420 Cells;背景说明：卵巢癌；女性;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：IOSE 80细胞、U138细胞、TR-146细胞
293 F Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２传代;生长特性：贴壁生长；悬浮生长;形态特性：上皮细胞样;相关产品有：Huh-7.5.1细胞、Hs-281-T细胞、SMMC-7721细胞
KG-1a Cells;背景说明：急性髓系白血病；男性;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：悬浮;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：HVSMC细胞、GA-10(Clone 4)细胞、CAL-148细胞
SHEE Cells;背景说明：食管；上皮 Cells;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：MDA-453细胞、IHH4细胞、PANC 327细胞
H187 Cells;背景说明：经典小细胞肺癌；胸腔积液转移；男性;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：悬浮;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：alpha TC1 clone 6细胞、Nthy-ori 3.1细胞、NFS-60细胞
Caco-2人结直肠腺癌复苏细胞保种中心|带STR证书
BayGenomics ES cell line RRR062 Cells(提供STR鉴定图谱)
BayGenomics ES cell line YHD033 Cells(提供STR鉴定图谱)
HMB-50 Cells(提供STR鉴定图谱)
PCRP-FOSL2-1B1 Cells(提供STR鉴定图谱)
D8-SBMC Cells(提供STR鉴定图谱)
HPS1587 Cells(提供STR鉴定图谱)
" "PubMed=7459858
Rousset M., Zweibaum A., Fogh J.
Presence of glycogen and growth-related variations in 58 cultured human tumor cell lines of various tissue origins.
Cancer Res. 41:1165-1170(1981)
PubMed=3518877; DOI=10.3109/07357908609038260
Fogh J.
Human tumor lines for cancer research.
Cancer Invest. 4:157-184(1986)
PubMed=3349466
Chantret I., Barbat A., Dussaulx E., Brattain M.G., Zweibaum A.
Epithelial polarity, villin expression, and enterocytic differentiation of cultured human colon carcinoma cells: a survey of twenty cell lines.
Cancer Res. 48:1936-1942(1988)
PubMed=2914637; DOI=10.1016/0016-5085(89)90897-4
Hidalgo I.J., Raub T.J., Borchardt R.T.
Characterization of the human colon carcinoma cell line (Caco-2) as a model system for intestinal epithelial permeability.
Gastroenterology 96:736-749(1989)
PubMed=7764660; DOI=10.1007/BF00749813
Hashimoto K., Shimizu M.
Epithelial properties of human intestinal Caco-2 cells cultured in a serum-free medium.
Cytotechnology 13:175-184(1993)
PubMed=8253353; DOI=10.1016/0016-5085(93)91076-t
Chastre E., Empereur S., Di Gioia Y., El Mahdani N., Mareel M.M., Vleminckx K.L., Van Roy F.M., Bex V., Emami S., Spandidos D.A., Gespach C.
Neoplastic progression of human and rat intestinal cell lines after transfer of the ras and polyoma middle T oncogenes.
Gastroenterology 105:1776-1789(1993)
PubMed=8508948; DOI=10.1111/j.1432-0436.1993.tb00645.x
de Bruine A.P., de Vries J.E., Dinjens W.N.M., Moerkerk P.T.M., van der Linden E.P.M., Pijls M.M.J., ten Kate J., Bosman F.T.
Human Caco-2 cells transfected with c-Ha-Ras as a model for endocrine differentiation in the large intestine.
Differentiation 53:51-60(1993)
PubMed=9294210; DOI=10.1073/pnas.94.19.10330; PMCID=PMC23362
Ilyas M., Tomlinson I.P.M., Rowan A.J., Pignatelli M., Bodmer W.F.
Beta-catenin mutations in cell lines established from human colorectal cancers.
Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 94:10330-10334(1997)
PubMed=10092214; DOI=10.1002/(SICI)1097-4652(199812)177:4<618::aid-jcp12>3.0.CO;2-R
Levy P., Robin H., Kornprobst M., Capeau J., Cherqui G.
Enterocytic differentiation of the human Caco-2 cell line correlates with alterations in integrin signaling.
J. Cell. Physiol. 177:618-627(1998)
PubMed=10612807; DOI=10.1002/(SICI)1098-2264(200002)27:2<183::aid-gcc10>3.0.CO;2-P; PMCID=PMC4721570
Ghadimi B.M., Sackett D.L., Difilippantonio M.J., Schrock E., Neumann T., Jauho A., Auer G., Ried T.
Centrosome amplification and instability occurs exclusively in aneuploid, but not in diploid colorectal cancer cell lines, and correlates with numerical chromosomal aberrations.
Genes Chromosomes Cancer 27:183-190(2000)
PubMed=10737795; DOI=10.1073/pnas.97.7.3352; PMCID=PMC16243
Rowan A.J., Lamlum H., Ilyas M., Wheeler J.M.D., Straub J., Papadopoulou A., Bicknell D.C., Bodmer W.F., Tomlinson I.P.M.
APC mutations in sporadic colorectal tumors: a mutational 'hotspot' and interdependence of the 'two hits'.
Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 97:3352-3357(2000)
PubMed=11414198; DOI=10.1007/s004320000207
Lahm H., Andre S., Hoeflich A., Fischer J.R., Sordat B., Kaltner H., Wolf E., Gabius H.-J.
Comprehensive galectin fingerprinting in a panel of 61 human tumor cell lines by RT-PCR and its implications for diagnostic and therapeutic procedures.
J. Cancer Res. Clin. Oncol. 127:375-386(2001)
PubMed=11416159; DOI=10.1073/pnas.121616198; PMCID=PMC35459
Masters J.R.W., Thomson J.A., Daly-Burns B., Reid Y.A., Dirks W.G., Packer P., Toji L.H., Ohno T., Tanabe H., Arlett C.F., Kelland L.R., Harrison M., Virmani A.K., Ward T.H., Ayres K.L., Debenham P.G.
Short tandem repeat profiling provides an international reference standard for human cell lines.
Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 98:8012-8017(2001)
PubMed=11668190; DOI=10.1177/002215540104901105
Quentmeier H., Osborn M., Reinhardt J., Zaborski M., Drexler H.G.
Immunocytochemical analysis of cell lines derived from solid tumors.
J. Histochem. Cytochem. 49:1369-1378(2001)
PubMed=12584437; DOI=10.1159/000068544
Melcher R., Koehler S., Steinlein C., Schmid M., Mueller C.R., Luehrs H., Menzel T., Scheppach W., Moerk H., Scheurlen M., Koehrle J., Al-Taie O.
Spectral karyotype analysis of colon cancer cell lines of the tumor suppressor and mutator pathway.
Cytogenet. Genome Res. 98:22-28(2002)
PubMed=14599474; DOI=10.1016/S0887-2333(03)00095-X
Ranaldi G., Consalvo R., Sambuy Y., Scarino M.L.
Permeability characteristics of parental and clonal human intestinal Caco-2 cell lines differentiated in serum-supplemented and serum-free media.
Toxicol. In Vitro 17:761-767(2003)
PubMed=15316659; DOI=10.1007/s00018-004-4222-9; PMCID=PMC7079841
Cinatl J. Jr., Hoever G., Morgenstern B., Preiser W., Vogel J.-U., Hofmann W.-K., Bauer G., Michaelis M., Rabenau H.F., Doerr H.-W.
Infection of cultured intestinal epithelial cells with .
Cell. Mol. Life Sci. 61:2100-2112(2004)
PubMed=15731278; DOI=10.1128/JVI.79.6.3846-3850.2005; PMCID=PMC1075706
Mossel E.C., Huang C., Narayanan K., Makino S., Tesh R.B., Peters C.J.
Exogenous ACE2 expression allows refractory cell lines to support replication.
J. Virol. 79:3846-3850(2005)
PubMed=15868485; DOI=10.1007/s10565-005-0085-6
Sambuy Y., De Angelis I., Ranaldi G., Scarino M.L., Stammati A., Zucco F.
The Caco-2 cell line as a model of the intestinal barrier: influence of cell and culture-related factors on Caco-2 cell functional characteristics.
Cell Biol. Toxicol. 21:1-26(2005)
PubMed=16418264; DOI=10.1073/pnas.0510146103; PMCID=PMC1327731
Liu Y., Bodmer W.F.
Analysis of p53 mutations and their expression in 56 colorectal cancer cell lines.
Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 103:976-981(2006)
PubMed=16854228; DOI=10.1186/1476-4598-5-29; PMCID=PMC1550420
Bandres Elizalde E.M., Cubedo E., Agirre X., Malumbres R., Zarate R., Ramirez N., Abajo A., Navarro A., Moreno I., Monzo M., Garcia-Foncillas J.
Identification by real-time PCR of 13 mature microRNAs differentially expressed in colorectal cancer and non-tumoral tissues.
Mol. Cancer 5:29.1-29.10(2006)
PubMed=18258742; DOI=10.1073/pnas.0712176105; PMCID=PMC2268141
Emaduddin M., Bicknell D.C., Bodmer W.F., Feller S.M.
Cell growth, global phosphotyrosine elevation, and c-Met phosphorylation through Src family kinases in colorectal cancer cells.
Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 105:2358-2362(2008)
PubMed=20570890; DOI=10.1158/0008-5472.CAN-10-0192; PMCID=PMC2943514
Janakiraman M., Vakiani E., Zeng Z.-S., Pratilas C.A., Taylor B.S., Chitale D., Halilovic E., Wilson M., Huberman K., Ricarte Filho J.C.M., Persaud Y., Levine D.A., Fagin J.A., Jhanwar S.C., Mariadason J.M., Lash A., Ladanyi M., Saltz L.B., Heguy A., Paty P.B., Solit D.B.
Genomic and biological characterization of exon 4 KRAS mutations in human cancer.
Cancer Res. 70:5901-5911(2010)
PubMed=20606684; DOI=10.1038/sj.bjc.6605780; PMCID=PMC2920028
Bracht K., Nicholls A.M., Liu Y., Bodmer W.F.
5-fluorouracil response in a large panel of colorectal cancer cell lines is associated with mismatch repair deficiency.
Br. J. Cancer 103:340-346(2010)
PubMed=20831567; DOI=10.1111/j.1582-4934.2010.01170.x; PMCID=PMC3918049
Ma Y.-L., Zhang P., Wang F., Moyer M.P., Yang J.-J., Liu Z.-H., Peng J.-Y., Chen H.-Q., Zhou Y.-K., Liu W.-J., Qin H.-L.
Human embryonic stem cells and metastatic colorectal cancer cells shared the common endogenous human microRNA-26b.
J. Cell. Mol. Med. 15:1941-1954(2011)
PubMed=21607810; DOI=10.1208/s12248-011-9283-8; PMCID=PMC3160153
Borchardt R.T.
Hidalgo, I.J., Raub, T.J., and Borchardt, R.T.: Characterization of the human colon carcinoma cell line (Caco-2) as a model system for intestinal epithelial permeability, Gastroenterology, 96, 736-749, 1989 -- the backstory.
AAPS J. 13:323-327(2011)
PubMed=23272949; DOI=10.1186/1755-8794-5-66; PMCID=PMC3543849
Schlicker A., Beran G., Chresta C.M., McWalter G., Pritchard A., Weston S., Runswick S., Davenport S., Heathcote K., Castro D.A., Orphanides G., French T., Wessels L.F.A.
Subtypes of primary colorectal tumors correlate with response to targeted treatment in colorectal cell lines.
BMC Med. Genomics 5:66.1-66.15(2012)
PubMed=23932154; DOI=10.1016/j.radonc.2013.06.032
Salendo J., Spitzner M., Kramer F., Zhang X., Jo P., Wolff H.A., Kitz J., Kaulfuss S., Beissbarth T., belstein M., Ghadimi M., Grade M., Gaedcke J.
Identification of a microRNA expression signature for chemoradiosensitivity of colorectal cancer cells, involving miRNAs-320a, -224, -132 and let7g.
Radiother. Oncol. 108:451-457(2013)
PubMed=24042735; DOI=10.1038/oncsis.2013.35; PMCID=PMC3816225
Ahmed D., Eide P.W., Eilertsen I.A., Danielsen S.A., Eknaes M., Hektoen M., Lind G.E., Lothe R.A.
Epigenetic and genetic features of 24 colon cancer cell lines.
Oncogenesis 2:e71.1-e71.8(2013)
PubMed=24755471; DOI=10.1158/0008-5472.CAN-14-0013
Mouradov D., Sloggett C., Jorissen R.N., Love C.G., Li S., Burgess A.W., Arango D., Strausberg R.L., Buchanan D., Wormald S., O'Connor L., Wilding J.L., Bicknell D.C., Tomlinson I.P.M., Bodmer W.F., Mariadason J.M., Sieber O.M.
Colorectal cancer cell lines are representative models of the main molecular subtypes of primary cancer.
Cancer Res. 74:3238-3247(2014)
PubMed=25960936; DOI=10.4161/21624011.2014.954893; PMCID=PMC4355981
Boegel S., Lower M., Bukur T., Sahin U., Castle J.C.
A catalog of HLA type, HLA expression, and neo-epitope candidates in human cancer cell lines.
OncoImmunology 3:e954893.1-e954893.12(2014)
PubMed=25485619; DOI=10.1038/nbt.3080
Klijn C., Durinck S., Stawiski E.W., Haverty P.M., Jiang Z.-S., Liu H.-B., Degenhardt J., Mayba O., Gnad F., Liu J.-F., Pau G., Reeder J., Cao Y., Mukhyala K., Selvaraj S.K., Yu M.-M., Zynda G.J., Brauer M.J., Wu T.D., Gentleman R.C., Manning G., Yauch R.L., Bourgon R., Stokoe D., Modrusan Z., Neve R.M., de Sauvage F.J., Settleman J., Seshagiri S., Zhang Z.-M.
A comprehensive transcriptional portrait of human cancer cell lines.
Nat. Biotechnol. 33:306-312(2015)
PubMed=25841592; DOI=10.1016/j.jprot.2015.03.019
Piersma S.R., Knol J.C., de Reus I., Labots M., Sampadi B.K., Pham T.V., Ishihama Y., Verheul H.M.W., Jimenez C.R.
Feasibility of label-free phosphoproteomics and application to base-line signaling of colorectal cancer cell lines.
J. Proteomics 127:247-258(2015)
PubMed=25877200; DOI=10.1038/nature14397
Yu M., Selvaraj S.K., Liang-Chu M.M.Y., Aghajani S., Busse M., Yuan J., Lee G., Peale F.V., Klijn C., Bourgon R., Kaminker J.S., Neve R.M.
A resource for cell line authentication, annotation and quality control.
Nature 520:307-311(2015)
PubMed=25926053; DOI=10.1038/ncomms8002
Medico E., Russo M., Picco G., Cancelliere C., Valtorta E., Corti G., Buscarino M., Isella C., Lamba S., Martinoglio B., Veronese S., Siena S., Sartore-Bianchi A., Beccuti M., Mottolese M., Linnebacher M., Cordero F., Di Nicolantonio F., Bardelli A.
The molecular landscape of colorectal cancer cell lines unveils clinically actionable kinase targets.
Nat. Commun. 6:7002.1-7002.10(2015)
PubMed=25944804; DOI=10.1158/1078-0432.CCR-14-2457
Bazzocco S., Dopeso H., Carton-Garcia F., Macaya I., Andretta E., Chionh F., Rodrigues P., Garrido M., Alazzouzi H., Nieto R., Sanchez A., Schwartz S. Jr., Bilic J., Mariadason J.M., Arango D.
Highly expressed genes in rapidly proliferating tumor cells as new targets for colorectal cancer treatment.
Clin. Cancer Res. 21:3695-3704(2015)
PubMed=26589293; DOI=10.1186/s13073-015-0240-5; PMCID=PMC4653878
Scholtalbers J., Boegel S., Bukur T., Byl M., Goerges S., Sorn P., Loewer M., Sahin U., Castle J.C.
TCLP: an online cancer cell line catalogue integrating HLA type, predicted neo-epitopes, virus and gene expression.
Genome Med. 7:118.1-118.7(2015)
PubMed=29787057; DOI=10.1007/978-3-319-16104-4_10
Lea T.
Caco-2 cell line.
(In book chapter) The impact of food bioactives on health. In vitro and ex vivo models; Verhoeckx K., Cotter P., Lopez-Exposito I., Kleiveland C., Lea T., Mackie A., Requena T., Swiatecka D., Wichers H. (eds.); pp.103-111; Springer; Cham; Switzerland (2015)
PubMed=26537799; DOI=10.1074/mcp.M115.051235; PMCID=PMC4762531
Holst S., Deuss A.J.M., van Pelt G.W., van Vliet S.J., Garcia-Vallejo J.J., Koeleman C.A.M., Deelder A.M., Mesker W.E., Tollenaar R.A.E.M., Rombouts Y., Wuhrer M.
N-glycosylation profiling of colorectal cancer cell lines reveals association of fucosylation with differentiation and caudal type homebox 1 (CDX1)/villin mRNA expression.
Mol. Cell. Proteomics 15:124-140(2016)
PubMed=26869432; DOI=10.1016/j.xphs.2015.10.030
Olander M., Wisniewski J.R., Matsson P., Lundquist P., Artursson P.
The proteome of filter-grown Caco-2 cells with a focus on proteins involved in drug disposition.
J. Pharm. Sci. 105:817-827(2016)
PubMed=28196595; DOI=10.1016/j.ccell.2017.01.005; PMCID=PMC5501076
Li J., Zhao W., Akbani R., Liu W.-B., Ju Z.-L., Ling S.-Y., Vellano C.P., Roebuck P., Yu Q.-H., Eterovic A.K., Byers L.A., Davies M.A., Deng W.-L., Gopal Y.N.V., Chen G., von Euw E.M., Slamon D.J., Conklin D., Heymach J.V., Gazdar A.F., Minna J.D., Myers J.N., Lu Y.-L., Mills G.B., Liang H.
Characterization of human cancer cell lines by reverse-phase protein arrays.
Cancer Cell 31:225-239(2017)
PubMed=28683746; DOI=10.1186/s12943-017-0691-y; PMCID=PMC5498998
Berg K.C.G., Eide P.W., Eilertsen I.A., Johannessen B., Bruun J., Danielsen S.A., Bjornslett M., Meza-Zepeda L.A., Eknaes M., Lind G.E., Myklebost O., Skotheim R.I., Sveen A., Lothe R.A.
Multi-omics of 34 colorectal cancer cell lines -- a resource for biomedical studies.
Mol. Cancer 16:116.1-116.16(2017)
PubMed=29101300; DOI=10.15252/msb.20177701; PMCID=PMC5731344
Frejno M., Zenezini Chiozzi R., Wilhelm M., Koch H., Zheng R.-S., Klaeger S., Ruprecht B., Meng C., Kramer K., Jarzab A., Heinzlmeir S., Johnstone E., Domingo E., Kerr D.J., Jesinghaus M., Slotta-Huspenina J., Weichert W., Knapp S., Feller S.M., Kuster B.
Pharmacoproteomic characterisation of human colon and rectal cancer.
Mol. Syst. Biol. 13:951-951(2017)
PubMed=30894373; DOI=10.1158/0008-5472.CAN-18-2747; PMCID=PMC6445675
Dutil J., Chen Z.-H., Monteiro A.N.A., Teer J.K., Eschrich S.A.
An interactive resource to probe genetic diversity and estimated ancestry in cancer cell lines.
Cancer Res. 79:1263-1273(2019)
PubMed=31068700; DOI=10.1038/s41586-019-1186-3; PMCID=PMC6697103
Ghandi M., Huang F.W., Jane-Valbuena J., Kryukov G.V., Lo C.C., McDonald E.R. 3rd, Barretina J.G., Gelfand E.T., Bielski C.M., Li H.-X., Hu K., Andreev-Drakhlin A.Y., Kim J., Hess J.M., Haas B.J., Aguet F., Weir B.A., Rothberg M.V., Paolella B.R., Lawrence M.S., Akbani R., Lu Y.-L., Tiv H.L., Gokhale P.C., de Weck A., Mansour A.A., Oh C., Shih J., Hadi K., Rosen Y., Bistline J., Venkatesan K., Reddy A., Sonkin D., Liu M., Lehar J., Korn J.M., Porter D.A., Jones M.D., Golji J., Caponigro G., Taylor J.E., Dunning C.M., Creech A.L., Warren A.C., McFarland J.M., Zamanighomi M., Kauffmann A., Stransky N., Imielinski M., Maruvka Y.E., Cherniack A.D., Tsherniak A., Vazquez F., Jaffe J.D., Lane A.A., Weinstock D.M., Johannessen C.M., Morrissey M.P., Stegmeier F., Schlegel R., Hahn W.C., Getz G., Mills G.B., Boehm J.S., Golub T.R., Garraway L.A., Sellers W.R.
Next-generation characterization of the Cancer Cell Line Encyclopedia.
Nature 569:503-508(2019)"
