"RKO人结肠腺癌细胞全年复苏|已有STR图谱
传代比例：1:2-1:4(首次传代建议1:2)
生长特性：贴壁生长
【细胞培养经验分享】启蒙老师的重要性：一般进实验室都有师兄师姐带着做，他们就是你做细胞的启蒙老师。他们的操作手法、细节、理论讲解就成了你操作的准则，如营养液、细胞瓶的摆放位置、灭菌处理程序、开盖手法、细胞吹打手法等等。要学会他们的正确操作，在第一次的时候就要重视。像养孩子一样养细胞，细胞有时真的很脆弱，最好每天都去看看它，以防止出现培养箱缺水、缺二氧化碳、停电、温度不够等异常现象，也好及时解决这些意外，避免重复实验带来的更大痛苦。好细胞要及时保种：细胞要分批传代，这样即使有一批出了问题，还有一批备用的。像后者一般人可能不容易做到。但这是我血的教训，有一次细胞污染了，全军覆没。当时可后悔没有保种。细胞跟人一样，不同的细胞，培养特性是不一样的。培养过程中要细细体会，不同细胞系使用不同的培养基和血清。
换液周期：每周2-3次
PCI-4.2 Cells;背景说明：喉鳞癌；淋巴结转移；男性;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：CWR22-R1细胞、D-283细胞、DMS114细胞
NCI-SNU-668 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２传代;生长特性：贴壁或悬浮，详见产品说明书部分;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：B16-BL6细胞、PATU-S细胞、L2细胞
RWPE-2 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：３传代,２-３天传一代。;生长特性：贴壁生长;形态特性：上皮细胞;相关产品有：C 643细胞、SF-539细胞、NT2D1细胞
背景信息：RKO是一个低分化的结肠癌细胞系。RKO细胞含有野生型P５３，但缺乏人甲状腺受体核受体(h-TRbeta１)。RKO细胞的P５３蛋白的水平高于RKO-E６细胞。RKO细胞系是RKO-E６和RKO-AS４５-１的亲本细胞系。该细胞系在裸鼠中成瘤，且在软琼脂中形成集落。
RKO人结肠腺癌细胞全年复苏|已有STR图谱
产品包装：复苏发货：T25培养瓶(一瓶)或冻存发货：1ml冻存管(两支)
DSMZ菌株保藏中心成立于1969年，是德国的国家菌种保藏中心。该中心一直致力于细菌、真菌、质粒、抗菌素、人体和动物细胞、植物病毒等的分类、鉴定和保藏工作。DSMZ菌种保藏中心是欧洲规模最大的生物资源中心，保藏有动物细胞500多株。Riken BRC成立于1920年，是英国的国家菌种保藏中心。该中心一直致力于细菌、真菌、植物病毒等的分类、鉴定和保藏工作。日本Riken BRC(Riken生物资源保藏中心)是全球三大典型培养物收集中心之一。Riken保藏中心提供了很多细胞系。在世界范围内，这些细胞系，都在医学、科学和兽医中具有重要意义。Riken生物资源中心支持了各种学术、健康、食品和兽医机构的研究工作，并在世界各地不同组织的微生物实验室和研究机构中使用。
A-2058 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：６-１：１２传代，２-３天换液１次。;生长特性：贴壁生长;形态特性：上皮细胞;相关产品有：U-2-OS细胞、MC-3T3细胞、PK15细胞
PC-3 Cells;背景说明：PC-３源于一位６２岁白人男性IV级前列腺腺癌患者的骨转移灶；有低水平的酸性酶活性和５-α-睾酮还原酶活性。;传代方法：消化３-５分钟，１：２,３天内可长满;生长特性：贴壁生长,在软琼脂中成簇生长，并可悬浮生长;形态特性：上皮样;相关产品有：Lec1细胞、C57 Mouse Tumor 93细胞、H2141细胞
NKM1 Cells;背景说明：急性髓系白血病；男性;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：悬浮;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：ECC 10细胞、RD-2细胞、766T细胞
Anti-L9 Cells(提供STR鉴定图谱)
来源说明：细胞主要来源ATCC、ECACC、DSMZ、RIKEN等细胞库
物种来源：人源、鼠源等其它物种来源
RKO人结肠腺癌细胞全年复苏|已有STR图谱
形态特性：上皮细胞样
贴壁消化难题：１，先用PBS 把细胞洗两遍，使瓶内没有血清了，减少对胰酶的中和，然后用新配的０.２５%的胰酶加入３ml左右，放在３７度，然后可以在细胞有些消化下来时，拿着瓶口，运用手腕的力量轻轻震荡瓶内体，这样细胞很快就下来了，还不需要吹打，分散也均匀；２，成团、絮状：消化里加入eda可以减少细胞成团的现象，血清可以终止胰酶的作用，如果是进口血清的话也能终止eda的作用。用胰酶消化后胰酶可以倒掉，也可以不倒，直接加血清终止，如果消化中加入了eda的话，就要将消化倒干净，如果细胞贴壁要求不是很严格的话，一般不需要进行离心。鼻咽癌细胞的贴壁能力很强，用０.５%胰酶(含０.１%EDA)一般要消化１２~１５min。用PBS洗涤时要洗净残余的培养基，加入胰酶后在培养箱中消化(避免细胞室温下受损以及在此温度时胰酶活性Zui强)至细胞收缩变圆(可显微镜下观察)且有少许细胞脱落(有流下来的趋势)，随后立即弃去胰酶(如果脱落的细胞很多且需要大量细胞实验，则不能弃去胰酶)，加入培养基仔细吹打(不能用无血清培养基或者PBS替代，否则细胞聚集成团块或絮状)。一般我都离心一次弃去上清(去除残留的胰酶及漂浮的死细胞或细胞碎片)；消化过度：马上用培养基中和，用吸管吹打细胞，收集全部的细胞到以无菌的离心管中８００RPM ３分钟。弃上清，用全培重悬，换新的培养瓶继续培养，状态不HAO的细胞在培养的过程中会死亡脱落，在换的时候可以清除掉！
OCIAML2 Cells;背景说明：急性髓系白血病；男性;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：悬浮;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：DF1细胞、Hk-2细胞、GM00637I细胞
Scott Cells;背景说明：胚胎；自发永生;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：GOS3细胞、SCC 4细胞、SW1116细胞
Panc_08_13 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２传代;生长特性：贴壁生长;形态特性：上皮样;相关产品有：CCD-112CoN细胞、Jurkat 77细胞、PCI-4M细胞
U-266 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：３传代,２-３天传一代;生长特性：悬浮生长 ;形态特性：淋巴母细胞样;相关产品有：EA.hy 926细胞、NCI H508细胞、HCC-1500细胞
NCI-SNU-387 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２传代;生长特性：贴壁生长;形态特性：上皮样;相关产品有：Scott and White No. 13细胞、SK-BR-3细胞、Y1细胞
BJAB-1 Cells;背景说明：Burkitt's淋巴瘤;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：悬浮;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：SF767细胞、SkMel31细胞、Hs739T细胞
NTera-2D1 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁或悬浮，详见产品说明书部分;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：HuH7细胞、NALM-6-M1细胞、TKB1细胞
HPAF-I Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁或悬浮，详见产品说明书部分;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：KM.12细胞、HC11 Mammary Epithelium细胞、Hs 832(C).T细胞
Panc-813 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２传代;生长特性：贴壁生长;形态特性：上皮样;相关产品有：IA-LM细胞、PCI:SG-231细胞、OE-19细胞
HRC-99 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁或悬浮，详见产品说明书部分;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：CW-2细胞、HA1800细胞、MO59J细胞
Keio University-19-19 Cells;背景说明：膀胱癌；男性;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：SF539细胞、RPMI no 8226细胞、IHH-4细胞
SK-MEL28 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：３-１：８传代，２-３天换液１次。;生长特性：贴壁生长;形态特性：星形的;相关产品有：Hs 606.T细胞、Hs863T细胞、FRTL-5 Cl 2细胞
GM05862 Cells;背景说明：胚胎；成纤维；自发永生；雄性；Swiss albino;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：H-1404细胞、Hs695T细胞、OVCA-433细胞
NCIH2107 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：３-４天换液１次。;生长特性：悬浮生长 ;形态特性：上皮细胞;相关产品有：H295R细胞、CD-18细胞、Hs 822.T细胞
H1954 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁或悬浮，详见产品说明书部分;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：Eca109细胞、HEK-293-FT细胞、EAC细胞
OCLY8 Cells;背景说明：弥漫大B淋巴瘤;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：悬浮;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：PF-382细胞、Hs940T细胞、U251MG细胞
HHL5 Cells;背景说明：肝；HPV１６转化；男性;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：NCI-H322细胞、HTori3细胞、DOK细胞
Abcam A-549 PROX1 KO Cells(提供STR鉴定图谱)
ACHhomo-8859-3 Cells(提供STR鉴定图谱)
BayGenomics ES cell line CSH299 Cells(提供STR鉴定图谱)
BayGenomics ES cell line RRX123 Cells(提供STR鉴定图谱)
BCIRL-AtuE-1127-SGS C11 Cells(提供STR鉴定图谱)
CHO-K1-UCSC Cells(提供STR鉴定图谱)
DA02636 Cells(提供STR鉴定图谱)
ESi053-A Cells(提供STR鉴定图谱)
GM07205 Cells(提供STR鉴定图谱)
NCI-H358 Cells;背景说明：１９８１年从一位开始化疗之前的患者的肿瘤组织中分离建株。超微结构研究表明细胞质中有Clara细胞的特征结构细胞表达主要的肺表面结合蛋白SP-A的蛋白和RNA。不表达SP-B和SP-C。他们在软琼脂中的克隆形成效率为０.８３%。;传代方法：消化３-５分钟。１：２。３天内可长满。;生长特性：贴壁生长;形态特性：上皮样;相关产品有：OCI Ly3细胞、3T3F442A细胞、WPMY1细胞
A431 Cells;背景说明：该细胞源自一位患有皮肤鳞状细胞癌的８５岁女性，是GiardDJ等人建立的一系列细胞株中的一株。该细胞在免疫抑制小鼠体内可成瘤，在琼脂上培养可形成克隆；是一个超三倍体人细胞株。;传代方法：１：２传代;生长特性：贴壁生长;形态特性：上皮样;相关产品有：HS688AT细胞、H740细胞、HCC 94细胞
293/EBNA-1 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：４-１：１０传代；每周２次。;生长特性：贴壁生长;形态特性：上皮细胞样;相关产品有：SK_N_FI细胞、Ly3细胞、U2-OS细胞
CTLA4Ig-24 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁或悬浮，详见产品说明书部分;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：HEK293-H细胞、NCTC-929细胞、A2008细胞
LI7 Cells;背景说明：人肝癌细胞株。这株细胞从裸鼠体外移植瘤中建立。;传代方法：１：２传代;生长特性：贴壁生长 ;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：BxPC-3细胞、3T3 J2细胞、T173细胞
Kit 225-K6 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁或悬浮，详见产品说明书部分;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：3T3-F442A细胞、PIEC细胞、SK-MEL-3细胞
Los Angeles Prostate Cancer-4 Cells;背景说明：前列腺癌；淋巴结转移；男性;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：SF295细胞、HKBML细胞、HRVEC细胞
NCIH358 Cells;背景说明：１９８１年从一位开始化疗之前的患者的肿瘤组织中分离建株。超微结构研究表明细胞质中有Clara细胞的特征结构细胞表达主要的肺表面结合蛋白SP-A的蛋白和RNA。不表达SP-B和SP-C。他们在软琼脂中的克隆形成效率为０.８３%。;传代方法：消化３-５分钟。１：２。３天内可长满。;生长特性：贴壁生长;形态特性：上皮样;相关产品有：NOMO-1细胞、Giant Cell Tumor细胞、COS-1细胞
RKO人结肠腺癌细胞全年复苏|已有STR图谱
MDA-MB-468 Cells;背景说明：该细胞是１９７７年由CailleauR等从一位患有转移性乳腺癌的５１岁黑人女性的胸腔积液中分离得到的。虽然供体组织的G６PD等位基因杂合，但此细胞株始终表现为G６PDA表型。P５３基因２７３位密码子存在G→A突变，从而导致Arg→His替代。每个细胞上存在１×１０６个EGF受体。;传代方法：１：２-１：４传代；２-３天换液１次;生长特性：贴壁生长;形态特性：上皮样;相关产品有：V79-4细胞、H82细胞、Ra No. 1细胞
GM16136 Cells;背景说明：肺；自发永生；雄性;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：RGM1细胞、MUS-M1细胞、C3H10T1-2细胞
COLO679 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２传代;生长特性：贴壁生长 ;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：EPC细胞、Hs-940细胞、SCH细胞
ESC Cells;背景说明：表皮干 Cells;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：Y-79细胞、HS-294T细胞、HCe-8693细胞
HT-1376 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２传代;生长特性：贴壁生长;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：SUSM1细胞、NCI-H716细胞、KBM7细胞
HT-1376 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２传代;生长特性：贴壁生长;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：SUSM1细胞、NCI-H716细胞、KBM7细胞
T-ALL 1 Cells;背景说明：该细胞源于一名复发T-ALL（急性T淋巴细胞性白血病）的儿童的外周血；具有很强的细胞毒性，体内体外实验中都能破坏肿瘤细胞；IL-２可使细胞更好地生长；α/β TCR阳性，γ/δ TCR阴性；可产生IFNγ、TNF-α和GM-CSF。;传代方法：维持细胞密度在４×１０５-１×１０６ cells/ml之间，２-３天换液１次 ;生长特性：悬浮生长;形态特性：淋巴母细胞;相关产品有：ZR75-30细胞、NUGC-3细胞、OCI-Ly 19细胞
GSC#394 Cells(提供STR鉴定图谱)
HAP1 PPP1R37 (-) 2 Cells(提供STR鉴定图谱)
DC 2.4 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２传代;生长特性：贴壁生长 ;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：526细胞、HFLS-OA细胞、NBL-S细胞
A.704 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：３—１：４传代，每周换液２-３次;生长特性：贴壁生长;形态特性：上皮细胞样;相关产品有：HEK293-EBNA细胞、16HBE140细胞、HSC-2细胞
UWB1.289+BRCA1 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２传代;生长特性：贴壁生长 ;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：Capan 1细胞、MDA-MB-435细胞、SUM149细胞
GM16136 Cells;背景说明：肺；自发永生；雄性;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：RGM1细胞、MUS-M1细胞、C3H10T1-2细胞
SL-29 Cells;背景说明：胚成纤维细胞； White Leghorn SPAFAS;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：MB39细胞、LED-WiDr细胞、E0771细胞
SW837 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２—１：５传代，每周换液１-２次;生长特性：悬浮生长;形态特性：上皮细胞;相关产品有：MRC 5细胞、293AD细胞、EBC-1细胞
Oregon J-111 Cells;背景说明：单核细胞白血病;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：悬浮;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：RGC6细胞、hTERT-HME1细胞、ARIP细胞
CTSC-3 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁或悬浮，详见产品说明书部分;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：HFF细胞、Nb2-11细胞、SU-DHL-5细胞
HTM-4 Cells(提供STR鉴定图谱)
KUi013-A Cells(提供STR鉴定图谱)
MRC-iPS-68 Cells(提供STR鉴定图谱)
OC/CDE 14 Cells(提供STR鉴定图谱)
RLC-22 Cells(提供STR鉴定图谱)
Ubigene RAW 264.7 Ncf1 KO Cells(提供STR鉴定图谱)
YUMM1.1 Cells(提供STR鉴定图谱)
HCC827-GR-high2 Cells(提供STR鉴定图谱)
NCIH1355 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：每周换液２次。;生长特性：悬浮生长;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：HMSC细胞、D341细胞、T. T细胞
HNE-2 Cells;背景说明：鼻咽癌;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：KOPN-8细胞、CL1.0细胞、Hepa 1-6细胞
TE11 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：消化３-５分钟。１：２。３天内可长满。;生长特性：贴壁生长;形态特性：上皮样;相关产品有：Lung cancer-1/squamous细胞、OUMS-27细胞、U2OS细胞
HCC-4006 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：４-１：６传代，每周２-３次。;生长特性：贴壁生长;形态特性：上皮细胞样;相关产品有：SNU869细胞、H-841细胞、Suzhou Human Glioma-44细胞
U87 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁或悬浮，详见产品说明书部分;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：PANC1005细胞、ECC10细胞、RCM1细胞
U87 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁或悬浮，详见产品说明书部分;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：PANC1005细胞、ECC10细胞、RCM1细胞
OVCAR10 Cells;背景说明：卵巢癌；女性;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：U 937细胞、LS-180细胞、SAOS 2细胞
McARH7777 Cells;背景说明：肝癌；雌性；Buffalo;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：NCIADR.RES细胞、MRCV细胞、MASMC细胞
KRC Y Cells;背景说明：肾透明细胞癌；女性;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：L540细胞、B-95-8细胞、McG-1细胞
Panc-327 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２传代;生长特性：贴壁生长;形态特性：上皮样;相关产品有：HCEC-12细胞、SN12C细胞、SNU-C2B细胞
U-87-MG Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁或悬浮，详见产品说明书部分;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：MFHL-2细胞、A375细胞、T98 G细胞
UACC 812 Cells;背景说明：该细胞是由Liebovitz A等于１９８６年从一名４３岁的白人女性乳腺导管癌患者的乳腺切除肿瘤组织中分离建立的；手术前该病人曾接受过广泛的化疗。该细胞HER-２/neu癌基因序列有１５倍的扩增；雌激素受体ER、孕激素受体PR和糖蛋白P阴性。;传代方法：１：３传代；５-７天１次。 ;生长特性：贴壁生长;形态特性：上皮样;相关产品有：RL-952细胞、VMM5细胞、Tu212细胞
NBLAN5T Cells;背景说明：神经母细胞瘤；骨髓转移；男性;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：KFB细胞、HEL-299细胞、CEK细胞
NCI-H1155 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：每周换液２-３次。;生长特性：悬浮生长;形态特性：上皮细胞;相关产品有：H-146细胞、MDCK-II细胞、RSMC细胞
Ly10 Cells;背景说明：弥漫大B细胞淋巴瘤;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：悬浮;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：SK-LU-1细胞、NRK 52E细胞、HT 144细胞
SW48 NRAS (G12D/+) Cells(提供STR鉴定图谱)
G-Olig2 Cells;背景说明：胚胎干细胞；１２９X１/SvJ;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：C3H10T1-2细胞、SNUC1细胞、Calu 6细胞
Cloudman S91 melanoma Cells;背景说明：黑色素瘤；雄性；DBA;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：COLO 206细胞、CAL39细胞、NCI-522细胞
OCILY10 Cells;背景说明：弥漫大B细胞淋巴瘤;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：悬浮;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：HLF-a细胞、RSMC细胞、C3H10T1/2 clone8细胞
SBC3 Cells;背景说明：小细胞肺癌；骨髓转移；男性;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：L-M[TK-]细胞、RPE1细胞、WERI Rb-1细胞
HEK-293-F Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２传代;生长特性：贴壁生长；悬浮生长;形态特性：上皮细胞样;相关产品有：201T细胞、NCI-H1048细胞、STO细胞
HCC95 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁或悬浮，详见产品说明书部分;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：RN-c细胞、Neuro-2a细胞、SV-HUC细胞
Ramos 2G6.4C10 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法： 维持细胞浓度在２×１０５/ml-１×１０６/ml；根据细胞浓度每２-３天补液１次。;生长特性：悬浮生长 ;形态特性：淋巴母细胞样;相关产品有：NSI/1-Ag4-1细胞、Hx147细胞、no.11细胞
HCC0078 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２传代;生长特性：贴壁生长 ;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：HT144细胞、OVCAR-4细胞、HRCEC细胞
RKO人结肠腺癌细胞全年复苏|已有STR图谱
Medical University of Graz-Chordoma 1 Cells;背景说明：骶骨脊索瘤；女性;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：HEH2细胞、CA46细胞、B95-8细胞
KMB-17 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２传代;生长特性：贴壁生长 ;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：TE354T细胞、NCI-H2122细胞、HB 611细胞
118MG Cells;背景说明：注意： 据报道来自不同个体的胶质母细胞瘤细胞株U-１１８ MG (HTB-１５) 和 U-１３８ MG (HTB-１６)有着一致的VNTR和相近的STR模式。 U-１１８ MG 和 U-１３８ MG细胞遗传学上很相似并有至少六个衍生标记染色体。 这是１９６６年至１９６９年间J. Ponten和同事从恶性神经胶质瘤中构建的细胞株中的一株(其它包括ATCC HTB-１４和 ATCC HTB-１６ and ATCC HTB-１７)。 １９８７年用BM-Cycline培养６周去除了支原体污染。 ;传代方法： 消化３-５分钟。１：２传代。３天内可长满。;生长特性：贴壁生长;形态特性：混合型;相关产品有：SUP-B1细胞、GM-346细胞、MCA205细胞
NCI-BL6 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：３-４天换液１次。;生长特性：悬浮生长;形态特性：淋巴母细胞样 ;相关产品有：HEC251细胞、Panc4.03细胞、WI-38细胞
T-ALL-1 Cells;背景说明：该细胞源于一名复发T-ALL（急性T淋巴细胞性白血病）的儿童的外周血；具有很强的细胞毒性，体内体外实验中都能破坏肿瘤细胞；IL-２可使细胞更好地生长；α/β TCR阳性，γ/δ TCR阴性；可产生IFNγ、TNF-α和GM-CSF。;传代方法：维持细胞密度在４×１０５-１×１０６ cells/ml之间，２-３天换液１次 ;生长特性：悬浮生长;形态特性：淋巴母细胞;相关产品有：SW480E细胞、NCI-H1395细胞、SHI1细胞
MUS-M1 Cells;背景说明：小肠；平滑肌;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：MDA-MB231细胞、B16-F0细胞、Neuro2a细胞
BayGenomics ES cell line CSG234 Cells(提供STR鉴定图谱)
BayGenomics ES cell line RRU031 Cells(提供STR鉴定图谱)
BayGenomics ES cell line YTC614 Cells(提供STR鉴定图谱)
K33N Cells(提供STR鉴定图谱)
PCRP-ZFYVE20-1F6 Cells(提供STR鉴定图谱)
MMQ Cells(提供STR鉴定图谱)
" "PubMed=2253215
Baker S.J., Preisinger A.C., Jessup J.M., Paraskeva C., Markowitz S.D., Willson J.K.V., Hamilton S.R., Vogelstein B.
p53 gene mutations occur in combination with 17p allelic deletions as late events in colorectal tumorigenesis.
Cancer Res. 50:7717-7722(1990)
PubMed=8387205; DOI=10.1073/pnas.90.9.3988; PMCID=PMC46431
Kessis T.D., Slebos R.J.C., Nelson W.G., Kastan M.B., Plunkett B.S., Han S.M., Lorincz A.T., Hedrick L., Cho K.R.
Human papillomavirus 16 E6 expression disrupts the p53-mediated cellular response to DNA damage.
Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 90:3988-3992(1993)
PubMed=7798274; DOI=10.1016/S0021-9258(18)31687-9
Carrier F., Smith M.L., Bae I., Kilpatrick K.E., Lansing T.J., Chen C.-Y., Engelstein M., Friend S.H., Henner W.D., Gilmer T.M., Kastan M.B., Fornace A.J. Jr.
Characterization of human Gadd45, a p53-regulated protein.
J. Biol. Chem. 269:32672-32677(1994)
PubMed=7761852; DOI=10.1126/science.7761852
Markowitz S.D., Wang J., Myeroff L.L., Parsons R., Sun L.-Z., Lutterbaugh J.D., Fan R.S., Zborowska E., Kinzler K.W., Vogelstein B., Brattain M.G., Willson J.K.V.
Inactivation of the type II TGF-beta receptor in colon cancer cells with microsatellite instability.
Science 268:1336-1338(1995)
PubMed=7824277
Eshleman J.R., Lang E.Z., Bowerfind G.K., Parsons R., Vogelstein B., Willson J.K.V., Veigl M.L., Sedwick W.D., Markowitz S.D.
Increased mutation rate at the hprt locus accompanies microsatellite instability in colon cancer.
Oncogene 10:33-37(1995)
PubMed=9515795
Sparks A.B., Morin P.J., Vogelstein B., Kinzler K.W.
Mutational analysis of the APC/beta-catenin/Tcf pathway in colorectal cancer.
Cancer Res. 58:1130-1134(1998)
PubMed=9715273; DOI=10.1038/sj.onc.1201986
Eshleman J.R., Casey G., Kochera M.E., Sedwick W.D., Swinler S.E., Veigl M.L., Willson J.K.V., Schwartz S., Markowitz S.D.
Chromosome number and structure both are markedly stable in RER colorectal cancers and are not destabilized by mutation of p53.
Oncogene 17:719-725(1998)
PubMed=11314036; DOI=10.1038/sj.onc.1204211
Forgacs E., Wren J.D., Kamibayashi C., Kondo M., Xu X.L., Markowitz S.D., Tomlinson G.E., Muller C.Y., Gazdar A.F., Garner H.R., Minna J.D.
Searching for microsatellite mutations in coding regions in lung, breast, ovarian and colorectal cancers.
Oncogene 20:1005-1009(2001)
PubMed=12615714
Hempen P.M., Zhang L., Bansal R.K., Iacobuzio-Donahue C.A., Murphy K.M., Maitra A., Vogelstein B., Whitehead R.H., Markowitz S.D., Willson J.K.V., Yeo C.J., Hruban R.H., Kern S.E.
Evidence of selection for clones having genetic inactivation of the activin A type II receptor (ACVR2) gene in gastrointestinal cancers.
Cancer Res. 63:994-999(2003)
PubMed=16418264; DOI=10.1073/pnas.0510146103; PMCID=PMC1327731
Liu Y., Bodmer W.F.
Analysis of p53 mutations and their expression in 56 colorectal cancer cell lines.
Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 103:976-981(2006)
PubMed=16854228; DOI=10.1186/1476-4598-5-29; PMCID=PMC1550420
Bandres Elizalde E.M., Cubedo E., Agirre X., Malumbres R., Zarate R., Ramirez N., Abajo A., Navarro A., Moreno I., Monzo M., Garcia-Foncillas J.
Identification by real-time PCR of 13 mature microRNAs differentially expressed in colorectal cancer and non-tumoral tissues.
Mol. Cancer 5:29.1-29.10(2006)
PubMed=17363507; DOI=10.1158/1535-7163.MCT-06-0555
Wang J., Kuropatwinski K.K., Hauser J., Rossi M.R., Zhou Y.-F., Conway A., Kan J.L.C., Gibson N.W., Willson J.K.V., Cowell J.K., Brattain M.G.
Colon carcinoma cells harboring PIK3CA mutations display resistance to growth factor deprivation induced apoptosis.
Mol. Cancer Ther. 6:1143-1150(2007)
PubMed=18258742; DOI=10.1073/pnas.0712176105; PMCID=PMC2268141
Emaduddin M., Bicknell D.C., Bodmer W.F., Feller S.M.
Cell growth, global phosphotyrosine elevation, and c-Met phosphorylation through Src family kinases in colorectal cancer cells.
Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 105:2358-2362(2008)
PubMed=20164919; DOI=10.1038/nature08768; PMCID=PMC3145113
Bignell G.R., Greenman C.D., Davies H.R., Butler A.P., Edkins S., Andrews J.M., Buck G., Chen L., Beare D., Latimer C., Widaa S., Hinton J., Fahey C., Fu B.-Y., Swamy S., Dalgliesh G.L., Teh B.T., Deloukas P., Yang F.-T., Campbell P.J., Futreal P.A., Stratton M.R.
Signatures of mutation and selection in the cancer genome.
Nature 463:893-898(2010)
PubMed=20570890; DOI=10.1158/0008-5472.CAN-10-0192; PMCID=PMC2943514
Janakiraman M., Vakiani E., Zeng Z.-S., Pratilas C.A., Taylor B.S., Chitale D., Halilovic E., Wilson M., Huberman K., Ricarte Filho J.C.M., Persaud Y., Levine D.A., Fagin J.A., Jhanwar S.C., Mariadason J.M., Lash A., Ladanyi M., Saltz L.B., Heguy A., Paty P.B., Solit D.B.
Genomic and biological characterization of exon 4 KRAS mutations in human cancer.
Cancer Res. 70:5901-5911(2010)
PubMed=20606684; DOI=10.1038/sj.bjc.6605780; PMCID=PMC2920028
Bracht K., Nicholls A.M., Liu Y., Bodmer W.F.
5-fluorouracil response in a large panel of colorectal cancer cell lines is associated with mismatch repair deficiency.
Br. J. Cancer 103:340-346(2010)
PubMed=22278370; DOI=10.1074/mcp.M111.014050; PMCID=PMC3316730
Geiger T., Wehner A., Schaab C., Cox J., Mann M.
Comparative proteomic analysis of eleven common cell lines reveals ubiquitous but varying expression of most proteins.
Mol. Cell. Proteomics 11:M111.014050-M111.014050(2012)
PubMed=22460905; DOI=10.1038/nature11003; PMCID=PMC3320027
Barretina J.G., Caponigro G., Stransky N., Venkatesan K., Margolin A.A., Kim S., Wilson C.J., Lehar J., Kryukov G.V., Sonkin D., Reddy A., Liu M., Murray L., Berger M.F., Monahan J.E., Morais P., Meltzer J., Korejwa A., Jane-Valbuena J., Mapa F.A., Thibault J., Bric-Furlong E., Raman P., Shipway A., Engels I.H., Cheng J., Yu G.-Y.K., Yu J.-J., Aspesi P. Jr., de Silva M., Jagtap K., Jones M.D., Wang L., Hatton C., Palescandolo E., Gupta S., Mahan S., Sougnez C., Onofrio R.C., Liefeld T., MacConaill L.E., Winckler W., Reich M., Li N.-X., Mesirov J.P., Gabriel S.B., Getz G., Ardlie K., Chan V., Myer V.E., Weber B.L., Porter J., Warmuth M., Finan P., Harris J.L., Meyerson M.L., Golub T.R., Morrissey M.P., Sellers W.R., Schlegel R., Garraway L.A.
The Cancer Cell Line Encyclopedia enables predictive modelling of anticancer drug sensitivity.
Nature 483:603-607(2012)
PubMed=24042735; DOI=10.1038/oncsis.2013.35; PMCID=PMC3816225
Ahmed D., Eide P.W., Eilertsen I.A., Danielsen S.A., Eknaes M., Hektoen M., Lind G.E., Lothe R.A.
Epigenetic and genetic features of 24 colon cancer cell lines.
Oncogenesis 2:e71.1-e71.8(2013)
PubMed=24618588; DOI=10.1371/journal.pone.0091433; PMCID=PMC3950186
Chernobrovkin A.L., Zubarev R.A.
Detection of viral proteins in human cells lines by xeno-proteomics: elimination of the last valid excuse for not testing every cellular proteome dataset for viral proteins.
PLoS ONE 9:E91433-E91433(2014)
PubMed=24755471; DOI=10.1158/0008-5472.CAN-14-0013
Mouradov D., Sloggett C., Jorissen R.N., Love C.G., Li S., Burgess A.W., Arango D., Strausberg R.L., Buchanan D., Wormald S., O'Connor L., Wilding J.L., Bicknell D.C., Tomlinson I.P.M., Bodmer W.F., Mariadason J.M., Sieber O.M.
Colorectal cancer cell lines are representative models of the main molecular subtypes of primary cancer.
Cancer Res. 74:3238-3247(2014)
PubMed=25984343; DOI=10.1038/sdata.2014.35; PMCID=PMC4432652
Cowley G.S., Weir B.A., Vazquez F., Tamayo P., Scott J.A., Rusin S., East-Seletsky A., Ali L.D., Gerath W.F.J., Pantel S.E., Lizotte P.H., Jiang G.-Z., Hsiao J., Tsherniak A., Dwinell E., Aoyama S., Okamoto M., Harrington W., Gelfand E.T., Green T.M., Tomko M.J., Gopal S., Wong T.C., Li H.-B., Howell S., Stransky N., Liefeld T., Jang D., Bistline J., Meyers B.H., Armstrong S.A., Anderson K.C., Stegmaier K., Reich M., Pellman D., Boehm J.S., Mesirov J.P., Golub T.R., Root D.E., Hahn W.C.
Parallel genome-scale loss of function screens in 216 cancer cell lines for the identification of context-specific genetic dependencies.
Sci. Data 1:140035-140035(2014)
PubMed=25485619; DOI=10.1038/nbt.3080
Klijn C., Durinck S., Stawiski E.W., Haverty P.M., Jiang Z.-S., Liu H.-B., Degenhardt J., Mayba O., Gnad F., Liu J.-F., Pau G., Reeder J., Cao Y., Mukhyala K., Selvaraj S.K., Yu M.-M., Zynda G.J., Brauer M.J., Wu T.D., Gentleman R.C., Manning G., Yauch R.L., Bourgon R., Stokoe D., Modrusan Z., Neve R.M., de Sauvage F.J., Settleman J., Seshagiri S., Zhang Z.-M.
A comprehensive transcriptional portrait of human cancer cell lines.
Nat. Biotechnol. 33:306-312(2015)
PubMed=25841592; DOI=10.1016/j.jprot.2015.03.019
Piersma S.R., Knol J.C., de Reus I., Labots M., Sampadi B.K., Pham T.V., Ishihama Y., Verheul H.M.W., Jimenez C.R.
Feasibility of label-free phosphoproteomics and application to base-line signaling of colorectal cancer cell lines.
J. Proteomics 127:247-258(2015)
PubMed=25877200; DOI=10.1038/nature14397
Yu M., Selvaraj S.K., Liang-Chu M.M.Y., Aghajani S., Busse M., Yuan J., Lee G., Peale F.V., Klijn C., Bourgon R., Kaminker J.S., Neve R.M.
A resource for cell line authentication, annotation and quality control.
Nature 520:307-311(2015)
PubMed=25926053; DOI=10.1038/ncomms8002
Medico E., Russo M., Picco G., Cancelliere C., Valtorta E., Corti G., Buscarino M., Isella C., Lamba S., Martinoglio B., Veronese S., Siena S., Sartore-Bianchi A., Beccuti M., Mottolese M., Linnebacher M., Cordero F., Di Nicolantonio F., Bardelli A.
The molecular landscape of colorectal cancer cell lines unveils clinically actionable kinase targets.
Nat. Commun. 6:7002.1-7002.10(2015)
PubMed=25944804; DOI=10.1158/1078-0432.CCR-14-2457
Bazzocco S., Dopeso H., Carton-Garcia F., Macaya I., Andretta E., Chionh F., Rodrigues P., Garrido M., Alazzouzi H., Nieto R., Sanchez A., Schwartz S. Jr., Bilic J., Mariadason J.M., Arango D.
Highly expressed genes in rapidly proliferating tumor cells as new targets for colorectal cancer treatment.
Clin. Cancer Res. 21:3695-3704(2015)
PubMed=26589293; DOI=10.1186/s13073-015-0240-5; PMCID=PMC4653878
Scholtalbers J., Boegel S., Bukur T., Byl M., Goerges S., Sorn P., Loewer M., Sahin U., Castle J.C.
TCLP: an online cancer cell line catalogue integrating HLA type, predicted neo-epitopes, virus and gene expression.
Genome Med. 7:118.1-118.7(2015)
PubMed=26537799; DOI=10.1074/mcp.M115.051235; PMCID=PMC4762531
Holst S., Deuss A.J.M., van Pelt G.W., van Vliet S.J., Garcia-Vallejo J.J., Koeleman C.A.M., Deelder A.M., Mesker W.E., Tollenaar R.A.E.M., Rombouts Y., Wuhrer M.
N-glycosylation profiling of colorectal cancer cell lines reveals association of fucosylation with differentiation and caudal type homebox 1 (CDX1)/villin mRNA expression.
Mol. Cell. Proteomics 15:124-140(2016)
PubMed=27397505; DOI=10.1016/j.cell.2016.06.017; PMCID=PMC4967469
Iorio F., Knijnenburg T.A., Vis D.J., Bignell G.R., Menden M.P., Schubert M., Aben N., Goncalves E., Barthorpe S., Lightfoot H., Cokelaer T., Greninger P., van Dyk E., Chang H., de Silva H., Heyn H., Deng X.-M., Egan R.K., Liu Q.-S., Miroo T., Mitropoulos X., Richardson L., Wang J.-H., Zhang T.-H., Moran S., Sayols S., Soleimani M., Tamborero D., Lopez-Bigas N., Ross-Macdonald P., Esteller M., Gray N.S., Haber D.A., Stratton M.R., Benes C.H., Wessels L.F.A., Saez-Rodriguez J., McDermott U., Garnett M.J.
A landscape of pharmacogenomic interactions in cancer.
Cell 166:740-754(2016)
PubMed=28179481; DOI=10.1158/1535-7163.MCT-16-0578
Tanaka N., Mashima T., Mizutani A., Sato A., Aoyama A., Gong B., Yoshida H., Muramatsu Y., Nakata K., Matsuura M., Katayama R., Nagayama S., Fujita N., Sugimoto Y., Seimiya H.
APC mutations as a potential biomarker for sensitivity to tankyrase inhibitors in colorectal cancer.
Mol. Cancer Ther. 16:752-762(2017)
PubMed=28192450; DOI=10.1371/journal.pone.0171435; PMCID=PMC5305277
Fasterius E., Raso C., Kennedy S.A., Rauch N., Lundin P., Kolch W., Uhlen M., Al-Khalili Szigyarto C.
A novel RNA sequencing data analysis method for cell line authentication.
PLoS ONE 12:E0171435-E0171435(2017)
PubMed=28683746; DOI=10.1186/s12943-017-0691-y; PMCID=PMC5498998
Berg K.C.G., Eide P.W., Eilertsen I.A., Johannessen B., Bruun J., Danielsen S.A., Bjornslett M., Meza-Zepeda L.A., Eknaes M., Lind G.E., Myklebost O., Skotheim R.I., Sveen A., Lothe R.A.
Multi-omics of 34 colorectal cancer cell lines -- a resource for biomedical studies.
Mol. Cancer 16:116.1-116.16(2017)
PubMed=28854368; DOI=10.1016/j.celrep.2017.08.010; PMCID=PMC5583477
Roumeliotis T.I., Williams S.P., Goncalves E., Alsinet C., Del Castillo Velasco-Herrera M., Aben N., Ghavidel F.Z., Michaut M., Schubert M., Price S., Wright J.C., Yu L., Yang M., Dienstmann R., Guinney J.H., Beltrao P., Brazma A., Pardo M., Stegle O., Adams D.J., Wessels L.F.A., Saez-Rodriguez J., McDermott U., Choudhary J.S.
Genomic determinants of protein abundance variation in colorectal cancer cells.
Cell Rep. 20:2201-2214(2017)
PubMed=29101300; DOI=10.15252/msb.20177701; PMCID=PMC5731344
Frejno M., Zenezini Chiozzi R., Wilhelm M., Koch H., Zheng R.-S., Klaeger S., Ruprecht B., Meng C., Kramer K., Jarzab A., Heinzlmeir S., Johnstone E., Domingo E., Kerr D.J., Jesinghaus M., Slotta-Huspenina J., Weichert W., Knapp S., Feller S.M., Kuster B.
Pharmacoproteomic characterisation of human colon and rectal cancer.
Mol. Syst. Biol. 13:951-951(2017)
PubMed=29444439; DOI=10.1016/j.celrep.2018.01.051; PMCID=PMC6343826
Yuan T.L., Amzallag A., Bagni R., Yi M., Afghani S., Burgan W., Fer N., Strathern L.A., Powell K., Smith B., Waters A.M., Drubin D.A., Thomson T., Liao R., Greninger P., Stein G.T., Murchie E., Cortez E., Egan R.K., Procter L., Bess M., Cheng K.T., Lee C.-S., Lee L.C., Fellmann C., Stephens R., Luo J., Lowe S.W., Benes C.H., McCormick F.
Differential effector engagement by oncogenic KRAS.
Cell Rep. 22:1889-1902(2018)
PubMed=30894373; DOI=10.1158/0008-5472.CAN-18-2747; PMCID=PMC6445675
Dutil J., Chen Z.-H., Monteiro A.N.A., Teer J.K., Eschrich S.A.
An interactive resource to probe genetic diversity and estimated ancestry in cancer cell lines.
Cancer Res. 79:1263-1273(2019)
PubMed=30971826; DOI=10.1038/s41586-019-1103-9
Behan F.M., Iorio F., Picco G., Goncalves E., Beaver C.M., Migliardi G., Santos R., Rao Y., Sassi F., Pinnelli M., Ansari R., Harper S., Jackson D.A., McRae R., Pooley R., Wilkinson P., van der Meer D.J., Dow D., Buser-Doepner C.A., Bertotti A., Trusolino L., Stronach E.A., Saez-Rodriguez J., Yusa K., Garnett M.J.
Prioritization of cancer therapeutic targets using CRISPR-Cas9 screens.
Nature 568:511-516(2019)
PubMed=31068700; DOI=10.1038/s41586-019-1186-3; PMCID=PMC6697103
Ghandi M., Huang F.W., Jane-Valbuena J., Kryukov G.V., Lo C.C., McDonald E.R. 3rd, Barretina J.G., Gelfand E.T., Bielski C.M., Li H.-X., Hu K., Andreev-Drakhlin A.Y., Kim J., Hess J.M., Haas B.J., Aguet F., Weir B.A., Rothberg M.V., Paolella B.R., Lawrence M.S., Akbani R., Lu Y.-L., Tiv H.L., Gokhale P.C., de Weck A., Mansour A.A., Oh C., Shih J., Hadi K., Rosen Y., Bistline J., Venkatesan K., Reddy A., Sonkin D., Liu M., Lehar J., Korn J.M., Porter D.A., Jones M.D., Golji J., Caponigro G., Taylor J.E., Dunning C.M., Creech A.L., Warren A.C., McFarland J.M., Zamanighomi M., Kauffmann A., Stransky N., Imielinski M., Maruvka Y.E., Cherniack A.D., Tsherniak A., Vazquez F., Jaffe J.D., Lane A.A., Weinstock D.M., Johannessen C.M., Morrissey M.P., Stegmeier F., Schlegel R., Hahn W.C., Getz G., Mills G.B., Boehm J.S., Golub T.R., Garraway L.A., Sellers W.R.
Next-generation characterization of the Cancer Cell Line Encyclopedia.
Nature 569:503-508(2019)"
