"SF-295人XG恶性胶质瘤细胞代次低|培养基|送STR图谱
传代比例：1:2-1:4(首次传代建议1:2)
生长特性：贴壁生长
常见细胞贴壁较弱原因：在遇到运输低温及震荡、室温静置太长时间、添加的培养基或其他试剂过冷、密度较高、聚集未吹散、加液吹打到细胞面等情况时会出现明显的成片脱落现象，此时若脱落现象不严重应尽快放回培养基继续培养，若呈大片脱落的情况时需要收集细胞重新消化吹散并接种；建议使用经过包被或者高贴壁培养瓶培养细胞，尽量避免接触低温或密度过高。
换液周期：每周2-3次
NCI-H1734 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：４-１：６传代。;生长特性：贴壁生长;形态特性：上皮细胞样;相关产品有：IEC-6细胞、SKO-007细胞、RPE1细胞
38C-13 Cells;背景说明：B淋巴瘤；C３H/eB;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：半贴壁;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：MAVER细胞、HT-3细胞、U343细胞
Balb/c3T3 Cells;背景说明：胚胎；成纤维；自发永生；雄性；BALB/c;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：IPLB-SF 21AE细胞、DLM8细胞、BL6细胞
SF-295人XG恶性胶质瘤细胞代次低|培养基|送STR图谱
背景信息：详见相关文献介绍
┈订┈购(技术服务)┈热┈线：1┈3┈6┈4┈1┈9┈3┈0┈7┈9┈1【微信同号】┈Q┈Q：3┈1┈8┈0┈8┈0┈7┈3┈2┈4；
贴壁细胞的传代培养，详细步骤如下：首先倒掉培养基，在这一步骤可以收集一些细胞上清做支原体检测；加入胰蛋白酶，一般T25是加2mL，盖好瓶盖，摇晃T25培养瓶，使胰蛋白酶均匀覆盖在细胞表面，放入培养箱2-3min，期间可在显微镜下观察，看到大部分细胞变圆，即可放入超净台，加入2倍的完全培养基，这里就是加4mL培养基，终止消化；将含有胰蛋白酶，细胞和培养基一起转移到离心管中，1000rpm/3min离心，去掉上清；新鲜的完全培养基重悬，根据细胞的生长特性和后续的实验需求进行传代，比如我养的Hepa1-6就长的比较快，不是着急用的话，我就会按1E6个细胞/T75培养瓶进行传代；但如果后两天要用，就会适当多传一点；还可通过显微镜计数后，直接用于细胞铺板，继续后续的实验。
产品包装：复苏发货：T25培养瓶(一瓶)或冻存发货：1ml冻存管(两支)
来源说明：细胞主要来源ATCC、ECACC、DSMZ、RIKEN等细胞库
SF-295人XG恶性胶质瘤细胞代次低|培养基|送STR图谱
物种来源：人源、鼠源等其它物种来源
MPC-83 Cells;背景说明：胰腺；腺泡 Cells;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：PL9细胞、MC 116细胞、H1355细胞
MLM Cells;背景说明：急性粒白血病;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：悬浮;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：NCI-H1581细胞、NPA-87细胞、GM03320D细胞
HCC-1438 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁或悬浮，详见产品说明书部分;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：LN229细胞、PA I细胞、BpRcl细胞
High 5 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁或悬浮，详见产品说明书部分;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：PANC 327细胞、MA104细胞、MKN7细胞
┈订┈购(技术服务)┈热┈线：1┈3┈6┈4┈1┈9┈3┈0┈7┈9┈1【微信同号】┈Q┈Q：3┈1┈8┈0┈8┈0┈7┈3┈2┈4；
形态特性：上皮细胞样
细胞冻存复苏材料与方法步骤：常用的细胞冷冻贮存器为贮存器，规格有３５L和５０L两种。使用时要注意以下几点：(１)一般两周需充一次，至少一个月充一次。温度达-１９６℃，使用时注意勿让溅到皮肤上，以免引起冻伤。(２)容器为双层结构，中间为真空层，瓶口有双层焊接处，应防止焊接部裂开。(３)在装入时，要注意缓慢小心，并用厚纸卷筒或制漏斗作引导，使直达瓶底，如有专用灌注装置则更HAO。若为初次使用，加时更要缓慢，以免温度骤降而使容器损坏。细胞冻存时常备的材料有：０.２５%胰蛋白酶，含１０%～２０%的血清培养，DMSO(分析纯)或无色新鲜甘油(１２１°C蒸气GAO压消毒)，２mL安瓿(或专用细胞冻存管)、吸管、离心管、喷灯、纱布袋(或冻存管架)等。主要操作步骤为：(１)选择处于对数生长期的细胞，在冻存前一天ZuiHAO换。将多个培养瓶中的细胞培养 去掉，用０.２５%胰蛋白酶消化。适时去掉胰蛋白酶，加入少量新培养。用吸管吸取培养反复吹打瓶壁上的细胞，使其成为均匀分散的细胞悬。悬浮生产细胞则不要消化处理。然后将细胞收集于离心管中离心(１０００r/min，１０分钟)。(２)去上清，加入含２０%小牛血清的完全培养基，于４℃预冷１５分钟后，逐滴加入已无菌的DMSO或甘油，用吸管轻轻吹打使细胞均匀，细胞浓度为３×１０６～１×１０７/mL之间。(３)将上述细胞分装于安瓿或专用冷冻塑料管中，安瓿装１～１.５mL在火焰喷灯上封口，封口处要完全封闭，圆滑无勾。冷冻管要将盖子盖紧，并标记HAO细胞名称和冻存日期，同时作HAO登记(日期、细胞种类及代次、冻存支数)。(４)将装HAO细胞的安瓿或冻存管装入沙布袋内;置于容器颈口处存放过夜，次日转入中。采用控制降温速度的方法也可采用下列步骤：先将安瓿置入４℃冰箱中２～３小时，再移至冰箱冷冻室内３～４小时，再吊入容器颈气态部分存放２小时，Zui后沉入中。细胞冻存在中可以长期保存，但为妥善起见，冻存半年后，ZuiHAO取出一只安瓿细胞复苏培养，观察生长情况，然后再继续冻存。
AML-2 Cells;背景说明：急性髓系白血病；男性;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：悬浮;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：OCI-Ly7细胞、NCI-H1755细胞、C-28I2细胞
BEL7402 Cells;背景说明：BEL-７４０２细胞株是１９７４年从临床肝癌手术标本中建立的。;传代方法：消化３-５分钟，１：２,３天内可长满;生长特性：贴壁生长;形态特性：上皮样;相关产品有：Radiation Effects Research Foundation-Lung Cancer-MS细胞、2PK3细胞、Potorous tridactylus Kidney 2细胞
H2108 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁或悬浮，详见产品说明书部分;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：MES-13细胞、H-2405细胞、NCIH69细胞
ARO81 Cells;背景说明：甲状腺癌；女性;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：SN12C细胞、Y3-Ag1,2,3细胞、Baby Hamster Kidney from litter No. 21细胞
OVCA 433 Cells;背景说明：卵巢癌；女性;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：Japanese Tissue Culture-28细胞、HPAF-II细胞、H-1944细胞
MHH-CALL2 Cells;背景说明：急性B淋巴细胞白血病；女性;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：悬浮;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：D-283MED细胞、W133细胞、BE(2)-C细胞
RIN14B Cells;背景说明：胰岛素瘤；雄性；NEDH;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：CFSC-8B细胞、SCC-15细胞、LC-1-sq细胞
OCIAML2 Cells;背景说明：急性髓系白血病；男性;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：悬浮;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：DF1细胞、Hk-2细胞、GM00637I细胞
Madin Darby Bovine Kidney Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２传代;生长特性：贴壁生长 ;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：LU65细胞、JB6 [Mouse]细胞、H1623细胞
COLO-680N Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁或悬浮，详见产品说明书部分;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：HEK-293FT细胞、KP 4细胞、HGSMC细胞
L cell line Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁或悬浮，详见产品说明书部分;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：IBMF-7细胞、Hs839T细胞、SUM102PT细胞
HFF Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：５—１：７传代;生长特性：贴壁生长;形态特性：成纤维细胞;相关产品有：MAEC细胞、HuH 6细胞、P3.653细胞
C-26 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁或悬浮，详见产品说明书部分;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：NCI-SNU-878细胞、NS-1-Ag4-1细胞、J-774A.1细胞
TCC-PAN2 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁或悬浮，详见产品说明书部分;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：Suzhou Human Glioma-44细胞、LMH细胞、IOSE-Van细胞
Madin Darby Canine Kidney Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２传代;生长特性：贴壁生长 ;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：M20 [Human melanoma]细胞、SK-MEL5细胞、TM-4细胞
BERH-2 Cells;背景说明：肝癌;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：MM1-S细胞、HL-7702细胞、Roswell Park Memorial Institute 2650细胞
MIMVEC Cells;背景说明：肠粘膜微血管；内皮 Cells;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：A2780细胞、CCLP1细胞、SW-780细胞
A375-MA2 Cells(提供STR鉴定图谱)
Abcam PC-3 EGLN1 KO Cells(提供STR鉴定图谱)
B35 Cells(提供STR鉴定图谱)
BayGenomics ES cell line RRR005 Cells(提供STR鉴定图谱)
BayGenomics ES cell line YHC417 Cells(提供STR鉴定图谱)
CENSOi035-A Cells(提供STR鉴定图谱)
DA01376 Cells(提供STR鉴定图谱)
ESC/LCM20T-N Cells(提供STR鉴定图谱)
GM06945 Cells(提供STR鉴定图谱)
HeLa-229 Cells;背景说明：宫颈癌；女性;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：HEK 293T/17细胞、HSC-5 [Human skin squamous cell carcinoma]细胞、SP2/0 Ag-14细胞
SF-295人XG恶性胶质瘤细胞代次低|培养基|送STR图谱
NB9 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：１０ １：５０每２ - ３周；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁生长;形态特性：成神经细胞;相关产品有：WM451细胞、A-9细胞、MPC11细胞
PANC0813 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２传代;生长特性：贴壁生长;形态特性：上皮样;相关产品有：293c18细胞、P3/ag细胞、BRL-3A细胞
McCoy B Cells;背景说明：成纤维 Cells;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：SNU16细胞、NCIH1373细胞、BEL-7405细胞
U-373MG ATCC Cells;背景说明：胶质瘤；男性;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：IPLB-Sf21-AE细胞、A2780-CP细胞、HK-2 [Human kidney]细胞
CCD 841 CoN Cells;背景说明：结肠上皮细胞；女性;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：SUD4细胞、DF-1细胞、GM05887A细胞
ALT Cells(提供STR鉴定图谱)
SK.MEL.2 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：３-１：６传代，２-３天换液１次。;生长特性：贴壁生长;形态特性：多边形的;相关产品有：Strain KB细胞、NIH-3T3-L1细胞、95-D细胞
PIGI Cells;背景说明：皮肤；黑色素细胞；HPV１６转化；男性;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：GTL 16细胞、HS-683细胞、Y3细胞
H-660 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：２-３天换液１次。;生长特性：悬浮生长;形态特性：上皮细胞;相关产品有：P3X63细胞、WM266mel细胞、Y3-Ag123细胞
Caco2BBe Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：６—１：１０传代，每周换液２次;生长特性：贴壁生长;形态特性：上皮细胞;相关产品有：Tn-5B1-4细胞、OVCAR4细胞、LS174T细胞
HConEpic Cells;背景说明：结膜；上皮 Cells;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：Vero 76 clone E-6细胞、KP-N-RT细胞、NCIH929细胞
HEK 293-EBNA Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：４-１：１０传代；每周２次。;生长特性：贴壁生长;形态特性：上皮细胞样;相关产品有：HIT clone T15细胞、NCIH211细胞、SUM-52-PE细胞
H128 Cells;背景说明：小细胞肺癌；胸腔积液转移；男性;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：Caco2BBe细胞、MBVP细胞、MGH-U3 (RN)细胞
CAKI 2 Cells;背景说明：该细胞源自一位６９岁白人男性的初期肾腺癌组织;传代方法：１：３—１：６传代，每周换液２—３次;生长特性：贴壁生长;形态特性：上皮细胞样;相关产品有：RPMI-6666细胞、BNL 1MEA.7R.1细胞、CHL/IU细胞
GM21793 Cells(提供STR鉴定图谱)
HAP1 MAPK14 (-) 1 Cells(提供STR鉴定图谱)
MOLT-4 Cells;背景说明：MOLT-４与MOLT-３来源于一名１９岁的男性急性淋巴细胞性白血病的复发患者，该患者前期接受过多种药物联合化疗。MOLT-４细胞系为T淋巴细胞起源，p５３基因的第２４８位密码子有一个G→A突变，不表达p５３，不表达免疫球蛋白或EB病毒；可产生高水平的末端脱氧核糖转移酶；表达CD１(４９%),CD２(３５%),CD３A(２６%)B(３３%)C(３４%),CD４(５５%),CD５(７２%),CD６(２２%),CD７(７７%)。;传代方法：１：２传代;生长特性：悬浮生长;形态特性：淋巴母细胞样；圆形;相关产品有：HEL92.1.7细胞、RGC-5细胞、SNU668细胞
3T3L1 Cells;背景说明：３T３-L１是从３T３细胞（Swissalbino）中经克隆分离得到的连续传代的亚系。该细胞从快速分裂到汇合和接触性抑制状态经历了前脂肪细胞到脂肪样细胞的转变。该细胞鼠痘病毒阴性；可产生甘油三酯，高浓度血清可增强细胞内脂肪堆积。;传代方法：１：２传代;生长特性：贴壁生长;形态特性：成纤维细胞样;相关产品有：CATHa细胞、RKOAS451细胞、HCC-2185细胞
NCI-H716 Cells;背景说明：从一位经５-尿嘧啶治疗的患者腹水中得到的细胞建立了这个细胞株。 与其它结直肠癌细胞系不同，这株细胞有多巴脱羧酶，细胞质中有核心致密的内分泌型颗粒。 这株细胞不表达TAG-７２ 或CA１９-９抗原，也不生成癌胚抗原（CEA）;传代方法：１：３—１：６传代，每周换液２—３次;生长特性：悬浮生长，聚团，少数贴壁;形态特性：上皮细胞样;相关产品有：GM 637细胞、NT2-D1细胞、PK13细胞
NCIH2073 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：３-１：６传代 ;生长特性：贴壁生长;形态特性：上皮细胞;相关产品有：BCECs细胞、L23/P细胞、ECC1细胞
BIC1 Cells;背景说明：食管腺癌；男性;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：NCI-H1048细胞、TR 146细胞、AHH-1细胞
NK 10a Cells;背景说明：１９６７年，该细胞系KleinE和KleinG建系，源于一名１６岁患有Burkitt＇s淋巴瘤的黑人男性，beta-２-微球蛋白阴性，表达EBNA,VCA，sIg。该细胞携带EB病毒，是一个典型的B淋巴母细胞系，可用于白血病发病机制的研究。;传代方法：１：２传代;生长特性：悬浮生长;形态特性：淋巴母细胞样;相关产品有：NCIH1734细胞、alpha TC1.6细胞、MPP-89细胞
RD 2 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２-１：４传代，３-４天换液１次。;生长特性：贴壁生长;形态特性：梭型和大的多核细胞;相关产品有：SACCLM细胞、PANC-10-05细胞、COLO-HSR细胞
UMNSAH-DF 1 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２传代;生长特性：贴壁生长;形态特性：成纤维母细胞样;相关产品有：EOL1细胞、SK.MEL.2细胞、H2052_MM细胞
HPSI0614i-guyj_2 Cells(提供STR鉴定图谱)
KAS-6/2 Cells(提供STR鉴定图谱)
Melan-a 2C Cells(提供STR鉴定图谱)
NH50337 Cells(提供STR鉴定图谱)
RAC-4E Cells(提供STR鉴定图谱)
Ubigene HeLa TMEM176A KO Cells(提供STR鉴定图谱)
XPCS1LV SV40 Cells(提供STR鉴定图谱)
HAP1 WIPF1 (-) 1 Cells(提供STR鉴定图谱)
TE-6 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：消化３-５分钟。１：２。３天内可长满。;生长特性：贴壁生长;形态特性：上皮样;相关产品有：SK MEL 28细胞、MFC细胞、REC-1细胞
NH-6 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２传代；每周换液２-３次;生长特性：贴壁生长;形态特性：成纤维细胞;相关产品有：SKNBE-2细胞、HS0578T细胞、SK-MES1细胞
F442A Cells;背景说明：脂肪前体细胞；雄性；Swiss albino;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：TO 175.T细胞、H23细胞、SN12-PM6细胞
HOCF Cells;背景说明：脉络膜；成纤维 Cells;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：Psi2-DAP细胞、RPMI1788细胞、Clone Y1细胞
COLO684 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２传代;生长特性：悬浮生长;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：GP5d细胞、MDA134细胞、SNUC1细胞
ARPE19 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２传代;生长特性：贴壁生长;形态特性：上皮样;相关产品有：Balb/3T3-4-Cl31细胞、U 937细胞、IM 9细胞
IOSE-80 Cells;背景说明：卵巢；上皮细胞；SV４０转化；女性;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：mouse Inner Medullary Collecting Duct-3细胞、LO2细胞、H1781细胞
TALL-104 Cells;背景说明：急性T淋巴细胞白血病；男性;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：悬浮;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：Mino细胞、LTEP-sm 1细胞、HEK-293-EBNA细胞
HCC827 Cells;背景说明：这株细胞建于１９９４年三月。这株肺腺癌在EGFR酪酸激酶区域有一个获得性突变(E７４６-A７５０缺失)。患者在２５岁到２６岁时每个月抽１包烟。在诊断前１２年不再抽烟。;传代方法：消化５分钟。１：２。４-５天长满。;生长特性：贴壁生长;形态特性：上皮细胞样;相关产品有：CAL 148细胞、CHO-S细胞、NTERA-2/D1细胞
HMC-1 Cells;背景说明：肥大 Cells;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：悬浮;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：ML-2细胞、NCI-H711细胞、H35 Reuber细胞
ANA-1 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２传代;生长特性：悬浮生长;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：RBE4细胞、Rat 2细胞、NCI-460细胞
AR4IP Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：３-１：６传代；每周２-３次。;生长特性：贴壁生长;形态特性：上皮细胞样;相关产品有：D341 Med细胞、IEC 6细胞、SUDHL-16细胞
SUM-159 Cells;背景说明：乳腺癌；女性;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：NCI-H1341细胞、HS5细胞、JurkatE6-1细胞
STC-1 Cells;背景说明：STC-１细胞来源于双重转基因小鼠的肠肿瘤组织。含有连接大鼠胰岛素基因启动子与多瘤病毒小T抗原的融合基因与含有连接大鼠胰岛素基因与SV４０的基因结合产生双转基因小鼠。这些小鼠一般患有肠肿瘤以及胰腺β细胞瘤。STC-１细胞产生激素分泌素。;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁;形态特性：上皮细胞样;相关产品有：Tu-686细胞、P3-NS1/1Ag 4.1细胞、NIH/3T3细胞
MV4;11 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁或悬浮，详见产品说明书部分;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：Transformed Human Liver Epithelial-2细胞、LICR-HN6细胞、PA1细胞
ST-IOWA/PERV-C(1312) Cells(提供STR鉴定图谱)
GM03190A Cells;背景说明：１９６７年，该细胞系KleinE和KleinG建系，源于一名１６岁患有Burkitt＇s淋巴瘤的黑人男性，beta-２-微球蛋白阴性，表达EBNA,VCA，sIg。该细胞携带EB病毒，是一个典型的B淋巴母细胞系，可用于白血病发病机制的研究。;传代方法：１：２传代;生长特性：悬浮生长;形态特性：淋巴母细胞样;相关产品有：A-253细胞、Fu97细胞、TEC细胞
NCIH1755 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２传代;生长特性：贴壁生长;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：FET细胞、RGM-1细胞、MILE SVEN1细胞
NCIH2073 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：３-１：６传代 ;生长特性：贴壁生长;形态特性：上皮细胞;相关产品有：BCECs细胞、L23/P细胞、ECC1细胞
OV-1063 Cells;背景说明：卵巢上皮细胞癌;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：C127细胞、SKMES1细胞、HCT-15细胞
HMrSV5 Cells;背景说明：腹膜间皮 Cells;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：CL11细胞、NCIH1437细胞、MD Anderson-Metastatic Breast-134-VI细胞
HCCC9810 Cells;背景说明：HCCC-９８１０细胞株源自一位女性肝胆管细胞癌患者。 HCCC-９８１０细胞呈上皮细胞样，染色体模式数为７１，但染色体数目可以在２２-１１７的范围内变动。倍增时间为２０.４小时。 AFP，CEA和CA１９-９的分泌水平低，在裸鼠中的成瘤率为２０%。;传代方法：１：２传代;生长特性：贴壁生长;形态特性：上皮细胞样;相关产品有：Hs 840.T细胞、MEL细胞、Human Lung Microvascular Endothelial Cell line-5a细胞
SF-295人XG恶性胶质瘤细胞代次低|培养基|送STR图谱
DHL-4 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：悬浮;形态特性：淋巴母细胞;相关产品有：NTHY-ORI3.1细胞、Panc-813细胞、H2110细胞
P31FUJ Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：５传代;生长特性：悬浮生长;形态特性：淋巴母细胞;相关产品有：DHL-16细胞、ME1细胞、FU-OV-1细胞
Murine Thymic Epithelial Cell line 1 Cells;背景说明：胸腺；上皮细胞；自发永生;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：T-84细胞、Lilly Laboratories Cell-Porcine Kidney 1细胞、PA I细胞
Hs 343.T Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２—１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁生长;形态特性：成纤维细胞;相关产品有：TN5B14细胞、P31-FUJ细胞、HCC-1428细胞
H9c2 (2-1) Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２传代;生长特性：贴壁生长 ;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：HT clone H9细胞、HCC-1438细胞、HNE1细胞
TK 10 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：３-１：６传代；２-３天换液１次。;生长特性：贴壁生长;形态特性：上皮样;相关产品有：MC-116细胞、MZ-CRC-1细胞、HT144细胞
LYR Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁或悬浮，详见产品说明书部分;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：H2172细胞、OVCAR8/ADR细胞、M-14细胞
Hs 636.T Cells;背景说明：宫颈鳞癌；女性;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：B958细胞、NCI-H1435细胞、PM6细胞
BayGenomics ES cell line RRF531 Cells(提供STR鉴定图谱)
BayGenomics ES cell line XG745 Cells(提供STR鉴定图谱)
em17.4 Cells(提供STR鉴定图谱)
MTCQ1 Cells(提供STR鉴定图谱)
TSt-4/N Cells(提供STR鉴定图谱)
MA42 Cells(提供STR鉴定图谱)
" "DOI=10.1016/B978-0-12-333530-2.50005-8
Nister M., Westermark B.
Human glioma cell lines.
(In book chapter) Atlas of human tumor cell lines; Hay R.J., Park J.-G., Gazdar A.F. (eds.); pp.17-42; Academic Press; New York; USA (1994)
DOI=10.1007/0-306-46861-1_11
Ali-Osman F.
Brain tumors.
(In book chapter) Human cell culture. Vol. 2. Cancer cell lines part 2; Masters J.R.W., Palsson B.O. (eds.); pp.167-184; Kluwer Academic Publishers; New York; USA (1999)
PubMed=10700174; DOI=10.1038/73432
Ross D.T., Scherf U., Eisen M.B., Perou C.M., Rees C., Spellman P.T., Iyer V.R., Jeffrey S.S., van de Rijn M., Waltham M.C., Pergamenschikov A., Lee J.C.F., Lashkari D., Shalon D., Myers T.G., Weinstein J.N., Botstein D., Brown P.O.
Systematic variation in gene expression patterns in human cancer cell lines.
Nat. Genet. 24:227-235(2000)
PubMed=15748285; DOI=10.1186/1479-5876-3-11; PMCID=PMC555742
Adams S., Robbins F.-M., Chen D., Wagage D., Holbeck S.L., Morse H.C. 3rd, Stroncek D., Marincola F.M.
HLA class I and II genotype of the NCI-60 cell lines.
J. Transl. Med. 3:11.1-11.8(2005)
PubMed=15900046; DOI=10.1093/jnci/dji133
Mashima T., Oh-hara T., Sato S., Mochizuki M., Sugimoto Y., Yamazaki K., Hamada J.-i., Tada M., Moriuchi T., Ishikawa Y., Kato Y., Tomoda H., Yamori T., Tsuruo T.
p53-defective tumors with a functional apoptosome-mediated pathway: a new therapeutic target.
J. Natl. Cancer Inst. 97:765-777(2005)
PubMed=17088437; DOI=10.1158/1535-7163.MCT-06-0433; PMCID=PMC2705832
Ikediobi O.N., Davies H.R., Bignell G.R., Edkins S., Stevens C., O'Meara S., Santarius T., Avis T., Barthorpe S., Brackenbury L., Buck G., Butler A.P., Clements J., Cole J., Dicks E., Forbes S., Gray K., Halliday K., Harrison R., Hills K., Hinton J., Hunter C., Jenkinson A., Jones D., Kosmidou V., Lugg R., Menzies A., Miroo T., Parker A., Perry J., Raine K.M., Richardson D., Shepherd R., Small A., Smith R., Solomon H., Stephens P.J., Teague J.W., Tofts C., Varian J., Webb T., West S., Widaa S., Yates A., Reinhold W.C., Weinstein J.N., Stratton M.R., Futreal P.A., Wooster R.
Mutation analysis of 24 known cancer genes in the NCI-60 cell line set.
Mol. Cancer Ther. 5:2606-2612(2006)
PubMed=17984197; DOI=10.1124/mol.107.041178; PMCID=PMC2998068
Liao Z.-Y., Robey R.W., Guirouilh-Barbat J., To K.K.-W., Polgar O., Bates S.E., Pommier Y.
Reduced expression of DNA topoisomerase I in SF295 human glioblastoma cells selected for resistance to homocamptothecin and diflomotecan.
Mol. Pharmacol. 73:490-497(2008)
PubMed=18277095; DOI=10.4161/cbt.7.5.5712
Berglind H., Pawitan Y., Kato S., Ishioka C., Soussi T.
Analysis of p53 mutation status in human cancer cell lines: a paradigm for cell line cross-contamination.
Cancer Biol. Ther. 7:699-708(2008)
PubMed=19372543; DOI=10.1158/1535-7163.MCT-08-0921; PMCID=PMC4020356
Lorenzi P.L., Reinhold W.C., Varma S., Hutchinson A.A., Pommier Y., Chanock S.J., Weinstein J.N.
DNA fingerprinting of the NCI-60 cell line panel.
Mol. Cancer Ther. 8:713-724(2009)
PubMed=20164919; DOI=10.1038/nature08768; PMCID=PMC3145113
Bignell G.R., Greenman C.D., Davies H.R., Butler A.P., Edkins S., Andrews J.M., Buck G., Chen L., Beare D., Latimer C., Widaa S., Hinton J., Fahey C., Fu B.-Y., Swamy S., Dalgliesh G.L., Teh B.T., Deloukas P., Yang F.-T., Campbell P.J., Futreal P.A., Stratton M.R.
Signatures of mutation and selection in the cancer genome.
Nature 463:893-898(2010)
PubMed=20215515; DOI=10.1158/0008-5472.CAN-09-3458; PMCID=PMC2881662
Rothenberg S.M., Mohapatra G., Rivera M.N., Winokur D., Greninger P., Nitta M., Sadow P.M., Sooriyakumar G., Brannigan B.W., Ulman M.J., Perera R.M., Wang R., Tam A., Ma X.-J., Erlander M., Sgroi D.C., Rocco J.W., Lingen M.W., Cohen E.E.W., Louis D.N., Settleman J., Haber D.A.
A genome-wide screen for microdeletions reveals disruption of polarity complex genes in diverse human cancers.
Cancer Res. 70:2158-2164(2010)
PubMed=22068913; DOI=10.1073/pnas.1111840108; PMCID=PMC3219108
Gillet J.-P., Calcagno A.M., Varma S., Marino M., Green L.J., Vora M.I., Patel C., Orina J.N., Eliseeva T.A., Singal V., Padmanabhan R., Davidson B., Ganapathi R., Sood A.K., Rueda B.R., Ambudkar S.V., Gottesman M.M.
Redefining the relevance of established cancer cell lines to the study of mechanisms of clinical anti-cancer drug resistance.
Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 108:18708-18713(2011)
PubMed=22336246; DOI=10.1016/j.bmc.2012.01.017
Kong D.-X., Yamori T.
JFCR39, a panel of 39 human cancer cell lines, and its application in the discovery and development of anticancer drugs.
Bioorg. Med. Chem. 20:1947-1951(2012)
PubMed=22347499; DOI=10.1371/journal.pone.0031628; PMCID=PMC3276511
Ruan X.-Y., Kocher J.-P.A., Pommier Y., Liu H.-F., Reinhold W.C.
Mass homozygotes accumulation in the NCI-60 cancer cell lines as compared to HapMap trios, and relation to fragile site location.
PLoS ONE 7:E31628-E31628(2012)
PubMed=22384151; DOI=10.1371/journal.pone.0032096; PMCID=PMC3285665
Lee J.-S., Kim Y.K., Kim H.J., Hajar S., Tan Y.L., Kang N.-Y., Ng S.H., Yoon C.N., Chang Y.-T.
Identification of cancer cell-line origins using fluorescence image-based phenomic screening.
PLoS ONE 7:E32096-E32096(2012)
PubMed=22460905; DOI=10.1038/nature11003; PMCID=PMC3320027
Barretina J.G., Caponigro G., Stransky N., Venkatesan K., Margolin A.A., Kim S., Wilson C.J., Lehar J., Kryukov G.V., Sonkin D., Reddy A., Liu M., Murray L., Berger M.F., Monahan J.E., Morais P., Meltzer J., Korejwa A., Jane-Valbuena J., Mapa F.A., Thibault J., Bric-Furlong E., Raman P., Shipway A., Engels I.H., Cheng J., Yu G.-Y.K., Yu J.-J., Aspesi P. Jr., de Silva M., Jagtap K., Jones M.D., Wang L., Hatton C., Palescandolo E., Gupta S., Mahan S., Sougnez C., Onofrio R.C., Liefeld T., MacConaill L.E., Winckler W., Reich M., Li N.-X., Mesirov J.P., Gabriel S.B., Getz G., Ardlie K., Chan V., Myer V.E., Weber B.L., Porter J., Warmuth M., Finan P., Harris J.L., Meyerson M.L., Golub T.R., Morrissey M.P., Sellers W.R., Schlegel R., Garraway L.A.
The Cancer Cell Line Encyclopedia enables predictive modelling of anticancer drug sensitivity.
Nature 483:603-607(2012)
PubMed=22628656; DOI=10.1126/science.1218595; PMCID=PMC3526189
Jain M., Nilsson R., Sharma S., Madhusudhan N., Kitami T., Souza A.L., Kafri R., Kirschner M.W., Clish C.B., Mootha V.K.
Metabolite profiling identifies a key role for glycine in rapid cancer cell proliferation.
Science 336:1040-1044(2012)
PubMed=23856246; DOI=10.1158/0008-5472.CAN-12-3342; PMCID=PMC4893961
Abaan O.D., Polley E.C., Davis S.R., Zhu Y.-L.J., Bilke S., Walker R.L., Pineda M.A., Gindin Y., Jiang Y., Reinhold W.C., Holbeck S.L., Simon R.M., Doroshow J.H., Pommier Y., Meltzer P.S.
The exomes of the NCI-60 panel: a genomic resource for cancer biology and systems pharmacology.
Cancer Res. 73:4372-4382(2013)
PubMed=23933261; DOI=10.1016/j.celrep.2013.07.018
Moghaddas Gholami A., Hahne H., Wu Z.-X., Auer F.J., Meng C., Wilhelm M., Kuster B.
Global proteome analysis of the NCI-60 cell line panel.
Cell Rep. 4:609-620(2013)
PubMed=24279929; DOI=10.1186/2049-3002-1-20; PMCID=PMC4178206
Dolfi S.C., Chan L.L.-Y., Qiu J., Tedeschi P.M., Bertino J.R., Hirshfield K.M., Oltvai Z.N., Vazquez A.
The metabolic demands of cancer cells are coupled to their size and protein synthesis rates.
Cancer Metab. 1:20.1-20.13(2013)
PubMed=24670534; DOI=10.1371/journal.pone.0092047; PMCID=PMC3966786
Varma S., Pommier Y., Sunshine M., Weinstein J.N., Reinhold W.C.
High resolution copy number variation data in the NCI-60 cancer cell lines from whole genome microarrays accessible through CellMiner.
PLoS ONE 9:E92047-E92047(2014)
PubMed=25984343; DOI=10.1038/sdata.2014.35; PMCID=PMC4432652
Cowley G.S., Weir B.A., Vazquez F., Tamayo P., Scott J.A., Rusin S., East-Seletsky A., Ali L.D., Gerath W.F.J., Pantel S.E., Lizotte P.H., Jiang G.-Z., Hsiao J., Tsherniak A., Dwinell E., Aoyama S., Okamoto M., Harrington W., Gelfand E.T., Green T.M., Tomko M.J., Gopal S., Wong T.C., Li H.-B., Howell S., Stransky N., Liefeld T., Jang D., Bistline J., Meyers B.H., Armstrong S.A., Anderson K.C., Stegmaier K., Reich M., Pellman D., Boehm J.S., Mesirov J.P., Golub T.R., Root D.E., Hahn W.C.
Parallel genome-scale loss of function screens in 216 cancer cell lines for the identification of context-specific genetic dependencies.
Sci. Data 1:140035-140035(2014)
PubMed=27377824; DOI=10.1038/sdata.2016.52; PMCID=PMC4932877
Mestdagh P., Lefever S., Volders P.-J., Derveaux S., Hellemans J., Vandesompele J.
Long non-coding RNA expression profiling in the NCI60 cancer cell line panel using high-throughput RT-qPCR.
Sci. Data 3:160052-160052(2016)
PubMed=27397505; DOI=10.1016/j.cell.2016.06.017; PMCID=PMC4967469
Iorio F., Knijnenburg T.A., Vis D.J., Bignell G.R., Menden M.P., Schubert M., Aben N., Goncalves E., Barthorpe S., Lightfoot H., Cokelaer T., Greninger P., van Dyk E., Chang H., de Silva H., Heyn H., Deng X.-M., Egan R.K., Liu Q.-S., Miroo T., Mitropoulos X., Richardson L., Wang J.-H., Zhang T.-H., Moran S., Sayols S., Soleimani M., Tamborero D., Lopez-Bigas N., Ross-Macdonald P., Esteller M., Gray N.S., Haber D.A., Stratton M.R., Benes C.H., Wessels L.F.A., Saez-Rodriguez J., McDermott U., Garnett M.J.
A landscape of pharmacogenomic interactions in cancer.
Cell 166:740-754(2016)
PubMed=27807467; DOI=10.1186/s13100-016-0078-4; PMCID=PMC5087121
Zampella J.G., Rodic N., Yang W.R., Huang C.R.L., Welch J., Gnanakkan V.P., Cornish T.C., Boeke J.D., Burns K.H.
A map of mobile DNA insertions in the NCI-60 human cancer cell panel.
Mob. DNA 7:20.1-20.11(2016)
PubMed=28196595; DOI=10.1016/j.ccell.2017.01.005; PMCID=PMC5501076
Li J., Zhao W., Akbani R., Liu W.-B., Ju Z.-L., Ling S.-Y., Vellano C.P., Roebuck P., Yu Q.-H., Eterovic A.K., Byers L.A., Davies M.A., Deng W.-L., Gopal Y.N.V., Chen G., von Euw E.M., Slamon D.J., Conklin D., Heymach J.V., Gazdar A.F., Minna J.D., Myers J.N., Lu Y.-L., Mills G.B., Liang H.
Characterization of human cancer cell lines by reverse-phase protein arrays.
Cancer Cell 31:225-239(2017)
PubMed=30894373; DOI=10.1158/0008-5472.CAN-18-2747; PMCID=PMC6445675
Dutil J., Chen Z.-H., Monteiro A.N.A., Teer J.K., Eschrich S.A.
An interactive resource to probe genetic diversity and estimated ancestry in cancer cell lines.
Cancer Res. 79:1263-1273(2019)
PubMed=30971826; DOI=10.1038/s41586-019-1103-9
Behan F.M., Iorio F., Picco G., Goncalves E., Beaver C.M., Migliardi G., Santos R., Rao Y., Sassi F., Pinnelli M., Ansari R., Harper S., Jackson D.A., McRae R., Pooley R., Wilkinson P., van der Meer D.J., Dow D., Buser-Doepner C.A., Bertotti A., Trusolino L., Stronach E.A., Saez-Rodriguez J., Yusa K., Garnett M.J.
Prioritization of cancer therapeutic targets using CRISPR-Cas9 screens.
Nature 568:511-516(2019)"
