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原发性肝癌模型构建全攻略:从“选模型”到“出数据”一篇讲透

发布人:爱必信(上海)生物科技有限公司

发布日期:2026/7/16 14:37:26

肝细胞癌是全球癌症相关死亡的第三大原因。面对这一严峻挑战,如何选择合适的动物模型,精准复刻人类肝癌的病理特征,是每一位肝癌研究者都必须面对的核心问题。

今天,我们就来系统盘点目前主流的原发性肝癌模型,从化学诱导到基因工程,再到原位移植,帮你理清思路,选对“战友”。

一、模型选择的核心考量

在选择肝癌模型前,需要明确以下三个关键问题:

考量维度
核心问题
研究目的
是研究肝癌发生机制,还是评估药物疗效?
病理特征
需要模拟肝炎、肝纤维化/硬化背景吗?
免疫环境
需要完整的免疫系统(如免疫治疗研究),还是允许人源细胞移植(需免疫缺陷)?

二、四大类原发性肝癌模型详解

第一类:化学诱导模型(经典“金标准”)

原理:通过化学致癌剂诱发的慢性肝损伤、炎症和再生,最终导致肝癌。

模型
诱导剂
给药方式
鼠种推荐
成瘤时间
主要特点
DEN模型
二乙基亚硝胺
单次腹腔注射(15日龄,25 mg/kg)
C57BL/6J
30-40周
高成瘤率(95%-100%),完整经历“炎症→纤维化→HCC”进程,经典首选
DEN + CCl₄
DEN + 四氯化碳
DEN单次启动 + CCl₄多次(1 mL/kg,每周2次,6周)
C57BL/6J
12-16周
快速纤维化/肝硬化背景,造模周期短, CCl₄肝毒性大,需严格控制剂量
DEN + 高脂饮食
DEN + 高脂饲料
DEN启动 + 高脂喂养20-30周
C57BL/6J
35-45周
模拟脂肪肝→肝癌临床场景,代谢综合征背景
AOM/DSS
氧化偶氮甲烷 + 硫酸葡聚糖钠
AOM腹腔注射 + DSS饮用水循环
C57BL/6J
12-15周
主要用于结直肠癌肝转移研究

DEN模型关键参数提醒:

15日龄雄性C57BL/6J,腹腔注射DEN(25 mg/kg),30-40周后HCC发生率可达95%-100%。注射时需注意:针头不可刺入过深(推荐30G细针),注射后轻柔按压穿刺点防止药液渗出。

第二类:基因工程模型(精准靶向)

原理:通过组织特异性启动子(如Alb-Cre)在肝细胞中特异性敲除抑癌基因或激活癌基因。

模型
基因型
诱导方式
成瘤时间
主要特点
Alb-Cre; Pten^(fl/fl)
Pten肝特异性敲除
自发
30-40周
脂肪性肝炎→HCC, 免疫完整
Alb-Cre; p53^(fl/fl); Myc
p53敲除 + Myc激活
自发
8-12周
快速成瘤、高度恶性
Alb-Cre; Ctnnb1^(fl/ex3)
β-catenin激活突变
自发
40-50周
Wnt通路活化、预后较好
TRE-Myc; TetO-Cre
Myc可诱导表达
多西环素饮水
2-4周
快速诱导、可逆性

优点:病因明确,可模拟特定基因突变背景的肝癌;免疫完整,适合免疫治疗研究。

缺点:周期长、成本高;需多品系交配(通常需6-12个月);部分模型有胚胎致死风险。

第三类:原位移植模型(高临床相关性)

原理:将肝癌细胞系或人源性肿瘤组织(PDX)直接注射到小鼠肝脏,模拟肿瘤在原始器官的生长和转移。

3.1 细胞系原位移植

细胞:Hepa1-6(C57BL/6J背景)、Huh7、HepG2(裸鼠)

接种方式:开腹直视下肝左叶注射 / 超声引导经皮穿刺

成瘤时间:2-4周

优势:周期短、可控性强、便于影像学监测(如萤火虫荧光素酶标记)

3.2 人源性肿瘤异种移植(PDX)

组织来源:患者手术切除的肝癌组织

受体小鼠:NSG、NOG(重度免疫缺陷)

成瘤时间:2-4个月

优势:保留原发肿瘤的异质性、病理特征和基因谱,是药物筛选和个体化治疗的金标准

第四类:非酒精性脂肪性肝炎(NASH)-HCC模型(新兴热点)

随着NASH相关肝癌发病率上升,此类模型备受关注。

模型
诱导方式
成瘤时间
主要特点
STAM模型
2日龄STZ注射 + 高脂饮食
16-20周
快速NASH→HCC,纤维化明显
CDAHFD模型
胆碱缺乏、L-氨基酸定义的高脂饲料
20-30周
快速脂肪性肝炎+/−纤维化,体重下降明显
西方饮食 + 低剂量CCl₄
高脂高果糖饮食 + 每周CCl₄
24-36周
代谢综合征背景,渐进性纤维化

模型优缺点总结

DEN化学诱导:经典稳定,完整病理进程,免疫完整;但周期长(30-40周),个体差异大。

基因工程:病因明确,免疫完整,机制清晰;但周期长(6-12个月),成本高,可能有胚胎致死问题。

原位移植:周期短(2-4周),便于影像监测,可控性强;但缺乏肝病背景,免疫缺陷小鼠无法研究免疫治疗。

PDX:保留异质性,临床相关性最高;但成本极高,周期长,需要免疫缺陷小鼠。

NASH-HCC(STAM):快速,代谢背景明确,纤维化明显;需特殊饲料,部分小鼠体重下降明显。

三、检测指标体系

无论选择哪种模型,以下指标是评估肝癌发生发展的核心:

1. 宏观指标

肝重/体重比:评估肝脏肥大及肿瘤负荷

脾重:反映门脉高压及炎症状态

肝脏表面肿瘤数量及最大径:计数所有可见结节

2. 病理学评估

H&E染色:评估肝细胞损伤、炎症、从增生结节→腺瘤→HCC的分级

Masson‘s Trichrome/天狼星红:评估肝纤维化/肝硬化程度

网状纤维染色:评估肝板结构破坏

3. 分子标志物

增殖:Ki-67、PCNA

肝功能/损伤:血清ALT、AST、ALP

肿瘤标志物:AFP(部分模型可检测)

关键通路:β-catenin、c-Myc、Hras突变等

4. 影像学评估

小动物超声:实时监测肿瘤大小及血供

小动物MRI/CT:全身评估及转移灶检测

生物发光成像:适用于荧光素酶标记细胞的原位移植模型

四、肝癌研究思路解析

研究总路线图

临床问题 → 筛选关键分子 → 体内外功能验证 → 机制解析(代谢+免疫) → 微环境互作闭环 → 转化治疗探索

Cao[1]等从患者类器官筛选发现USP2是关键促癌基因,通过去泛素化稳定PPARγ促进脂肪酸(尤其油酸)合成,油酸驱动巨噬细胞FAO代谢重编程使其极化为M2型,M2细胞分泌IL-10经STAT3正反馈上调USP2,形成促癌环路;靶向USP2可诱导铁死亡、抑制M2极化并增强抗PD-1疗效。


研究设计亮点:

环节
设计亮点
筛选
使用PDO + DUB抑制剂库,贴近临床
代谢
代谢组学 + 关键脂肪酸回补实验
免疫
共培养体系 + 巨噬细胞极化 + FAO功能检测
机制
IP-MS + 泛素化位点突变 + 转录调控验证
闭环
双向验证(肿瘤→免疫→肿瘤)
转化
靶向+免疫联合治疗,体内巨噬细胞清除验证

可以借鉴的关键技术组合

类器官(PDO):药物筛选 + 代谢/转录组分析

代谢组学:发现关键代谢物(如油酸)

共培养系统:肿瘤-巨噬细胞互作

泛素化机制:K48链、位点突变、去泛素化酶功能验证

转录调控:CUT&RUN-qPCR、荧光素酶报告基因

免疫治疗模型:DEN诱导HCC模型 + anti-PD-1 + 巨噬细胞清除

五、常见问题与解决方案

常见问题
可能原因
解决方案
DEN成瘤率低(<50%)
剂量过低 / 鼠种不敏感 / 注射失败
提高剂量至25-50 mg/kg;改用C57BL/6J;检查注射技术
DEN注射后1周内小鼠死亡
剂量过高 / 药液泄漏至肠道
降低剂量;缩短针头长度;确保腹腔注射
基因工程鼠无表型
Cre重组效率低 / 观察时间不够
验证Alb-Cre效率;延长观察至9-12个月;考虑他莫昔芬诱导型Cre
原位移植后肿瘤异质性大
细胞系接种量不一致 / 小鼠个体差异
标准化接种量(1×10⁶/只);使用萤火虫荧光素酶标记规范化

原发性肝癌模型的选择没有“最好”,只有“最适合”。建议根据研究目的、预算和时间,选择最能回答科学问题的模型:

机制研究首选:DEN模型(经典、稳定、免疫完整)

药物筛选/免疫治疗:原位移植(Hepa1-6同系模型)或DEN模型

个体化/精准医疗:PDX模型

NASH-HCC研究:STAM模型或西方饮食+CCl₄联用模型

希望这篇推文能为你的肝癌研究提供思路与帮助。如需某一模型的详细实验方案,欢迎进一步交流!

参考文献:
Cao J, Chen K, Hu K, et al. USP2-mediated PPARγ stabilization promotes hepatocellular carcinoma progression and M2 macrophage polarization via oleic acid. J Immunother Cancer. 2025;13(11):e012721. Published 2025 Nov 4. doi:10.1136/jitc-2025-012721


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