全国首发 | 动物脑类器官培养攻略

流程

类器官原代培养流程

原代

一、准备工作

1、仪器设备

CO₂培养箱、双人单面超净台、倒置显微镜、台式冷冻离心机、水浴锅(abs72023)或水浴摇床，医用冰箱、-80℃冰箱、移液器（一套）、眼科剪、眼科镊

2、试剂耗材（以肠癌为例）

动物脑类器官培养基试剂盒(abs90050)，基质胶（低因子、无酚红）(abs9495)，60mm细胞培养皿(abs7005)， 100μm滤筛(abs7009)，15mL离心管(abs7102)，1.5mL EP管若干(abs7119)，24孔细胞培养板(abs7035)、金属冰盒、眼科剪刀、眼科镊

二、操作流程

1、样本准备

（1）将组织放入含有预冷的(2-8°C)组织保存液E的取样瓶中（浸没整个组织），4℃从医院/实验室取回；

（2）将取样瓶消毒，组织取出放入培养皿样本拍照，并登记，大小，颜色，软硬程度，组织类型等信息。

2、清洗-剪碎

（1）在60mm细胞培养皿(abs7005)里用2-3mL原代培养缓冲液B浸泡。用原代培养缓冲液B清洗三次（每次更换培养皿）后剪碎，剪成大约1-3mm³的组织块，转移至15mL离心管。

3、消化-过滤

（1）向15mL离心管中加入5倍原代组织消化液C（消化液体积：组织体积=5:1，如果估量组织体积困难，使用5mL消化液通常足够）在37℃进行消化15-30min（消化过程中随时观察消化情况）。

（2）取少量液体在显微镜下观察，镜下观察到较多的细胞团（5-50个细胞抱团）后， 加入3倍体积原代培养缓冲液B（缓冲液体积：消化液体积=3:1）终止消化，用枪头轻柔吹打可以看到液体变浑浊。

（3）使用100μm滤筛(abs7009)进行过滤，取少量滤液在镜下进行观察。将滤液收集到15mL离心管，于300g 4℃富集离心5min后移去上清。

4、加胶-点板-加液（这里是整个原代操作的点睛之笔）

（1）准备工作

a 基质胶需用金属冰盒盛放在4℃冰箱过夜融化；

b 枪头、离心管需要-20℃提前预冷至少半小时；

c 融化后的基质胶可一直放4℃储存，建议2周内用完。

低温金属冰盒(abs7289)

（2）接种要求

24孔板(abs7035)，每孔25uL基质胶细胞团混合物，500-750uL类器官培养液。

（3）接种密度

密度建议1：基质胶体积：细胞团沉淀体积=25:1（如果估摸细胞团沉淀体积困难，通常加300uL基质胶足够）

密度建议2：500个细胞团/25uL基质胶（如果想计数接种，可以参照此密度建议）

（4）加胶-点板

向细胞团沉淀加入基质胶(abs9495)，进行吹打混匀（不要满吹满打，容易产生气泡），然后进行点板。整个操作在金属冰盒或冰上进行。操作熟练以后，加胶，混匀，点板控制在半分钟内，有利于保持基质胶良好的流畅性。

（5）加液

将铺好的培养板放入37℃培养箱中40-60min成胶，添加500-750μL类器官培养基A进行培养。大概10-14天，多数类器官直径在200um-500um，可进行传代操作。

铺板密度

传代（消化分两种情况）

一、类器官数量较多或体积较大传代步骤

1、类器官收集及洗涤

（1）收集：移液器吸去培养基，每孔添加1-2mL左右4℃类器官传代培养缓冲液G，轻柔吹散基质胶，收集在15mL离心管中（24孔板，每5孔为一组）。

（2）洗涤：加类器官传代培养缓冲液G定容至14mL（缓冲液越多，基质胶被稀释的越充分，越容易去除），4℃静置40min或-20℃放置5min（目的是使基质胶软化，如果冰箱保温效果强，缩短冷冻时间，摸索合适的冷冻时间时，可取出离心管摇晃看不到基质胶说明冷化好了）。

（3）接下来将离心管进行300g，4℃，离心5min，离心完通常会有这两种情况：

第一种是正常情况，分成三层（如下图），此时弃掉上清和基质胶层，保留类器官沉淀即可。

第二种是不正常情况，分成两层（如下图），这种情况可能与冷化不充分有关。此时弃掉缓冲液，留下基质胶类器官混悬液，重复上一步洗涤步骤，再次冷化离心，通常能出现清晰分层（缓冲液层、基质胶层、类器官沉淀层），此时弃掉上清和基质胶层，保留类器官沉淀即可。如果依然是两层（缓冲液层和基质胶类器官混悬液层），此时弃掉缓冲液和上1/3的基质胶类器官混悬液，保留下2/3即可。

促进基质胶和类器官有效分离条件：

a 离心机的选择非常重要，水平角离心机相比固定角离心机更利于基质胶和类器官分离；

b 离心机的温度最好是4℃（可避免基质胶固化），离心转速可适当提高（最高不要超过500g），离心时间可适当加长（最常不超过10min）。

2、类器官消化

（1）添加2-3mL类器官传代消化液D于超净台内消化2-3min，消化期间吹打1-2次。此步骤以消化成细胞团为主，千万不要消化成单细胞，单细胞类器官存活率低。如果不确定是否消化适宜，可吸取数微升镜下观察，如果有较多细胞团可停止消化。

（2）添加5倍类器官传代培养缓冲液G（缓冲液：消化液=5:1）终止消化，300g 4℃离心5min弃去上清（如果有基质胶残留，残留量<50uL正常，不影响传代类器官增殖）

3、加胶-点板-加液

（1）准备工作

a 基质胶需用金属冰盒盛放在4℃冰箱过夜融化；

b 枪头、离心管需要-20℃提前预冷至少半小时；

c 融化后的基质胶可一直放4℃储存，建议2周内用完。

（2）接种要求

24孔板(abs7035)，每孔25uL基质胶细胞团混合物，500-750uL类器官培养液。

（3）接种密度

密度建议1： 类器官通常按1:2传代，例如，24孔板收集5孔，传代10孔，需要的基质胶量25*10=250uL

密度建议2：500个细胞团/25uL基质胶（如果想计数接种，可以参照此密度建议）

注意：不管是按密度建议1还是，密度建议2，如果有残留的基质胶，新胶量至少是残留胶量的1.5倍。

（4）加胶-点板

向细胞团沉淀加入基质胶(abs9495)，进行吹打混匀（不要满吹满打，容易产生气泡），然后进行点板。整个操作在金属冰盒或冰上进行。操作熟练以后，加胶，混匀，点板控制在半分钟内，有利于保持基质胶良好的流畅性。

（5）加液

将铺好的培养板放入37℃培养箱中40-60min成胶，添加500-750μL人肠癌类器官培养基A进行培养。大概10-14天，多数类器官直径在200-300um，可进行传代操作。

二、类器官数量不足或体积较小时：

1、类器官收集、吹打、洗涤

（1）移液器吸去培养基，每孔添加1-2mL左右4℃类器官传代培养缓冲液G，轻柔吹散基质胶；

（2）进行吹打，将类器官吹成细胞团（可取样镜下观察有较多细胞团时可停止吹打）；

（3）洗涤： 24孔板，每5孔为一组，收集在15mL离心管中，加类器官传代培养缓冲液G定容至14mL（缓冲液越多，基质胶被稀释的越充分，越容易去除），4℃静置40min或-20℃放置5min（目的是使基质胶软化，如果冰箱保温效果强，缩短冷冻时间，摸索合适的冷冻时间时，可取出离心管摇晃看不到基质胶说明冷化好了）；

（4）接下来将离心管进行300g，4℃，离心5min，离心完通常会有这两种情况：

第一种是正常情况，分成三层（如下图），此时弃掉上清和基质胶层，保留细胞团沉淀即可。

第二种是不正常情况，分成两层（如下图），这种情况可能与冷化不充分有关。此时弃掉缓冲液，留下基质胶类器官混悬液，重复上一步洗涤步骤，再次冷化离心，通常能出现清晰分层（缓冲液层、基质胶层、类器官沉淀层），此时弃掉上清和基质胶层，保留类器官沉淀即可。如果依然是两层（缓冲液层和基质胶细胞团混悬液层），此时弃掉缓冲液和上1/3的基质胶细胞团混悬液，保留下2/3即可。

促进基质胶和类器官有效分离条件：

a 离心机的选择非常重要，水平角离心机相比固定角离心机更利于基质胶和类器官分离；

b 离心机的温度最好是4℃（可避免基质胶固化），离心转速可适当提高（最高不要超过500g），离心时间可适当加长（最常不超过10min）。

2、加胶-点板-加液

（1）准备工作

a 基质胶需用金属冰盒盛放在4℃冰箱过夜融化；

b 枪头、离心管需要-20℃提前预冷至少半小时；

c 融化后的基质胶可一直放4℃储存，建议2周内用完。

（2）接种要求

24孔板(abs7035)，每孔25uL基质胶细胞团混合物，500-750uL类器官培养液。

（3）接种密度

密度建议1： 对于类器官数量较少的情况，为了维持生长所需的旁分泌信号，需要2-3孔富集到1孔，例如，24孔板收集6孔，2孔富集1孔，铺3孔，需要的基质胶量25*3=75uL。

密度建议2：500个细胞团/25uL基质胶（如果想计数接种，可以参照此密度建议）

注意：不管是按密度建议1还是按密度建议2，如果有残留的基质胶，新胶量至少是残留胶量的1.5倍

（4）加胶-点板

向细胞团沉淀加入基质胶(abs9495)，进行吹打混匀（不要满吹满打，容易产生气泡），然后进行点板。整个操作在金属冰盒或冰上进行。操作熟练以后，加胶，混匀，点板控制在半分钟内，有利于保持基质胶良好的流畅性。

（5）加液

将铺好的培养板放入37℃培养箱中40-60min成胶，添加500-750μL类器官培养基A进行培养。大概7-10天，多数类器官直径在200-300um，可进行再次传代。

冻存

冻存要领:

类器官不需要消化（消化后的类器官复苏活率低）；

在类器官指数增长期冻存（等到该传代的时候类器官活性比指数期差），也就传代后的Day3-Day4，多数类器官直径在100um-200um，这个时机选择冻存。

一、类器官收集及洗涤

1、收集：移液器吸去培养基，每孔添加1-2mL左右4℃类器官传代培养缓冲液G，轻柔吹散基质胶，收集在15mL离心管中（24孔板，每5孔为一组）。

2、洗涤：加类器官传代培养缓冲液G定容至14mL（缓冲液越多，基质胶被稀释的越充分，越容易去除），4℃静置40min或-20℃放置5min（目的是使基质胶软化，如果冰箱保温效果强，缩短冷冻时间，摸索合适的冷冻时间时，可取出离心管摇晃看不到基质胶说明冷化好了）。

3、接下来将离心管进行300g，4℃，离心5min，离心完通常会有这两种情况：

第一种是正常情况，分成三层（如下图），此时弃掉上清和基质胶层，保留类器官沉淀即可。

第二种是不正常情况，分成两层（如下图），这种情况可能与冷化不充分有关。此时弃掉缓冲液，留下基质胶类器官混悬液，重复上一步洗涤步骤，再次冷化离心，通常能出现清晰分层（缓冲液层、基质胶层、类器官沉淀层），此时弃掉上清和基质胶层，保留类器官沉淀即可。如果依然是两层（缓冲液层和基质胶类器官混悬液层），此时弃掉缓冲液和上1/3的基质胶类器官混悬液，保留下2/3即可。

促进基质胶和类器官有效分离条件：

a 离心机的选择非常重要，水平角离心机相比固定角离心机更利于基质胶和类器官分离；

b 离心机的温度最好是4℃（可避免基质胶固化），离心转速可适当提高（最高不要超过500g），离心时间可适当加长（最常不超过10min）。

二、类器官冻存

1、冻存密度，以24孔板为例

密度建议1：2孔/mL冻存液

密度建议2：500个类器官/mL冻存液（如果想计数冻存，可以参照此密度建议）

2、添加适量类器官冻存液F，轻柔吹打重悬，建议立即进行冻存。（放置太久，DMSO对类器官有损伤）

3、梯度冻存：将冻存管放入梯度冻存盒然后保存至-80℃过夜，第二天取出放入液氮罐。

     手动冻存：4℃冰箱放置30min，转移至-20℃放置1h，然后移至-80℃过夜，第二天取出放入液氮罐。

复苏

一、实验前准备

1、将水浴锅预热至37℃；

2、细胞实验室进行常规消毒，用预防喷雾喷涂并且使用紫外线照射40min的超净工作台台面；

3、在超净工作台中按次序摆好消过毒的离心管、吸管、培养板等。

二、取出冻存管

1、根据类器官冻存记录按标签找到所需类器官的编号；

2、从液氮罐中取出冻存盒，取出所需的冻存管，同时核对冻存管外的编号。

三、迅速解冻

1、迅速将冻存管投入到已经预热的水浴锅中解冻，并要不断地摇动，使管中地液体迅速融化；

2、约1-2min后冻存管内液体完全溶解，取出用酒精棉球擦拭冻存管地外壁，再拿入超净台内。

四、将类器官冻存液移入15mL离心管，添加10倍体积类器官传代培养缓冲液G（缓冲液体积：冻存液体积=10:1）重悬，轻柔吹打混匀，300g 4℃离心5min，弃上清。

五、加胶-点板-加液

1、准备工作

（1）基质胶需用金属冰盒盛放在4℃冰箱过夜融化；

（2）枪头、离心管需要-20℃提前预冷至少半小时；

（3）融化后的基质胶可一直放4℃储存，建议2周内用完。

2、复苏要求

24孔板(abs7035)，每孔25uL基质胶类器官混合物，500-750uL类器官培养液。

3、复苏密度

复苏密度建议1：1:1接种（原来冻几孔就复苏几孔）；

复苏密度建议2：250个类器官/25uL基质胶（如果想计数接种，可以参照此密度建议）。

4、加胶-点板

向类器官沉淀加入基质胶(abs9495)，进行吹打混匀（不要满吹满打，容易产生气泡），然后进行点板。整个操作在金属冰盒或冰上进行。操作熟练以后，加胶，混匀，点板控制在半分钟内，有利于保持基质胶良好的流畅性。

5、加液

将铺好的培养板放入37℃培养箱中40-60min成胶，添加500-750μL类器官培养基A进行培养。大概10-14天，多数类器官直径在200um-500um，可进行传代操作。

6、脑类器官鉴定图

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