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发布人:上海优宁维生物科技股份有限公司
发布日期:2024/12/27 15:15:48
概述
在类器官的培养过程中,如果我们想了解类器官的增殖及凋亡状态,可以通过对活细胞和死细胞进行荧光染色,通过荧光显微镜拍照观察。
Calcein-AM是一种对活细胞进行荧光标记的细胞染色试剂,发绿色荧光 (Ex=490nm, Em=515nm)。因其在传统的Calcein(钙黄绿素)基础上引入乙酰甲氧基甲酯 (AM)基团,增加了疏水性,使其能够轻易穿透活细胞膜。一旦进入细胞后,Calcein-AM (本身不发荧光)被细胞内的酯酶剪切形成膜非渗透性的极性分子Calcein,从而被滞留在细胞内并发出强绿色荧光。与其它同类试剂(如BCECF-AM 和CFDA)相比,由于Calcein-AM 细胞毒性极低,是最适合用于活细胞染色的荧光探针,而且不会抑制任何的细胞功能,如增殖和淋巴球的趋化性。
由于死细胞缺乏酯酶,Calcein-AM仅用于对活细胞的细胞生存能力测试和短期标记。因此,Calcein-AM常常与死细胞荧光探针如碘化丙啶(PI)等联合使用,同时进行活细胞和死细胞的荧光双重染色。碘化丙啶(Propidium iodide,PI)不能穿过活细胞的细胞膜,仅能穿过死细胞膜的无序区域而到达细胞核,并嵌入细胞的DNA双螺旋从而产生红色荧 光(Ex=535 nm, Em=617 nm),因此PI 仅对死细胞染色。由于Calcein和PI-DNA都可被490 nm激发,因此可用荧光显微镜同时观察活细胞和死细胞。而用545nm激发,仅可观察到死细胞。
原理
本试剂盒的工作原理就在于Calcein-AM和PI的双重染料,来进行活细胞和死细胞的双重染色标记,从而进行活细胞和死细胞水平的分析。根据我司优化的实验体系,以24孔板,每孔25ul类器官基质胶凝聚物为例,每孔添加500μl 染色工作液进行染色。
活细胞/死细胞双染试剂盒(abs50056)
实验步骤
一、工作液的配制:
1、1×Assay Buffer(反应缓冲液)的配制 从低温冰箱内取出10×Assay Buffer,根据单次用量无菌条件取出适量,用去离子水 (dH2O)做10 倍稀释以得到1×Assay Buffer。
2、1×染色工作液的配制
(1)先将低温保存的Calcein-AM 溶液(2mM)和PI 溶液(1.5mM)回到室温20-30min。 注意:第一次使用可对母液进行分装,以减少反复冻融次数。
(2)取5μl Calcein-AM 溶液(2mM)和15μl PI 溶液(1.5mM)加入5ml 1×Assay Buffer,充分混匀。此时得到Calcein-AM 的工作液浓度为2μM,PI 的工作液浓度为4.5 μM。
注意:由于不同种类器官的最佳染色条件不同,初次实验建议做梯度实验,以确定Calcein-AM 和PI 的最适浓度。梯度筛选的原则为使用最低的探针浓度得到最好的荧光结果。可以使用以下方法来优化得到两种荧光染料的最佳工作浓度
a 用0.1%皂素或者0.1-0.5%地高辛孵育类器官1小时,或者用70%乙醇孵育类器官1小时,从而制备死类器官;
b 用0.1-10μM 的PI 溶液进行死类器官染色,以得到仅仅对细胞核染色,而不会对细胞质染色的最佳工作浓度。
c 用0.1-10μM 的Calcein-AM 进行死类器官染色,以得到不会对细胞质染色的最佳工作浓 度。然后用此浓度进行活细胞染色,去观察活细胞是否能被染色。
二、染色步骤:
以24孔板,每孔25ul类器官基质胶凝聚物为例,检测时,只需弃除类器官培养液,保留孔板内25μl类器官基质胶凝聚物,加入染色工作液即可。
1、将类器官培养基吸弃,加入PBS清洗2-3遍,以充分去除残留的酯酶活性,然后弃除PBS。
2、 每孔加入500μl 染色工作液,混匀,37℃孵育1小时。
3、荧光显微镜下使用490±10 nm 激发滤片同时检测活细胞(黄绿色荧光)以及死细胞(红色荧光)。另外,使用545nm 的发射滤片仅能观察到死细胞。也可以直接在荧光酶标仪下使用合适的滤片进行检测。
注意事项
1、由于Calcein-AM 对湿度非常敏感,若是Calcein-AM 溶液每次取完需要量后,必须紧紧密封盖子。建议根据单次用量,分装密封保存。
2、由于Calcein-AM 的稳定性比较差,此染色工作液必须现配现用,并且在当天用完。
3、碘化丙啶(PI)有一定的致癌性,操作时一定要注意防护。若接触到皮肤,需要立即用 自来水清洗。
4、为了您的安全和健康,请穿实验服并戴一次性手套操作。
染色效果图展示
一、人肝细胞癌类器官明场图
人肝细胞癌类器官扩增过程(由少到多)
二、人肝细胞癌类器官活死染色视频
三、人肝细胞癌类器官活死染色图
人肝细胞癌类器官活细胞、死细胞、活死细胞染色合并图
人肝细胞癌类器官活死细胞染色合并图
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