细胞膜红色荧光染料 DID
细胞膜红色荧光染料 DID 用途与合成方法
DiD 是 DiI 的衍生物,具有明显往红光迁移的激发和发射光谱,这一特性使其特别适合标记具显著自荧光效应的细胞或组织。DiD 可被 633nm 的氦-氖(He-Ne)激光所激发,呈红色荧光,在进入细胞膜之前荧光非常弱,当与细胞膜结合后其荧光强度大大增强,进入细胞后,染料在整个细胞膜上扩散,最佳浓度时可以使整个细胞染色。 红色或紫色或深蓝色固体,溶于DMF,DMSO,乙醇。
1. 染色液制备
(1)配置DMSO或EtOH储存液:储存液用 DMSO或EtOH配置浓度1~5 mM。注:a、未使用的储存液分装储存在-20℃,避免反复冻融,可稳定保存6个月。b、发现较难溶解时可以适当加热,并用超声处理以促进溶解。
(2)工作液制备:用合适的缓冲液(如:无血清培养基,HBSS或PBS)稀释储存液,配制浓度为1~5 μM的工作液。注:工作液最终浓度建议根据不同细胞系和实验体系来优化
2. 悬浮细胞染色
(1)加入适当体积的染色工作液重悬细胞,使其密度为1×106/mL。
(2)37℃孵育细胞 2~20 min,不同的细胞最佳培养时间不同。可以20 min作为起始孵育时间,之后优化体系以得到均一的标记结果。
(3)孵育结束,按1000~1500 rpm离心5 min。
(4)倾倒上清液,再次缓慢加入37℃预热的生长培养液重悬细胞。
(5)重复(3),(4)步骤两次以上。
3. 贴壁细胞的染色
(1)将贴壁细胞培养于无菌盖玻片上。
(2)从培养基中移走盖玻片,吸走过量培养液,将盖玻片放在潮湿的环境中。
(3)在盖玻片的一角加入100 μL的染料工作液,轻轻晃动使染料均匀覆盖所有细胞。
(4)37℃孵育细胞2~20 min,不同的细胞最佳培养时间不同。可以20 min作为起始孵育时间,之后优化体系以得到均一的标记结果。
(5)吸干染料工作液,用培养液洗盖玻片2~3次,每次用预温的培养基覆盖所有细胞,孵育5~10 min,然后吸干培养基。
4. 显微镜检测
(1)DiD,DiO,DiI,DiR和DiS滤光器的选择: XF23-Omega, 31001-Chroma。
(2)多色染料的同时检测,滤光器按照以下设定:
a) DiI和DiO=Omega XF52,Chroma 51004;
b) DiI和DiD=Omega XF92,Chroma 51007;
c) DiI,DiO和DiD=Omega XF93,Chroma 61005