禽流感病毒H6亚型(AIV-H6)核酸试剂盒(荧光-PCR法)的应用
发布日期:2025/8/20 10:07:54
背景[1-3]
禽流感病毒H6亚型(AIV-H6)核酸试剂盒(荧光-PCR法)针对禽流感病毒H6亚型HA基因高度保守区域设计特异性引物和探针,在反应体系中含禽流感病毒H6亚型基因组模板的情况下,PCR反应得以进行并释放荧光信号。利用仪器对PCR过程中相应通道的信号强度进行实时监测和输出,实现检测结果的定性、定量分析。

禽流感病毒H6亚型(AIV-H6)核酸试剂盒(荧光-PCR法)
检验原理
禽流感病毒H6亚型(AIV-H6)核酸试剂盒(荧光-PCR法)采用RT-PCR技术,针对甲型流感(禽流感)病毒H6亚型的基因高度保守区域设计特异性引物,用RT-PCR技术对甲型流感(禽流感)病毒H6亚型的核酸进行体外扩增检测,在反应体系中含甲型流感(禽流感)病毒H6亚型核酸模板的情况下,RT-PCR反应进行特异性扩增,利用琼脂糖凝胶电泳技术对RT-PCR扩增产物进行检测,依据特异性扩增片段的结果,判断待检样品中是否含有甲型流感(禽流感)病毒H6亚型成分,实现检测结果的定性分析。
禽流感病毒H6亚型(AIV-H6)核酸试剂盒(荧光-PCR法)特点:
1.一站式,用户不需要单独准备每种成分,包括引物和对照。
2.根据甲型流感(禽流感)病毒H6亚型的保守基因序列设计的引物,具有良好的特异性。
3.灵敏度可以达到1000拷贝/反应。
4.使用一管式RT-PCR技术,RT和PCR两步在一个试管内完成,不需要中间转移样品,降低了操作误差和可能的污染。
5.本产品足够50次20μL体系的RT-PCR。
适用仪器:ABI7500、安捷伦MX3000P/3005P、LightCycler、Bio-Rad、Eppendorf等系列荧光定量PCR检测仪。
样本类型:病死或扑杀禽,取喉气管、脑、胸肌、心肌和肺等组织;待检活禽,用棉拭子取呼吸道分泌物或排泄物,置于1mL 50%甘油生理盐水中。
保存和运输:上述标本短期内可保存于-20℃,长期保存可置-70℃,但不能超过6个月,标本运送应采用2~8℃冰袋运输,严禁反复冻融。
禽流感病毒H6亚型(AIV-H6)核酸试剂盒(荧光-PCR法)操作流程:
1.样本处理:每份组织分别从3个不同的位置称取样品约1g,手术剪剪碎混匀后取0.5g于研磨器中研磨,加入1.5mL生理盐水后继续研磨,待匀浆后转至1.5mL灭菌离心管中,8000rpm离心2min,取上清液100μL于1.5mL灭菌离心管中;棉拭子直接取100μL于1.5mL灭菌离心管中。
2.试剂配制:加入预混反应液、酶及模板,离心混匀。
3.扩增检测:运行预设程序(如:95℃预变性2min,95℃15s→60℃30s,45循环),分析Ct值。
结果判读
阳性:检测通道Ct值≤40,且曲线有明显的指数增长曲线;
阴性:样本检测结果Ct值>40或无Ct值。
应用[4][5]
禽流感病毒H6亚型(AIV-H6)核酸试剂盒(荧光-PCR法)可以用于鸭源H6N6亚型禽流感病毒的分离鉴定与致病性分析
实验于2014年11月从表观健康三穗鸭泄殖腔分离鉴定得到一株H6N6亚型AIV,通过对其全基因组测序、遗传进化和致病性分析,旨在为家鸭中H6亚型AIV流行病学及遗传进化情况提供参考。
1. H6N6亚型AIV分离鉴定及遗传进化分析:为了解贵州地区H6亚型AIV的流行情况和遗传进化特点,本研究采用鸡胚接种、血清学和RT-PCR方法从表观健康的三穗鸭泄殖腔分离鉴定得到一株H6N6亚型AIV(命名为A/duck/Guizhou/013/2014(H6N6),并对其进行部分生物学特性测定、全基因组测序与遗传进化分析。结果表明,分离株HA裂解位点是“339PQIETRG345”,为非连续碱性氨基酸,其MDT和ICPI分别为98.4 h和0.415,符合低致病性AIV的特征。BLAST结果显示分离株HA基因与A/chicken/Hunan/S41912/2009(H6N2)的核苷酸同源性最高(97.1%);NA基因与A/duck/Eastern China/48/2010(H6N6)的相似性最高(97.0%);而PB2基因与A/duck/Yamagata/061004/2014(H6N6)的同源性最高(96.9%),M基因与NP基因则分别与A/duck/Jiangsu/4/2010(H3N6)和A/duck/Hokkaido/Vac-1/04(H5N1)同源性最高。以上研究结果表明,贵州省分离到的H6N6亚型AIV是一株弱毒株,其基因组可能是由H6N2、H3N6和H5N1等多个亚型病毒重组而成。
2.鸭源H6N6亚型AIV对鸭致病性研究:为了解鸭源H6N6亚型AIV对麻鸭的致病性,将36只3周龄非免疫麻鸭随机分成两组:实验组以107.0EID50/0.1 mL的剂量通过滴鼻点眼方式接种病毒;对照组接种0.1 mL PBS。接种后分别于第1、3、5、7、9和11 d,采集咽喉和泄殖腔棉拭子,同时采集剖杀鸭的组织脏器(心、肝、脾、肺、肾、脑、法氏囊、胸腺),通过禽流感病毒H6亚型(AIV-H6)核酸试剂盒(荧光-PCR法)来检测病毒排毒和组织脏器中病毒含量。另外,取部分脏器用于病理组织学检查。禽流感病毒H6亚型(AIV-H6)核酸试剂盒(荧光-PCR法)试验结果表明,鸭感染分离株后不表现明显的临床症状,咽喉和泄殖腔未出现排毒现象。鸭感染后第3、5和7d在肺脏、脾脏、肝脏、脑、心脏均可以检测到病毒复制,除肺脏中第3 d病毒含量较高外,其它时间点的组织中病毒含量均不高。另外,病理组织学观察发现,在肺脏中可见少量炎性细胞浸润,其它组织无明显的病理变化。以上试验结果表明分离的H6N6亚型AIV对鸭的致病力弱,且在鸭体内的复制能力低。
试验分离到一株低致病性H6N6亚型AIV,该病毒可能是由H6N2、H3N6和H5N1等多个亚型AIV重组而成;鸭感染分离株后无明显临床症状和病理组织学变化,喉头和泄殖腔不存在排毒现象;分离株对鸭免疫器官损伤轻微,并且对免疫器官中IL-2、IL-10和IFN-α转录水平有影响。
参考文献
[1]Adaptation of avian influenza A(H6N1)virus from avian to human receptor‐binding preference[J].Fei Wang;;Jianxun Qi;;Yuhai Bi;;Wei Zhang;;Min Wang;;Baorong Zhang;;Ming Wang;;Jinhua Liu;;Jinghua Yan;;Yi Shi;;George F Gao.EMBO J,2015(12)
[2]Phylogenetic analysis of a novel H6N6 avian influenza virus isolated from a green peafowl in China and its pathogenic potential in mice[J].Zhaobin Fan;;Yanpeng Ci;;Yixin Ma;;Liling Liu;;Deli Wang;;Jianzhang Ma;;Yanbing Li;;Hualan Chen.Infection,Genetics and Evolution.2014
[3]Characterization of low-pathogenic H6N6 avian influenza viruses in central China[J].Yanfeng Yao;;Huadong Wang;;Quanjiao Chen;;Hongbo Zhang;;Tao Zhang;;Jianjun Chen;;Bing Xu;;Hanzhong Wang;;Bing Sun;;Ze Chen.Archives of Virology,2013(2)
[4]Antisense oligonucleotides targeting the RNA binding region of the NP gene inhibit replication of highly pathogenic avian influenza virus H5N1[J].Tao Zhang;;Tie-cheng Wang;;Ping-sen Zhao;;Meng Liang;;Yu-wei Gao;;Song-tao Yang;;Chuan Qin;;Cheng-yu Wang;;Xian-zhu Xia.International Immunopharmacology,2011(12)
[5]陈佳琪.鸭源H6N6亚型禽流感病毒的分离鉴定与致病性分析[D].贵州大学,2016.
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