使用说明: 1. RNA合成:
a. DNA模板经限制性核酸内切酶酶切线性化。
b. 酚/氯仿抽提DNA,用乙醇沉淀后,溶于适量的无菌去离子水中。本步骤也可以使用适当的DNA纯化试剂盒,例如信裕生物的
DNA纯化试剂盒(D0033),直接进行纯化,从而免去了酚氯仿抽提和乙醇沉淀这些步骤。
c. 参考如下表格设置反应体系:
▼
▲
Transcription Buffer(5X)
10μl
NTP Mixture(10mM each)
10μl
线性DNA模板
1μg
Ribonuclease Inhibitor
50U
SP6 RNA Polymerase
30U
补充经DEPC处理的去离子水
至50μl
d. 按上表设置好反应体系后,轻轻混匀(可以用移液器吹打混匀或用Vortex在最低速度轻轻混匀),随后离心沉淀液体。
e. 37℃孵育1~2个小时。
f. 加入2μl 0.5M EDTA(pH 8.0) 到反应体系中混匀或-20℃冷却终止反应。
g. 电泳分析转录产物,或通过其他适当方法鉴定转录的效率。 注意:
a) 转录需在无RNA酶条件下进行。
b) 反应体系需在室温条件下配置,4℃有亚精胺(spermidine)存在时DNA可发生沉淀。
c) 按以上反应条件,每1μg 模板DNA可合成超过10μg 的RNA。
d) 如果模板DNA的线形化不太完全,会导致转录出比预期长度更长的RNA,同时使预期长度的转录本比例下降。
e) 可根据实际情况按照比例放大或缩小上述反应体系。 2. 放射标记RNA的合成:
a. DNA模板经限制性核酸内切酶酶切线性化。
b. 酚/氯仿抽提DNA,用乙醇沉淀后,溶于适量的无菌去离子水中。本步骤也可以使用适当的DNA纯化试剂盒,例信裕生物的
DNA纯化试剂盒(D0033),直接进行纯化,从而免去了酚氯仿抽提和乙醇沉淀这些步骤。
c. 参考如下表格设置反应体系:
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Transcription Buffer(5X)
4μl
3 NTP Mixture(10mM each, without CTP)
1μl
100μM CTP
2.4μl
[α-32P]-CTP, ~30TBq/mmol(800Ci/mmol)
1.85MBq(50μCi)
线性DNA模板
0.2~1μg
Ribonuclease Inhibitor
20U
SP6 RNA Polymerase
20U
补充经DEPC处理的去离子水
至20μl
d. 37℃孵育1~2个小时。
e. -20℃冷却终止反应。
f. 分析和检测RNA的标记效率。 注意:
a) 按以上方法合成的RNA活性一般为3-5 x108dpm/μg。
b) 上述标记反应中也可以使用[32P]、[35S]或[3H]标记的其他NTP。使用其他放射性标记的NTP时,其他的NTP需作相应调整。20μl反应体系各成分推荐使用剂量分别为:1.85MBq(50μCi)5'-[α-32P]-CTP,~30TBq/mmol(800Ci/mmol);11.1MBq(300μCi)5'-[α-35S]-UTP,>37TBq/mmol(>1000Ci/mmol);0.925MBq(25μCi)5,6-[3H]-UTP,1.1-2.2TBq/mmol(30-60Ci/mmol) 。
c) 放射性标记NTP浓度低于12μM时,全长转录本合成效率也会下降。 3. 其它用途可以参考上述用途或相关文献资料进行。