植物叶绿体纯化试剂盒
产品及特点叶绿体是重要的，负责植物光合作用的细胞器，很多重要的特性(如雄性不育) 也跟叶绿体相关，所以叶绿体是研究植物生理和母系遗传的重要材料。对植物叶绿 体进行生化，遗传和分子生物学研究都需要进行叶绿体纯化。本产品就是基于密度 梯度离心的，专门用于从植物叶片中纯化完整叶绿体的试剂盒。它具有下列特点：
1. 即用型试剂盒，用户不需要单独配制各种溶液。
2. 提供 AB 两种选择，A 型用于叶绿体粗提，所得叶绿体含少量其他细胞器污染， 可用于后续的 SDS-PAGE，Western，ELSIA 和蛋白组分析。B 型用于叶绿 体精提，所得叶绿体完整，可用于后续的光合作用，电子链和磷酸化，跨膜转 运，体外叶绿体蛋白合成，蛋白定位等研究。还可用于的叶绿体膜，基质，类 囊体，叶绿体 DNA 和叶绿体 RNA 纯化。
3. 本产品足够 15 次提取，每次可处理 30g 叶片，能得到 5 mg 左右叶绿体。
4. 已经成功用于菠菜，大豆，莴笋，白菜，烟草和甜菜等植物，还可用于更多植 物（可能需要优化条件）。
规格及成分 成 份 编 号 大纸盒包装
溶液 A 成分一 LM120308A1 250 mL×2
溶液 A 成分二（干粉） LM120308A2 3 g
溶液 B LM120308B 60 mL
带柄尼龙滤膜 LM120308C 1 个
使用手册 LM120308sc 1 份
运输及保存 常温运输和保存，试剂盒期限一年。
自备试剂 去离子水。
使用方法 注意：叶绿体对温度高度敏感，所以整个操作必须在冰上或者在冷室进行，所用器皿和溶液均需要在 4℃预冷。离心时一定要在 4℃进行，离心力以 g 而不是 rpm计算。如果需要研究叶绿体的功能，提取过程还需要在昏暗的光线条件下进行。
1. 实验前 1-2 天将植物放在暗室培养以减少叶绿体中淀粉颗粒的形成，否则离心时这些颗粒很容易使叶绿体破裂。叶片在实验前需先用自来水洗净，再用蒸馏水淋洗，去掉多余水分。如果叶片采集后不能立即处理，则保存时需要保持叶片湿润，即使如此，叶片的放置时间也不能超过一天。
2. 新鲜（实验当天）制备溶液 A：将自备的去离子水与溶液 A 成分一按 4：1 的比例混合，然后在混合液中加入溶液 A 成分二干粉到终浓度 0.1%（每 100 mL中加入 0.1 g 干粉），摇晃溶解后所得溶液即为溶液 A，冰上预冷待用。一次实验（从 30 g 叶片提取叶绿体）所需要的溶液 A 体积跟材料不同而不同。溶液 A 不能长期保存，需要现用现配。
3. 新鲜采集植物叶片，快速去除叶脉并将叶片剪成 1-3 cm2大小的碎片并浸泡在适量的预冷的溶液 A 中（每克叶片加 4 mL 溶液 A，但对烟草和大豆，每克叶片需要加 6 mL 溶液 A）。
4. 将浸泡了叶片的溶液 A 转移到 Waring 匀浆机（即家用制备果汁的匀浆机）中，低速匀浆 10 秒，避免起泡沫。用玻璃棒把液面的碎片按入匀浆机底部后，再低速匀浆 10 秒。注意：除 Waring 匀浆机外，还可以选择 Dounce 玻璃匀浆器，Polytron 匀浆机和研磨（加玻璃珠）等裂解细胞的方法，但这些方法的单次处理量都比较小，需要将样品分成很多小份单独匀浆，然后再汇集。
5. 用带柄尼龙滤膜过滤匀浆液，可先将滤液收集到预冷的 200 mL 量筒中，再等分到 4 个预冷的 50 mL 的塑料离心管中（每个管中的滤液不要超过 35mL）。带柄尼龙滤膜后可反复使用。
6. 在水平转子离心机上 4℃ 200 g 离心 3 分钟（对菠菜，白菜和莴笋材料）或400 g 离心 1 分钟（对甜菜材料），白色沉淀为未破裂的细胞或细胞核。
7. 将上清液（含叶绿体）转移到一个新的、预冷的 50 mL 塑料离心管中。
8. 在水平转子离心机上 4℃ 1000 g 离心 7 分钟，小心弃上清，沉淀含叶绿体，呈浅绿色。
9. 在沉淀中加入 1.5 mL 预冷的溶液 A，手弹离心管底部使叶绿体重悬。注意：重悬时好避免溶液起泡，也不要用枪头吹打，否则叶绿体容易破裂。沉淀下有白色淀粉属于正常现象，但重悬叶绿体时避免将白色淀粉重悬。
10. 将 4 管叶绿体重悬液汇集（共约 6 mL）。此溶液为叶绿体粗提产物，可直接用于后续的 SDS-PAGE，Western，ELSIA 和蛋白组分析。如果需要以之为材料精提叶绿体，就需要将破裂的叶绿体和完整的叶绿体分开，根据植物的不同，可选用下述两种密度梯度离心法之一进行分离。
11. 单浓度分离法（适合菠菜，白菜和莴笋等材料）：
a) 在 50 mL 塑料离心管中先加入 6 mL 溶液 A 成分一和 4 mL 溶液 B，充分混合均匀。
b) 在其液面上小心铺上第 11 步汇集得到的约 6 mL 叶绿体重悬液。
c) 在水平转子离心机上 4℃ 1000 g 离心 8 分钟，最上层的绿色带含破碎的叶绿体，线粒体和核糖体等，管底的绿色沉淀为完整的叶绿体。
d) 小心将上清倒出后，在叶绿体沉淀中加入预冷的 0.5 mL 溶液 A 成分一，手指轻弹管底使之重悬。
e) 将叶绿体重悬液转移到 1.5mL 离心管中并避光保存。可在相差显微镜下检查叶绿体完整性。叶绿体必须尽快使用，否则非常容易失去活性。
12. 双浓度分离法（适合烟草，甜菜和大豆等材料）：
a) 在 14 mL 塑料离心管中先加入 0.5 mL 溶液 A 和 2 mL 溶液 B，充分混合均匀，得密度梯度重液。
b) 在另一试管中将 3 mL 溶液 A 和 2 mL 溶液 B 充分混合均匀，得密度梯度轻液。
c) 将密度梯度轻液小心铺在密度梯度重液之上，然后将第 10 步汇集得到的叶绿体重悬液中的 4 mL(还剩下 2 mL)小心铺在密度梯度轻液之上。
d) 在水平转子离心机上 4℃ 3200 g 离心 15 分钟，最上层绿色带含破碎的叶绿体、线粒体和核糖体等，重液和轻液间的绿色带为完整叶绿体。
e) 用广口吸管小心将重液和轻液之间的绿色带（叶绿体）转移到新的离心管
中，加入三倍体积的预冷的溶液 A 成分一，轻柔混匀。
f) 在水平转子离心机上 4℃ 1700 g 离心 1 分钟，小心将上清倒出后，在绿色的叶绿体沉淀中加入预冷的 0.5 mL 溶液 A 成分一，手指轻弹管底使之叶绿体重悬。
g) 将叶绿体重悬液转移到 1.5 mL 离心管中并避光保存，也可在相差显微镜下检查叶绿体完整性。叶绿体必须尽快使用，否则非常容易失去活性。所得精提叶绿体可用于后续的光合作用，电子链和磷酸化，跨膜转运，体外叶绿体蛋白合成，蛋白定位等研究。还可用于的叶绿体膜，基质，类囊体，叶绿体 DNA 和叶绿体 RNA 纯化。
