名称 苏木素伊红(HE)染色试剂盒
Haematoxylin Eosin (H&E) staining
规格 2×100mL | 2×500mL
存储 室温避光保存,有效期12个月
自备材料:
1、盐酸乙醇分化液
2、蓝化液(如稀氨水、碳酸锂溶液等)
3、系列乙醇
4、4%的多聚甲醛 (Cat#: PH0427)
产品简介
苏木精-伊红染色法 ( Hematoxylin-Eosin staining ),简称 HE 染色法 ,是病理学常规制片中最基本的染色方法。苏木精染液为碱性 ,主要使细胞核内的染色质与胞质内的核糖体着紫蓝色;伊红为酸性染料,主要使细胞质和细胞外基质中的成分着红色 。
染色过程需要优化,着色情况与组织或细胞的种类有关,也随其生活周期及病理变化而改变。例如,很多细胞在新生时期胞浆对伊红着色较淡或轻度嗜碱,当其衰老时或发生退行性变则呈现嗜伊红浓染。胶原纤维在老化和出现透明变性时,伊红着色由浅变深。
染色原理:
1、 细胞核染色的原理: 苏木素为碱性天然染料,可使细胞核着色。细胞核内染色质的成分主要是DNA,在DNA双螺旋结构中,两条核苷酸链上的磷酸基向外,使DNA双螺旋的外侧带负电荷,呈酸性,很容易与带正电荷的苏木素碱性染料以离子键或氢键结合而被染色。苏木素在碱性溶液中呈蓝色,所以细胞核被染成蓝色。
2、 细胞浆染色的原理: 伊红是一种化学合成的酸性染料,在一定条件下可使细胞浆着色。细胞浆的主要成分是蛋白质,为两性化合物,细胞浆的染色与染液的pH值密切相关。当染液的pH值在胞浆蛋白质等电点(4.7~5.0)以下时,胞浆蛋白质以碱式电离,则细胞浆带正电荷,就可被带负电荷的酸性染料染色。伊红在水中离解成带负电荷的阴离子,与胞浆蛋白质带正电荷的阳离子结合,使细胞浆着色,呈现红色。
3、 分化作用: 染色后,用某些特定的溶液将组织过多结合的染色剂脱去,这个过程称为分化作用,所用的溶液称为分化液。在HE染色中常用1%盐酸乙醇作为分化液,因酸能破坏苏木素的醌型结构,使组织与色素分离而退色。经苏木素染色后,必须用1%盐酸乙醇分化,使细胞核过多结合的苏木素染料和细胞浆吸附的苏木素染料脱去,再进行伊红染色,才能保证细胞核与细胞浆染色的分明。
4、 返蓝作用:分化之后,苏木素在酸性条件下处于红色离子状态,呈红色;在碱性条件下处于蓝色离子状态,呈蓝色。组织切片经酸性乙醇分化后呈红色或粉红色,故分化之后,立即用水除去组织切片上的酸而中止分化,再用弱碱性水使苏木素染上的细胞核呈现蓝色,这个过程称为返蓝作用或蓝化作用。另外用自来水浸洗也可使细胞核返蓝,但所需时间较长。
使用方法
操作步骤(仅供参考):
(一) 石蜡切片染色
1、 切片脱蜡至水
①二甲苯作用2次,每次5~10min。
②(可选)无水乙醇作用2次,每次3~5min。
③95%的乙醇 3~5min
④90%的乙醇 3~5min
⑤80%的乙醇 3~5min
⑥自来水或蒸馏水冲洗 1~3min
2、染色
①苏木素染色液染色 5~8min (具体时间根据染色结果和实验要求调整)
②自来水或蒸馏水冲洗 5~10s
③盐酸乙醇分化(可选) 2~5s
④自来水冲洗 20~30s
⑤蓝化液返蓝 20~40s
⑥自来水冲洗 30~60s
⑦伊红染色液染色 3~5min (具体时间根据染色结果和实验要求调整)
⑧自来水冲洗 1~5s
2、脱水、透明、封固
①80%乙醇 10~20s
②90%乙醇 10~20s
③95%乙醇作用2次,每次1~2min。
④无水乙醇作用2次,每次2~3min。
⑤二甲苯透明3次,每次2~3min。
⑥中性树脂封片。
染色结果:细胞核呈蓝色;细胞质、肌纤维、胶原纤维、甲状腺胶质等呈深浅不一的红色;角蛋白、红细胞等呈明亮的橙红色。
(二) 冰冻切片染色
冰冻切片不用脱蜡,可固定后直接染色,其方法与石蜡切片相同。
染色结果:细胞核呈蓝色;细胞质、纤维呈红色。
(三) 细胞染色
1、4%的多聚甲醛固定10~20min。
2、自来水冲洗2次,每次2min。
3、 蒸馏水冲洗2次,每次2min。
4、染色、脱蜡、透明、封固步骤同石蜡切片的染色步骤,作用时间相应缩短。
染色结果:细胞核呈蓝色;细胞质、纤维呈红色。
注意事项
1、 切片脱蜡应尽量干净。
2、 95%乙醇、90%乙醇、80%乙醇应经常更换新液。
3、 盐酸乙醇分化液的分化时间应该依据切片厚薄、组织的类别以及新旧而定,另外分化后自来水冲洗时间应该足够,以便彻底清洗酸。
4、 染色过程推荐浅染,通常只需能够分辨细胞核即可,颜色过深有可能影响细胞质颜色。
5、 冷冻切片染色时间尽量要短。
6、 蓝化液常使用0.2~1%氨水水溶液或Scoot促蓝液或0.1~1%碳酸锂水溶液。
7、次使用本试剂盒时建议先取1-2个样品做预实验。
8、 为了您的安全和健康,请穿实验服并戴一次性手套操作。