兔毛囊细胞

从日本大耳白兔的毛囊组织中分离纯化细胞,采用酶消化结合梯度离心获得高纯度细胞群体,在MCDB-131培养基下扩增培养;运用钙成像检测SSEA-1, CD73标志物表达,通过表面增强拉曼散射(SERS)分析蛋白表达谱,并结合克隆形成实验综合评价细胞表型特征。 冻存复苏后细胞存活率可达87%以上。

产品名称:兔毛囊细胞
英文名称: Rabbit Hair Follicle Cells
组织来源: 毛囊组织
默认种属 :兔
产品规格:5×10^5Cells/T25
方法简介 实验室分离的兔毛囊细胞采用胶原酶-中性蛋白酶联合消化结合差速贴壁法,并通过专用培养基培养筛选制备而来。
质量检测 实验室分离的兔毛囊细胞经特异性标志物免疫荧光鉴定,纯度可达85%以上,且不含有HIV-1、HBV、HCV、支原体、细菌、酵母和真菌等。
包被条件: 鼠尾胶原Ⅰ(2-5 μg/cm²)
培养基: 兔毛囊细胞完全培养基(含FBS、生长添加剂、Penicillin、Streptomycin等)
换液频率: 每2-3天换液一次
生长特性: 贴壁
细胞形态: 上皮细胞样
传代比例: 1:2
传代特性: 可传3-5代
消化液: 0.25%胰蛋白酶
兔毛囊细胞体外培养周期有限;建议使用配套的专用生长培养基及正确的操作方法来培养,以此保证该细胞的最佳培养状态。

一、实验前准备
1. 手术剪、镊子、培养耗材高压灭菌;超净台紫外通风30min。
2. 配制灌洗液 冰预冷D-Hanks液、消化液(Ⅰ型胶原酶+Dispase II)+胰蛋白酶、α-MEM + 10% FBS + 1% 双抗、双抗。
3. 健康新西兰大白兔(2.0-2.5kg),3%戊巴比妥钠耳缘静脉注射,冰浴预冷所有缓冲液。
二、取材与预处理
1. 空气栓塞法处死,75%酒精浸泡消毒体表,无菌操作下暴露并摘取皮肤。
2. 置于冰预冷D-Hanks液中反复漂洗,去除血污及附属组织,仔细剔除结缔组织。
3. 将纯化后的皮肤组织用眼科剪尽量剪碎,尽量减小组织块大小以利消化。
三、细胞分离与消化
1. 组织碎块与Ⅰ型胶原酶+Dispase II+胰蛋白酶混合酶液按1:3比例混合,37℃振荡消化44min。
2. 加入含20% FBS的培养基中和酶活性,反复吹打使组织充分分散。
3. 细胞悬液经40μm滤网过滤,2次200g×10min离心洗涤,收集细胞。
四、纯化与接种培养
1. 细胞悬液经40μm滤网过滤,采用Percoll密度梯度离心富集干细胞,去除未消化组织块。
2. 用α-MEM + 10% FBS + 1% 双抗调整细胞浓度至140000.0cells/mL,接种于预涂明胶的培养皿中。
3. 置于37℃、5% CO2培养箱中培养,每2天换液一次,倒置显微镜下观察细胞贴壁及梭形或多角形,贴壁生长,核质比高,核仁明显。

取材操作全程在超净台中进行,毛囊组织取出后尽快去除血管和结缔组织,用含1% P/S的PBS清洗至组织变白,整个过程温度控制在4°C。
培养板需用1%明胶预包被1小时后PBS洗涤3次,晾干备用,未经处理的培养表面会导致囊贴壁率低于30%。
该细胞为贴壁生长型,体外可传代10-15次,建议每2天换液一次,传代比例控制在1:2以内以维持细胞正常形态和功能。
培养基中必须含有DMEM/F12含10% FBS和1%青霉素-链霉素,其中重组生长因子需分装保存于-80°C避免反复冻融,每次使用新鲜稀释至工作浓度以保证实验可重复性。
日常维护中需每日检查细胞形态和培养基颜色,出现浑浊或颜色异常应立即换液并排查污染,传代后24小时内避免换液以利于细胞贴附恢复。

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