大鼠肠系膜平滑肌细胞

方法简介  实验室分离的大鼠肠系膜平滑肌细胞采用胶原酶-中性蛋白酶联合消化结合差速贴壁法，并通过专用培养基培养筛选制备而来。

质量检测  实验室分离的大鼠肠系膜平滑肌细胞经特异性标志物免疫荧光鉴定，纯度可达85%以上，且不含有HIV-1、HBV、HCV、支原体、细菌、酵母和真菌等。

包被条件： 鼠尾胶原Ⅰ（2-5 μg/cm²）

培养基： 大鼠肠系膜平滑肌细胞完全培养基(含FBS、生长添加剂、Penicillin、Streptomycin等)

换液频率： 每2-3天换液一次

生长特性： 贴壁

细胞形态： 平滑肌样

传代比例： 1:3

传代特性： 可传5-8代

消化液： 0.25%胰蛋白酶

大鼠肠系膜平滑肌细胞体外培养周期有限；建议使用配套的专用生长培养基及正确的操作方法来培养，以此保证该细胞的最佳培养状态。

前置准备

实验动物：4-6周龄清洁级SD大鼠，体重180-220g，每只可获得0.8-1.5×10⁶个细胞，活力>88%

试剂：中性蛋白酶、胰蛋白酶、弹性蛋白酶、DNA酶、RPMI-1640培养基

分离纯化步骤

取目标组织用无钙镁PBS洗涤3次，剔除脂肪和结缔组织后剪成小碎片，加入中性蛋白酶、胰蛋白酶、弹性蛋白酶、DNA酶消化30-50分钟

细胞悬液依次过100目、200目滤网去除未消化组织块，收集滤液后离心收集细胞

利用免疫磁珠分选技术（MACS）纯化目标细胞，纯度可达87%以上

原代培养要点

调整细胞密度至3×10⁴接种于预处理培养皿，37℃、5% CO₂培养箱培养

平滑肌细胞增殖速度中等，传代后24小时贴壁，第4-6天可传代

常见问题优化

细胞贴壁率低：使用合适包被基质（胶原/纤维连接蛋白/多聚赖氨酸），优化接种密度

纯度不达标：优化密度梯度离心条件，延长免疫磁珠孵育时间，增加洗涤步骤

细胞活力差：严格控制消化时间，除消化步骤外全程冰上操作，使用新鲜配制试剂

一、实验前准备

1. 手术器械（剪刀、镊子、止血钳）及培养耗材经121℃高压灭菌20min；超净台紫外照射30min。

2. 配制冰预冷D-Hanks液、EDTA+胰蛋白酶混合消化液、DMEM + 10% FBS + 1% 双抗、胎牛血清、双抗，全部冰浴预冷。

3. SPF级SD大鼠（200-250g），10%水合氯醛腹腔注射麻醉处理。

二、取材与预处理

1. 颈椎脱臼处死，体表酒精消毒，暴露目标组织器官。

2. 无菌条件下摘取肠组织，冰预冷D-Hanks液漂洗去除血液及杂质，去除周围结缔组织和脂肪。

3. 眼科剪将组织剪碎至1mm³小块，转入离心管。

三、细胞分离与消化

1. 剪碎组织加入EDTA消化液，37℃水浴消化30min，期间每隔5-10min振荡吹打。

2. 用含血清培养基终止反应，经200目筛网过滤获取单细胞悬液。

3. 4℃、200g离心10min，弃上清，PBS洗涤两次，重悬细胞沉淀。

四、纯化与接种培养

1. 细胞悬液经40μm滤膜过滤，采用适当纯化方法去除杂质细胞，去除大颗粒杂质。

2. 用DMEM + 10% FBS + 1% 双抗重悬细胞沉淀，调整接种密度后接种至明胶预包被的培养器皿。

3. 37℃、5% CO2培养，每2-3天换液一次，定期倒置显微镜观察梭形或纺锤形，贴壁生长，呈峰窝状排列及生长情况。