小鼠淋巴结淋巴细胞

采用密度梯度离心法从C57BL/6小鼠的淋巴结淋巴细胞来源血液或组织中分离免疫细胞,经 NH₄Cl 裂解红细胞后,接种于未包被培养皿中,使用 RPMI-1640 培养基(含 10% FBS、1% 双抗及 10 ng/mL M-CSF/G-CSF)培养;通过流式细胞术检测 CD11b、F4/80(大鼠)、CD14、CD86 等巨噬细胞/免疫细胞标志物表达,结合 MTT 增殖实验和吞噬功能实验(荧光微球吞噬 assay)验证免疫细胞活性与功能。

产品名称:小鼠淋巴结淋巴细胞
英文名称: Mouse Lymph Node Lymphocytes
组织来源: 淋巴结
默认种属 :昆明小鼠
产品规格:5×10^5Cells/T25
方法简介 实验室分离的小鼠淋巴结淋巴细胞采用分离淋巴结组织、研磨获取单细胞悬液后通过密度梯度离心法制备而来。
质量检测 实验室分离的小鼠淋巴结淋巴细胞,不含有HIV-1、HBV、HCV、支原体、细菌、酵母和真菌等。
培养基: 小鼠淋巴结淋巴细胞完全培养基(含FBS、生长添加剂、Penicillin、Streptomycin等)
换液频率: 每2-3天换液一次
生长特性: 悬浮
细胞形态: 圆形
传代比例: 不传代
传代特性: 不增殖;不传代
消化液: 0.25%胰蛋白酶
小鼠淋巴结淋巴细胞体外培养周期有限;建议使用配套的专用生长培养基及正确的操作方法来培养,以此保证该细胞的最佳培养状态。

淋巴结解剖取材:小鼠颈椎脱臼处死,75% 乙醇全身消毒;无菌条件下解剖,摘取腋窝、腹股沟、肠系膜部位淋巴结组织,放置预冷无菌 PBS 培养皿;小心剔除附着淋巴结表面脂肪、结缔组织。
组织研磨制备单细胞悬液:将淋巴结放置无菌筛网(200 目)之上,筛网置于盛有 RPMI‑1640 基础培养基的培养皿;无菌注射器活塞轻柔研磨碾压淋巴结组织,使淋巴细胞充分穿过筛网,释放至培养基之中。
去除组织残渣,收集粗悬液:研磨完成,收集筛网下方全部细胞‑培养基混合液体,转移至无菌离心管,丢弃筛网上残留的结缔组织残渣。
离心沉淀细胞,裂解红细胞:1000 r/min 室温离心 5 min,弃上清;加入预冷红细胞裂解液,轻柔吹打重悬细胞沉淀,室温孵育 3‑5 min 裂解红细胞;立刻加入足量 RPMI‑1640 培养基终止裂解反应。
二次离心洗涤与活细胞计数:800 r/min 离心 5 min,弃上清废液;RPMI‑1640 完全培养基重悬洗涤细胞沉淀,重复洗涤 1 次;台盼蓝染色计数活淋巴细胞,调整细胞悬液浓度。
细胞接种体外培养孵育:将淋巴细胞悬液接种于培养板,加入淋巴细胞完全培养基;置于 37℃、5% CO₂细胞培养箱培养;根据实验需求可加入相应刺激剂诱导淋巴细胞活化增殖,定期观察细胞悬浮生长状态。
细胞鉴定、短期保存处理:采用 CD3、CD19 流式抗体鉴定 T、B 淋巴细胞亚群;淋巴细胞为原代悬浮细胞,不适合长期冻存,如需冻存,配置悬浮细胞专用冻存液梯度降温液氮保存;体外尽量短时间培养,避免细胞大量凋亡。

1.实验全程需在生物安全柜中操作,避免空气中的微生物污染培养体系。
2.培养板需预先用胶原I型(50ug/ml)包被过夜,以增强细胞贴壁能力。
3.该细胞对培养条件较为敏感,建议初次培养时设置多个平行实验以提高成功率。
4.补充10ug/ml胰岛素、5ug/ml转铁蛋白和2nM三碘甲腺原氨酸(T3)。
5.该细胞传代比例为1:2至1:3,每3-4天换液一次,避免过度融合影响细胞状态。

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