兔卵巢成纤维细胞

从新西兰大白兔卵巢成纤维细胞组织标本经机械分离与胶原酶 II 联合消化获取成纤维细胞,经差速贴壁法纯化后接种于纤维连接蛋白包被培养皿中,采用 DMEM/F12 完全培养基(含 10% FBS、2 mM L-谷氨酰胺及 1% 非必需氨基酸)维持培养;通过免疫荧光检测 FSP-1/S100A4、α-SMA(活化型)及 PDGFR-β 表达,Western blot 分析细胞外基质蛋白(胶原 I、纤连蛋白)分泌水平,确认成纤维细胞功能表型。

产品名称:兔卵巢成纤维细胞
英文名称: Rabbit Ovarian Fibroblasts
组织来源: 卵巢组织
默认种属 :新西兰大白兔
产品规格:5×10^5Cells/T25
方法简介 实验室分离的兔卵巢成纤维细胞采用胰蛋白酶-胶原酶混合消化法结合差速贴壁法制备而来。
质量检测 实验室分离的兔卵巢成纤维细胞经Vimentin免疫荧光鉴定,纯度可达90%以上,且不含有HIV-1、HBV、HCV、支原体、细菌、酵母和真菌等。
培养基: 兔卵巢成纤维细胞完全培养基(基础培养基,含FBS、bFGF、Insulin、Penicillin、Streptomycin等)
换液频率: 每2-3天换液一次
生长特性: 贴壁
细胞形态: 成纤维细胞样
传代比例: 1:2
传代特性: 可传5代左右;3代以内状态最佳
消化液: 0.25%胰蛋白酶
兔卵巢成纤维细胞体外培养周期有限;建议使用配套的专用生长培养基及正确的操作方法来培养,以此保证该细胞的最佳培养状态。

冻存细胞复苏:取出冻存管,37℃水浴快速融化,轻微摇晃冻存管,冰晶基本消融,酒精消毒外壁,超净台转移细胞悬液至预温完全培养基离心管。
离心去除冻存液:配平离心管,1000rpm 离心 5min,小心吸弃上清,留存底部细胞沉淀。
重悬分散细胞沉淀:加入 2‑3mL 兔卵巢成纤维细胞完全培养基,轻柔吹打沉淀,打散细胞团块,制备单细胞悬液。
计数接种培养器皿:细胞计数,接种密度 5×10⁴‑1×10⁵cells/cm²,补全培养基,十字摇晃培养瓶,使细胞均匀铺底。
恒温孵育贴壁:置于 37℃、5% CO₂饱和湿度培养箱静置孵育,24h 减少挪动培养瓶。
换液清除死细胞:复苏 24h 显微镜观察贴壁状态,弃旧培养基,更换新鲜预热完全培养基,每 2‑3 天换液。
细胞传代处理:细胞汇合 80%‑85%,PBS 清洗细胞层,胰酶消化,镜下细胞收缩变圆,加入完全培养基终止消化,收集细胞离心,分瓶传代。

1.实验全程需在生物安全柜中操作,避免空气中的微生物污染培养体系。
2.培养器皿需用0.1%明胶溶液包被30分钟以上,去除未结合明胶后使用。
3.细胞在体外培养过程中需注意维持其分化表型,避免过度传代导致表型丢失。
4.培养基中需添加20ng/ml碱性成纤维细胞生长因子(bFGF)以维持细胞增殖活性。
5.实验选用新西兰白兔或日本大耳兔,需注意兔源细胞的种属特异性差异。 该细胞传代比例为1:2至1:3,每3-4天换液一次,避免过度融合影响细胞状态。

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