人子宫内膜干细胞

人子宫内膜干细胞

采用组织块贴壁法从健康供体的子宫内膜干细胞来源组织（骨髓/脐带/脂肪等）中分离间充质成分，经密度梯度离心纯化单核细胞后，接种于未包被培养皿中，使用 α-MEM 培养基（含 10% FBS、100 U/mL 青霉素和 100 μg/mL 链霉素）培养；通过流式细胞术检测干细胞标志物 CD90、CD44、CD105、STRO-1 表达，结合三系分化能力验证（成骨诱导 ALP 阳性/阿利新蓝染色、成脂诱导 Oil Red O 染色、成软骨诱导 Alcian Blue 染色）确认干细胞多能性。

产品名称：人子宫内膜干细胞

英文名称： Human Endometrial Stem Cells

组织来源： 子宫组织

默认种属 ：人

产品规格：5×10^5Cells/T25

方法简介  实验室分离的人子宫内膜干细胞采用胶原酶消化法、低密度稀释克隆制备而来。

质量检测  实验室分离的人子宫内膜干细胞经CD90免疫荧光鉴定，纯度可达90%以上，且不含有HIV-1、HBV、HCV、支原体、细菌、酵母和真菌等。

培养基： 人子宫内膜干细胞完全培养基(含FBS、生长添加剂、Penicillin、Streptomycin等)

换液频率： 每2-3天换液一次

生长特性： 贴壁

细胞形态： 成纤维细胞样

传代比例： 1:2

传代特性： 可传3代左右

消化液： 0.25%胰蛋白酶

人子宫内膜干细胞体外培养周期有限；建议使用配套的专用生长培养基及正确的操作方法来培养，以此保证该细胞的最佳培养状态。

镜下观察干细胞汇合度 70‑80%，不要长至完全融合，吸弃旧培养基。

PBS 轻柔洗涤细胞表面 2 次，吸净 PBS 废液。

干细胞专用胰酶消化液加入瓶内，37℃孵育 3‑5min，观察细胞变圆松动。

加入干细胞完全培养基终止消化，温和吹打制备单细胞悬液。

悬液转移离心管，950rpm 离心 5min，去除上清废液。

子宫内膜干细胞专用培养基重悬细胞沉淀，分瓶接种，控制接种密度。

放置 37℃、5% CO₂培养箱培养，24h 查看贴壁，每 2‑3 天更新培养基。

1.实验全程需在生物安全柜中操作，避免空气中的微生物污染培养体系。

2.培养板需预先用胶原I型(50ug/ml)包被过夜，以增强细胞贴壁能力。

3.细胞在体外培养过程中需注意维持其分化表型，避免过度传代导致表型丢失。

4.添加5ng/ml转化生长因子-beta(TGF-beta)以调节细胞表型和功能维持。

5.该细胞传代比例为1:2至1:3，每3-4天换液一次，避免过度融合影响细胞状态。