大鼠结肠平滑肌细胞

方法简介  实验室分离的大鼠结肠平滑肌细胞采用胰蛋白酶-胶原酶联合消化法结合差速贴壁法制备而来。

质量检测  实验室分离的大鼠结肠平滑肌细胞经α-SMA免疫荧光鉴定，纯度可达90%以上，且不含有HIV-1、HBV、HCV、支原体、细菌、酵母和真菌等。

培养基： 大鼠结肠平滑肌细胞完全培养基(含FBS、生长添加剂、Penicillin、Streptomycin等)

换液频率： 每2-3天换液一次

生长特性： 贴壁

细胞形态： 成纤维细胞样

传代比例： 1:2

传代特性： 可传5代左右；3代以内状态最佳

消化液： 0.25%胰蛋白酶

大鼠结肠平滑肌细胞体外培养周期有限；建议使用配套的专用生长培养基及正确的操作方法来培养，以此保证该细胞的最佳培养状态。

前置准备

实验动物：SD大鼠，组织取材需保持血管/器官完整性

试剂：0.25%胰蛋白酶、II型胶原酶、DNase I、DMEM/F12培养基、胎牛血清(FBS)、PBS缓冲液、平滑肌细胞专用培养基、胎牛血清(FBS)

分离纯化步骤

取实验动物目标组织(血管/器官平滑肌层)，用预冷PBS反复冲洗去除血液

仔细分离去除外膜和黏膜层，仅保留平滑肌层组织，剪碎至1-2mm3

加入0.25%胰蛋白酶和II型胶原酶混合液，37度消化40-60分钟，期间振荡2-3次

消化完成后过滤(70um+40um)，300g离心10分钟收集细胞沉淀

细胞悬液接种于培养皿中，采用差速贴壁法24小时后换液去除非贴壁细胞

原代培养要点

平滑肌细胞贴壁能力较强，接种后24-48小时可见贴壁细胞呈梭形生长

使用含20%FBS的DMEM/F12完全培养基，37度、5% CO2培养

每2-3天换液一次，细胞融合达80-90%时进行传代

平滑肌细胞传代时使用0.25%胰蛋白酶消化5-10分钟，离心收集后重新接种

常见问题优化

细胞纯度不高：可采用药物筛选法(5-氟尿嘧啶20uM处理48小时去除非平滑肌细胞)

平滑肌细胞表型转换：控制传代次数在5代以内，培养基中保持适当FBS浓度(10-20%)

细胞生长缓慢：添加10ng/mL PDGF-BB可促进平滑肌细胞增殖

一、实验前准备

器械：精细解剖器械、组织剪、研钵、细胞筛。

试剂：DMEM/F12、0.2% 胶原酶 Ⅱ、0.1% 胰酶、PBS、胎牛血清、双抗。

提前配制完全培养基，超净台紫外消杀。

二、取材与预处理

取大鼠结肠，冲洗肠内容物后纵向剖开肠壁。

显微镊剥离最内层黏膜上皮层，去除浆膜外层结缔组织，保留中间肌层组织。

将纯肌层组织用预冷 PBS 漂洗 3 次，去除残留黏膜碎屑。

三、细胞分离与消化

剪碎肌层组织至糊状（<1mm³），加入 Ⅱ 型胶原酶 37℃水浴消化 40min。

每 10min 吹打一次，消化结束后加血清培养基终止酶活。

静置 2min 取上层细胞悬液，剩余沉淀补加酶液二次消化 20min，合并悬液。

四、纯化与接种培养

悬液过 200 目筛，1200rpm 离心 5min，洗涤沉淀 2 次。

完全培养基重悬，按适宜密度接种培养瓶。

差速贴壁法纯化：接种 2h 后弃上清更换培养基，去除优先贴壁的成纤维细胞，剩余即为平滑肌细胞。