大鼠滑膜细胞

方法简介  实验室分离的大鼠滑膜细胞采用混合酶消化法制备而来。

质量检测  实验室分离的大鼠滑膜细胞经Vimentin免疫荧光鉴定，纯度可达90%以上，且不含有HIV-1、HBV、HCV、支原体、细菌、酵母和真菌等。

培养基： 大鼠滑膜细胞完全培养基(含FBS、生长添加剂、Penicillin、Streptomycin等)

换液频率： 每2-3天换液一次

生长特性： 贴壁

细胞形态： 成纤维细胞样

传代比例： 1:2

传代特性： 可传5代左右；3代以内状态最佳

消化液： 0.25%胰蛋白酶

大鼠滑膜细胞体外培养周期有限；建议使用配套的专用生长培养基及正确的操作方法来培养，以此保证该细胞的最佳培养状态。

前置准备

实验动物：SD大鼠，取健康组织块约0.5-1g

试剂：0.25%胰蛋白酶、II型胶原酶、DNase I、DMEM/F12培养基、胎牛血清(FBS)、PBS缓冲液、DMEM/F12完全培养基、胎牛血清(FBS)

分离纯化步骤

取实验动物目标组织，用预冷无钙镁PBS反复冲洗去除血液和杂质

剪碎组织至1mm3大小，加入0.25%胰蛋白酶，37度消化30-40分钟

加入II型胶原酶继续消化30分钟，胎牛血清终止消化

经70um和40um滤网过滤，300g离心8分钟收集细胞沉淀

重悬细胞后接种于未包被培养皿中，37度培养24小时后换液去除悬浮细胞

原代培养要点

成纤维细胞贴壁能力强，接种后12-24小时大部分细胞贴壁，呈梭形或星形

使用DMEM/F12+10%FBS完全培养基，37度、5% CO2培养

每2-3天换液一次，细胞融合达80-90%时可用0.25%胰蛋白酶消化传代

原代成纤维细胞增殖较快，通常7-14天可达融合状态

常见问题优化

成纤维细胞生长过快：适当降低FBS浓度至5-10%可减缓生长速度

细胞老化：控制传代次数在10代以内，早期代次实验结果更可靠

交叉污染：严格无菌操作，注意区分成纤维细胞与肌成纤维细胞表型

一、实验前准备

显微剪镊灭菌；0.2%Ⅰ 型胶原酶、DMEM 完全培养基、预冷无菌 PBS；200 目滤网。

选用大鼠跟腱、趾屈肌腱作为取材来源，操作台提前消毒。

二、取材与预处理

处死大鼠后剥离后肢皮肤，分离跟腱，剔除肌腱外围腱鞘、肌肉、脂肪组织。

PBS 漂洗肌腱 3 次，横向剪碎肌腱至 1mm³ 组织小块。

三、细胞分离与消化

胶原酶溶液 37℃摇床消化 1.5h，间断吹打。

血清培养基终止消化，充分吹打解离细胞。

滤网过滤，收集单细胞滤液。

四、纯化与接种培养

离心弃上清，完全培养基重悬接种培养瓶。

培养箱静置培养，第 2 天换液去除未贴壁碎片。

细胞长满后传代 2 次，去除杂细胞，获得纯化肌腱成纤维细胞。