可溶性淀粉合成酶(SSS）测试盒 新品

可溶性淀粉合成酶(SSS）测试盒

测定意义与原理

测定意义

可溶性淀粉合成酶（Soluble Starch Synthase, SSS, EC2.4.1.21）是淀粉合成途径的关键酶，以UDP-葡萄糖（ADPG）为糖供体催化淀粉合成。研究其活性对于植物淀粉合成、碳分配调控机制和抗逆性机制具有重要意义：农业研究：研究作物淀粉品质改良、抗逆性机制和肥料效应生物学研究：了解植物能量代谢途径和碳代谢调控机制食品工业：评估食品营养价值、控制食品加工过程和质量基础研究：研究淀粉合成相关基因功能和表达调控

测定原理

可溶性淀粉合成酶催化以UDP-葡萄糖为糖供体,结合到引物淀粉的非还原端α-1,4糖苷键上,延长淀粉链,通过测定反应体系中淀粉的含量变化来反映酶活性的高低。

试剂盒组成

碘比色法/分光光度法/微量法试剂盒

组分 规格 作用说明

提取液 液体100mL×1瓶 用于提取样本中的SSS

试剂一 液体100mL×1瓶 含缓冲液和底物UDP-葡萄糖溶液

试剂二 液体25mL×1瓶 含引物淀粉溶液

试剂三 液体25mL×1瓶 含碘-碘化钾溶液，显色剂

标准品 1mL×1支 含淀粉标准液，浓度为10mg/mL

自备仪器与试剂

必备仪器

碘比色法/分光光度法/微量法：可见分光光度计/酶标仪、台式离心机、恒温水浴锅、可调式移液器、1mL玻璃比色皿/96孔板、研钵、电子天平

必备耗材

离心管（1.5mL/10mL）、一次性吸头、研钵/组织匀浆器、超声破碎仪

自备试剂：蒸馏水/去离子水、生理盐水

样本前处理方法

植物组织样本取样：称取0.1g样本，加入1mL提取液，进行冰浴匀浆离心：8000g，4℃离心10min，取上清，置冰上待测

种子样本取样：称取0.1g种子，加入1mL提取液，进行冰浴匀浆离心：8000g，4℃离心10min，取上清，置冰上待测

块根/块茎样本取样：称取0.1g块根/块茎，加入1mL提取液，进行冰浴匀浆离心：8000g，4℃离心10min，取上清，置冰上待测

细胞/微生物样本收集：先收集微生物或细胞到离心管内，离心后弃上清破碎：按照微生物或细胞数量（10⁴个）:提取液体积(mL)为500~1000:1的比例（建议500万微生物或细胞加入1mL提取液），超声波破碎微生物或细胞（冰浴，功率20%或200W，超声3s，间隔10s，重复30次）离心：8000g 4℃离心10min，取上清，置冰上待测

测定操作步骤

碘比色法/分光光度法/微量法操作仪器预热：可见分光光度计/酶标仪预热30min以上，调节波长到620nm，蒸馏水调零试剂配制：

工作液的配制：临用将试剂三加入到试剂二中混合溶解；用不完的试剂分装后-20℃保存，禁止反复冻融样本测定：

试剂名称(μL) 空白管 测定管

蒸馏水/样本 100 100

试剂一 700 700

工作液 200 200

混匀后30℃水浴60min，加入200μL碘-碘化钾溶液，冷却后测定620nm处的吸光值A空白和A测定标准曲线绘制：将淀粉标准品稀释成0、0.2、0.4、0.6、0.8、1.0mg/mL系列浓度，同样处理，测定620nm处的吸光值，绘制标准曲线

结果计算方法

单位定义

U/g：每克样本每分钟催化生成1μmol葡萄糖残基的酶量

U/mg prot：每毫克组织蛋白每分钟催化生成1μmol葡萄糖残基的酶量

U/10⁴ cell：每1万个细胞每分钟催化生成1μmol葡萄糖残基的酶量

计算公式

SSS活性(U/g)=(A测定−A空白)(A标准−A空白)×标准品浓度×稀释倍数×V总W×1T×1000162SSS活性(U/g)=(A标准−A空白)(A测定−A空白)×标准品浓度×稀释倍数×WV总×T1×1621000

A测定：样本管吸光度值

A空白：空白管吸光度值

A标准：标准管吸光度值

标准品浓度：通常为10mg/mL

V总：样本提取液总体积（mL）

W：样本质量（g）

T：反应时间（min）

162：葡萄糖残基分子量

性能指标

指标 碘比色法/分光光度法/微量法

线性范围 0~1mg/mL

最低检测限 ≤0.01mg/mL

回收率 90%~110%

批内精密度 CV≤2.0%

批间精密度 CV≤5.0%

稳定性 4℃保存6-12个月

注意事项

样本处理：

样本需新鲜制备，避免SSS失活；-20℃可保存3个月

组织样本需冰浴匀浆，避免酶失活

超声波破碎时需控制功率和时间，避免样本降解

试剂使用：

工作液需临用前配制，避免氧化失效

不同批号试剂不能混用，需重新绘制标准曲线

标准品需4℃保存，避免反复冻融

测定过程：

水浴时间需严格控制在60min，避免反应不完全

显色后需立即测定，避免颜色褪去

若吸光度值超出线性范围，需稀释样本后重新测定

质量控制：

正式测定前务必取2-3个预期差异较大的样本做预测定

每次实验需设置空白对照和质控样本

定期校准仪器，确保检测结果准确性

若结果偏差较大，需检查试剂是否变质或样本处理是否正确

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