酰基转移酶（AAT）测试盒 新品

酰基转移酶（AAT）测试盒

测定意义与原理

测定意义

酰基转移酶（AAT）是一类催化酰基从供体转移到受体的酶类，广泛参与生物体内的代谢过程，其活性检测具有重要意义：临床诊断：诊断和监测肝脏疾病、心血管疾病、神经系统疾病等疾病监测：评估细胞能量代谢状态、组织损伤程度和治疗效果生物学研究：了解细胞内酰基转移途径、细胞凋亡和细胞增殖机制药物研发：筛选酰基转移酶抑制剂，用于治疗癌症、心血管疾病等工业应用：评估食品、饲料、制药等行业的酶制剂活性

测定原理

分光光度法/微量法：AAT催化乙酰辅酶A酰基转移反应，生成辅酶A，辅酶A与DTNB反应生成黄色化合物，412nm处的吸光度变化反映了AAT的活性高低。反应式如下： 乙酰辅酶A+DTNB→AAT辅酶A+黄色化合物乙酰辅酶A+DTNBAAT辅酶A+黄色化合物

ELISA法：利用特异性抗体与AAT结合，通过酶标二抗检测结合的AAT，根据吸光度值计算AAT含量。

试剂盒组成

分光光度法/微量法试剂盒

组分 规格 作用说明

提取液 液体60mL×1瓶 用于提取样本中的AAT

试剂一 液体45mL×1瓶 含反应缓冲液，用于提供适宜的反应pH环境

试剂二 粉剂×1瓶 含乙酰辅酶A，反应底物

试剂三 粉剂×1瓶 含DTNB，显色剂

标准品 1mL×1支 含辅酶A标准液，用于建立标准曲线

ELISA法试剂盒

组分 规格 作用说明

包被板 96孔×1块 预包被抗AAT单克隆抗体

酶标抗体 液体6mL×1瓶 含HRP标记抗AAT抗体

标准品 液体1mL×6管 含0.1-10U/L AAT标准品

样本稀释液 10mL×1瓶 用于稀释样本和标准品

显色剂A液 6mL×1瓶 含过氧化氢溶液

显色剂B液 6mL×1瓶 含TMB溶液

终止液 6mL×1瓶 含硫酸溶液

20倍浓缩洗涤液 20mL×1瓶 用于洗涤酶标板

自备仪器与试剂

必备仪器

分光光度法/微量法：紫外分光光度计/酶标仪、台式离心机、恒温水浴锅、可调式移液器、1mL石英比色皿/96孔板、研钵、电子天平

ELISA法：酶标仪（450nm检测通道）、96孔板、37℃恒温箱、洗板机、可调式移液器、台式离心机

必备耗材

离心管（1.5mL/10mL）、一次性吸头、研钵/组织匀浆器、超声破碎仪

自备试剂：蒸馏水/去离子水、生理盐水

样本前处理方法

细菌或培养细胞样本收集：先收集细菌或细胞到离心管内，离心后弃上清破碎：按照细菌或细胞数量（10⁴个）:提取液体积(mL)为500~1000:1的比例（建议500万细菌或细胞加入1mL提取液），超声波破碎细菌或细胞（冰浴，功率20%或200W，超声3s，间隔10s，重复30次）离心：8000g 4℃离心10min，取上清，置冰上待测

组织样本取样：按照组织质量(g):提取液体积(mL)为1:5~10的比例（建议称取约0.05g组织, unittest, 加入0.5mL提取液），进行冰浴匀浆离心：8000g 4℃离心10min，取上清，置冰上待测

血清/血浆样本

血清(浆)样品：直接检测

土壤样本取样：将样本风干、粉碎、过40目筛，然后称取约0.5g、加入2mL提取液（甲苯）提取：震荡提取20min，12000rpm，4℃，离心20min，取上清待测

测定操作步骤

分光光度法/微量法操作仪器软件_area0.1：分光光度计/酶标仪预热30min以上，调节波长到412nm，蒸馏水调零试剂配制：

试剂二：临用前加入1.5mL蒸馏水充分溶解备用

试剂三：临用前加入1.5mL蒸馏水充分溶解备用样本测定：

试剂名称(μL) 空白管 测定管

蒸馏水/样本 100 100

试剂一 700 700

试剂二 100 100

试剂三 100 100

混匀后立即记录412nm处反应5min时的吸光值A1和10min时的吸光值A2，计算ΔA=A2-A1标准曲线绘制：将辅酶A标准品稀释成0、10、20、30、40、50U/L系列浓度，同样处理，测定10min内吸光度变化，绘制标准曲线

ELISA法操作试剂准备：将试剂盒从冷藏环境中取出，室温平衡15-30分钟；将20×洗涤缓冲液用蒸馏水20倍稀释后备用加样：

从室温平衡20min后的铝箔袋中取出所需板条，剩余板条用自封袋密封放回4℃

设置标准品孔和样本孔，标准品孔各加不同浓度的标准品50μL；样本孔中加入待测样本50μL；空白孔不加温育：除空白孔外，标准品孔和样本孔中每孔加入HRP标记的检测抗体100μL，用封板膜封住反应孔，37℃水浴锅或恒温箱温育60min洗涤：弃去液体，吸水纸上拍干，每孔加满洗涤液（350μL），静置1min，甩去洗涤液，吸水纸上拍干，如此重复洗板5次（也可用洗板机洗板）显色：每孔加入底物A、B各50μL，37℃避光孵育15min终止：每孔加入终止液50μL，15min内，在450nm波长处测定各孔的OD值结果计算：绘制标准曲线，按曲线方程计算样本浓度

结果计算方法

单位定义

U/mg prot：每毫克组织蛋白每分钟生成1nmol辅酶A的酶量

U/g 鲜重：每克组织每分钟生成1nmol辅酶A的酶量

U/L：每升样本每分钟生成1nmol辅酶A的酶量

分光光度法/微量法计算公式

AT活性(U/mg prot)=ΔA×V总ε×d×Cpr×T×V样×109AT活性(U/mg prot)=ε×d×Cpr×T×V样ΔA×V总×109

ΔA：样本管吸光度变化值

V总：反应体系总体积（L）

ε：NADH摩尔消光系数（6.22×10³ L/mol/cm）

d：比色皿光径（cm）

Cpr：样本蛋白浓度（mg/mL）

T：反应时间（min）

V样：样本体积（L）

ELISA法计算公式

\text{AT含量(U/L)} = \frac{\text{样本OD值<[SILENT_never_used_51bce0c785ca2f68081bfa7d91973934]>}}{\text{标准品OD值} - \text{空白OD值}} × \text{标准品浓度} × \text{稀释倍数}

性能指标

指标 <[SILENT_never_used_51bce0c785ca2f68081bfa7d91973934]> 分光光度法/微量法 ELISA法

线性范围 0~50U/L 0.1-10U/L

最低检测限 ≤0.1U/L ≤0.05U/L

回收率 90%~110% 90%~11<[SILENT_never_used_51bce0c785ca2f68081bfa7d91973934]>%

批内精密度 CV≤2.2% CV≤3.8%

批间精密度 CV≤5.0% CV≤8.5%

稳定性 2-8℃保存6-12个月 2-8℃保存6-12个月

注意事项

样本处理：

样本需新鲜制备，避免AAT失活；-20℃可保存3个月

组织样本需冰浴匀浆，避免酶失活

超声波破碎时需控制功率和时间，避免样本降解

试剂使用：

试剂需临用前配制，避免氧化失效

不同批号试剂不能混用，需重新绘制标准曲线

标准品需4℃保存，避免反复冻融

测定过程：

反应温度需严格控制在37℃（哺乳动物）或25℃（其它物种）

加入样品启动反应后3秒内即刻比色测定

若吸光度值超出线性范围，需稀释样本后重新测定

质量控制：

每次实验需设置空白对照和质控样本

定期校准仪器，确保检测结果准确性

若结果偏差较大，需检查试剂是否变质或样本处理是否正确

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