游离脂肪酸含量（FFA）测试盒 新品

游离脂肪酸含量（FFA）测试盒

测定意义与原理

测定意义

游离脂肪酸（FFA）既是脂肪水解的产物，又是脂肪合成的底物，在与白蛋白结合的血浆中循环。其浓度与脂类代谢、糖代谢、内分泌功能有关，也可反映食物贮藏中的品质变化：临床诊断：诊断和监测糖尿病、重症肝障碍、甲状腺功能亢进、肥胖症等疾病疾病监测：评估脂肪代谢状态、胰岛素抵抗程度和治疗效果生物学研究：了解脂肪代谢、糖代谢和细胞能量代谢机制食品安全：评估食品品质、新鲜度和贮藏条件农业应用：研究植物抗逆性机制、果实成熟过程等

测定原理

分光光度法/微量法：在弱酸性条件下，FFA与铜盐反应生成铜皂，在715nm处有特征吸收峰，在一定范围内游离脂肪酸含量与显色程度呈线性关系。

ELISA法：采用双抗体夹心法，将游离脂肪酸与特异性抗体结合，通过酶标二抗检测结合的游离脂肪酸，根据吸光度值计算游离脂肪酸含量。

试剂盒组成

分光光度法/微量法试剂盒

组分 规格 作用说明

提取液 液体60mL×1瓶 用于提取样本中的FFA

试剂一 液体45mL×1瓶 含反应缓冲液，用于提供适宜的反应pH环境

试剂二 粉剂×1瓶 含铜盐溶液，反应底物

试剂三 粉剂×1瓶 含显色液，反应辅助因子

标准品 1mL×1支 含FFA标准液，用于建立标准曲线

ELISA法试剂盒

组分 规格 作用说明

包被板 96孔×1块 预包被抗FFA单克隆抗体

酶标抗体 液体6mL×1瓶 含HRP标记抗FFA抗体

标准品 液体1mL×6管 含0.1-10U/L FFA标准品

样本稀释液 10mL×1瓶 用于稀释样本和标准品

显色剂A液 6mL×1瓶 含过氧化氢溶液

显色剂B液 6mL×1瓶 含TMB溶液

终止液 6mL×1瓶 含硫酸溶液

20倍浓缩洗涤液 20mL×1瓶 用于洗涤酶标板

自备仪器与试剂

必备仪器

分光光度法/微量法：紫外分光光度计/酶标仪、台式离心机、恒温水浴锅、可调式移液器、1mL石英比色皿/96孔板、研钵、电子天平

ELISA法：酶标仪（450nm检测通道）、96孔板、37℃恒温箱、洗板机、可调式移液器、台式离心机

必备耗材

离心管（1.5mL/10mL）、一次性吸头、研钵/组织匀浆器、超声破碎仪

自备试剂：蒸馏水/去离子水、生理盐水

样本前处理方法

血清/血浆样本采集：采集血液，静置1-2小时（血清）或使用抗凝剂（血浆）离心：3000g 4℃离心10min，取上清，置冰上待测

动植物组织样本取样：按照组织质量(g):提取液体积(mL)为1:5~10的比例（建议称取约0.1g组织，加入1mL提取液），进行冰浴匀浆离心：8000g 4℃离心10min，取上清，置冰上待测

细胞/微生物样本收集：先收集细菌或细胞到离心管内，离心后弃上清破碎：按照细菌或细胞数量（10⁴个）:提取液体积(mL)为500~1000:1的比例（建议500万细菌或细胞加入1mL提取液），超声波破碎细菌或细胞（冰浴，功率20%或200W，超声3s，间隔10s，重复30次）离心：8000g 4℃离心10min，取上清，置冰上待测

测定操作步骤

分光光度法/微量法操作仪器预热：分光光度计/酶标仪预热30min以上，调节波长到715nm，蒸馏水调零试剂配制：

试剂二：临用前加入1.5mL蒸馏水充分溶解备用

试剂三：临用前加入1.5mL蒸馏水充分溶解备用样本测定：

试剂名称(μL) 空白管 测定管

蒸馏水/样本 100 100

试剂一 700 700

试剂二 100 100

试剂三 100 100

混匀后立即记录715nm处反应5min时的吸光值A1和10min时的吸光值A2，计算ΔA=A2-A1标准曲线绘制：将FFA标准品稀释成0、10、20、30、40、50U/L系列浓度，同样处理，测定10min内吸光度变化，绘制标准曲线

ELISA法操作试剂准备：将试剂盒从冷藏环境中取出，室温平衡15-30分钟；将20×洗涤缓冲液用蒸馏水20倍稀释后备用加样：

从室温平衡20min后的铝箔袋中取出所需板条，剩余板条用自封袋密封放回4℃

设置标准品孔和样本孔，标准品孔各加不同浓度的标准品50μL；样本孔中加入待测样本50μL；空白孔不加温育：除空白孔外，标准品孔和样本孔中每孔加入HRP标记的检测抗体100μL，用封板膜封住反应孔，37℃水浴锅或恒温箱温育60min洗涤：弃去液体，吸水纸上拍干，每孔加满洗涤液（350μL），静置1min，甩去洗涤液，吸水纸上拍干，如此重复洗板5次（也可用洗板机洗板）显色：每孔加入底物A、B各50μL，37℃避光孵育15min终止：每孔加入终止液50μL，15min内，在450nm波长处测定各孔的OD值结果计算：绘制标准曲线，按曲线方程计算样本浓度

结果计算方法

单位定义

μmol/L：每升样本中FFA的含量

μmol/g 鲜重：每克组织中FFA的含量

μmol/mg prot：每毫克组织蛋白中FFA的含量

分光光度法/微量法计算公式

FFA含量(μmol/L)=ΔA×V总ε×d×V样×106FFA含量(μmol/L)=ε×d×V样ΔA×V总×106

ΔA：吸光度变化值

V总：反应体系总体积（L）

ε：摩尔消光系数（L/mol/cm）

d：比色皿光径（cm）

V样：样本体积（L）

ELISA法计算公式

FFA含量(U/L)=样本OD值−空白OD值标准品OD值−空白OD值×标准品浓度×稀释倍数FFA含量(U/L)=标准品OD值−空白OD值样本OD值−空白OD值×标准品浓度×稀释倍数

性能指标

指标 分光光度法/微量法 ELISA法

线性范围 0~50μmol/L 0.1-10U/L

最低检测限 ≤0.1μmol/L ≤0.05U/L

回收率 90%~110% 90%~110%

批内精密度 CV≤1.7% CV≤3.8%

批间精密度 CV≤5.0% CV≤8.5%

稳定性 4℃保存6-12个月 2-8℃保存6-12个月

注意事项

样本处理：

样本需新鲜制备，避免FFA被氧化；-20℃可保存3个月

组织样本需冰浴匀浆，避免酶失活

液体样本需避免溶血和细菌污染

试剂使用：

试剂需临用前配制，避免氧化失效

不同批号试剂不能混用，需重新绘制标准曲线

标准品需4℃保存，避免反复冻融

测定过程：

反应温度需严格控制在37℃（哺乳动物）或25℃（其它物种）

加入样品启动反应后3秒内即刻比色测定

若吸光度值超出线性范围，需稀释样本后重新测定

质量控制：

每次实验需设置空白对照和质控样本

定期校准仪器，确保检测结果准确性

若结果偏差较大，需检查试剂是否变质或样本处理是否正确

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