乳酸脱氢酶（LDH）测试盒 新品

乳酸脱氢酶（LDH）测试盒

测定意义与原理

测定意义

LDH（EC1.1.1.27）广泛存在于动物、植物、微生物和培养细胞中，是糖酵解和糖异生途径中的关键酶，其活性检测具有重要意义：临床诊断：诊断和监测心肌梗死、肝脏疾病、溶血性疾病、肾脏疾病等疾病监测：评估组织损伤程度、细胞凋亡和治疗效果生物学研究：了解糖酵解途径、细胞能量代谢和细胞增殖机制药物研发：筛选抗凋亡药物、抗肿瘤药物等

测定原理

LDH催化乳酸氧化为丙酮酸，同时NAD+被还原为NADH，通过测定340nm处吸光度的增加速率，计算LDH活性。反应式如下： 乳酸+NAD+→LDH丙酮酸+NADH+H+乳酸+NAD+LDH丙酮酸+NADH+H+

试剂盒组成

组分 规格 作用说明

提取液 液体60mL×1瓶 含提取液，用于提取样本中的LDH

试剂一 液体45mL×1瓶 含反应缓冲液，用于提供适宜的反应pH环境

试剂二 粉剂×1瓶 含NAD+溶液，反应底物

试剂三 粉剂×1瓶 含NAD+溶液，反应辅助因子

标准品 1mL×1支 含LDH标准液，用于建立标准曲线

自备仪器与试剂

必备仪器

分光光度法/微量法/比色法：紫外分光光度计/酶标仪/可见分光光度计、1mL石英比色皿/96孔板/1mL玻璃比色皿、台式离心机、恒温水浴锅、可调式移液器、研钵、电子天平

荧光法：荧光分光光度计、微量石英比色皿、台式离心机、恒温水浴锅、可调式移液器、研钵、电子天平

必备耗材

离心管（1.5mL/10mL）、一次性吸头、研钵/组织匀浆器、超声破碎仪

自备试剂：蒸馏水/去离子水、生理盐水

样本前处理方法

细菌或培养细胞样本收集：先收集细菌或细胞到离心管内，离心后弃上清破碎：按照细菌或细胞数量（10⁴个）:提取液体积(mL)为500~1000:1的比例（建议500万细菌或细胞加入1mL提取液），超声波破碎细菌或细胞（冰浴，功率20%或200W，超声3s，间隔10s，重复30次）离心：8000g 4℃离心10min，取上清，置冰上待测

组织样本取样：按照组织质量(g):提取液体积(mL)为1:5~10的比例（建议称取约0.1g组织，加入1mL提取液），进行冰浴匀浆离心：8000g 4℃离心10min，取上清，置冰上待测

血清/血浆样本

血清(浆)样品：直接检测；若浓度过高，用生理盐水稀释5-10倍

测定操作步骤

仪器预热：分光光度计/酶标仪预热30min以上，调节波长到340nm，蒸馏水调零试剂配制：

工作液：临用前将试剂二全部倒入试剂一瓶中，37℃（哺乳动物）或25℃（其他物种）预热10分钟

试剂三稀释：500μL试剂三加500μL蒸馏水，混匀后-20℃保存备用样本测定：

试剂名称(μL) 空白管 测定管

蒸馏水/样本 100 100

工作液 800 800

试剂三 100 100

混匀后立即记录340nm处反应5min时的吸光值A1和10min时的吸光值A2，计算ΔA=A2-A1

结果计算方法

单位定义

U/mg prot：每毫克组织蛋白每分钟生成1nmol NADH的酶量

U/g 鲜重：每克鲜重样本每分钟生成1nmol NADH的酶量

U/L：每升样本每分钟生成1nmol NADH的酶量

计算公式

LDH活性(U/mg prot)=ΔA×V总ε×d×Cpr×T×V样×109LDH活性(U/mg prot)=ε×d×Cpr×T×V样ΔA×V总×109

ΔA：样本管吸光度变化值

V总：反应体系总体积（L）

ε：NADH摩尔消光系数（6.22×10³ L/mol/cm）

d：比色皿光径（cm）

Cpr：样本蛋白浓度（mg/mL）

T：反应时间（min）

V样：样本体积（L）

性能指标

指标 分光光度法/微量法/比色法/荧光法

线性范围 0~50U/L

最低检测限 ≤0.1U/L

回收率 90%~110%

批内精密度 CV≤1.7%

批间精密度 CV≤5.0%

稳定性 2-8℃保存6-12个月

注意事项

样本处理：

样本需新鲜制备，避免LDH失活；-20℃可保存3个月

组织样本需冰浴匀浆，避免酶失活

液体样本需避免溶血和细菌污染

试剂使用：

试剂需临用前配制，避免氧化失效

不同批号试剂不能混用，需重新绘制标准曲线

标准品需4℃保存，避免反复冻融

测定过程：

反应温度需严格控制在37℃（哺乳动物）或25℃（其它物种）

加入样品启动反应后3秒内即刻比色测定

若吸光度值超出线性范围，需稀释样本后重新测定

质量控制：

每次实验需设置空白对照和质控样本

定期校准仪器，确保检测结果准确性

若结果偏差较大，需检查试剂是否变质或样本处理是否正确

公司正在出售的产品