NADP磷酸酶（NADPase）测试盒 新品

商品属性

测定意义与原理

测定意义

NADP磷酸酶（NADPase，EC3.6.1.19）广泛存在于动物、植物、微生物和培养细胞中，是生物体内重要的磷酸水解酶，主要功能包括：能量代谢：催化NADP+水解为NAD+和无机磷，参与细胞能量代谢调控氧化还原平衡：与NAD激酶（NADK）一起调控细胞内NAD+和NADP+的比例，维持细胞氧化还原稳态信号转导：参与细胞内信号传导通路，调节细胞增殖、分化和凋亡免疫调节：在免疫细胞活化和炎症反应中发挥作用，参与先天免疫和适应性免疫调节病理关联：NADPase活性异常与肿瘤、神经退行性疾病、自身免疫性疾病等相关

测定原理

NADPase催化NADP+水解为NAD+和无机磷，通过测定无机磷的生成量来反映NADPase活性： NADP++H2O→NADPaseNAD++Pi+H+NADP++H2ONADPaseNAD++Pi+H+ 在酸性条件下，无机磷与钼酸铵反应生成磷钼酸复合物，经还原剂还原为蓝色的钼蓝，在660nm处有特征吸收峰，其颜色深浅与无机磷含量成正比。

自备仪器与试剂

必备仪器

可见分光光度计/酶标仪（具备660nm检测通道）

台式高速离心机（最大转速≥10000rpm）

恒温水浴锅（控温精度±0.5℃）

可调式移液器（0.5-10μL、10-100μL、100-1000μL）

超声破碎仪（用于细胞/细菌样本处理）

必备耗材

1mL玻璃比色皿/96孔板

离心管（1.5mL、10mL）

一次性吸头（无菌无酶）

研钵/组织匀浆器（冰浴专用）

自备试剂

蒸馏水/去离子水

生理盐水（用于样本稀释）

液氮（用于样本速冻保存）

样本前处理方法

组织样本（动植物）新鲜样本取材后立即液氮速冻，-80℃保存；避免反复冻融称取0.05-0.1g组织，按1:5-10（W/V）比例加入预冷提取液冰浴匀浆（转速1000-1500rpm，时间5-10min）转移至离心管，10000rpm 4℃离心10min，取上清液置冰上待测若酶活性过高，可用提取液稀释后测定（建议稀释倍数1-10倍）

细胞/细菌样本收集对数生长期细胞（密度1×10^6/mL）或细菌（OD600=0.6-0.8）8000g 4℃离心5min，弃上清，用生理盐水洗涤2次按500万细胞/细菌加入1mL提取液的比例重悬冰浴超声破碎（功率30%，超声5s，间隔10s，重复20次）10000rpm 4℃离心10min，取上清液置冰上待测

血清/血浆/尿液样本血清样本：血液凝固后3000g 4℃离心10min，取上清血浆样本：加入抗凝剂后3000g 4℃离心10min，取上清尿液样本：直接取上清，若浑浊需3000g离心5min后取上清以上样本可直接检测，无需提取处理

测定操作步骤

分光光度法流程

试剂准备：

从4℃取出试剂盒，室温平衡20min

试剂工作液：按比例混合试剂A、B、C，现配现用

标准磷溶液：用蒸馏水稀释至0、0.05、0.1、0.2、0.4、0.6mmol/L

酶促反应：

取比色皿，依次加入：提取液900μL + NADP+溶液50μL + 样本50μL

37℃（哺乳动物）或25℃（其它物种）准确反应30min后，95℃水浴5min（盖紧，以防止水分散失）

冷却后，10000g 25℃离心5min，取上清

定磷反应：

另取比色皿，依次加入：酶促反应上清900μL + 定磷试剂100μL

室温反应20min，记录660nm处吸光度A1

空白管：用蒸馏水替代样本，同法操作，记录吸光度A0

标准曲线绘制：

以标准磷溶液浓度为横坐标，吸光度为纵坐标绘制标准曲线

计算回归方程：y = kx + b（y为吸光度，x为无机磷浓度）

微量法（酶标仪）流程96孔板每孔加入：提取液90μL + NADP+溶液5μL + 样本5μL37℃（哺乳动物）或25℃（其它物种）准确反应30min后，95℃水浴5min冷却后，10000g 25℃离心5min，取上清另取96孔板，每孔加入：酶促反应上清90μL + 定磷试剂10μL室温反应20min，在660nm波长处测定各孔OD值计算吸光度变化值（ΔA），代入标准曲线计算NADPase活性

酶活力计算方法

单位定义

U/g鲜重：每g组织鲜重每小时生成1μmol无机磷的酶量

U/mL：每mL液体样本每小时生成1μmol无机磷的酶量

U/mgprot：每mg蛋白每小时生成1μmol无机磷的酶量

U/10⁶cell：每100万个细胞每小时生成1μmol无机磷的酶量

计算公式

NADPase活性(U/g鲜重)=(ΔA测定−ΔA对照)×C标准ΔA标准×WNADPase活性(U/g鲜重)=ΔA标准×W(ΔA测定−ΔA对照)×C标准

ΔA测定：样本吸光度变化值（A样本 - A空白）

ΔA对照：对照管吸光度变化值（A对照 - A空白）

ΔA标准：标准管吸光度变化值（A标准 - A空白）

C标准：标准磷溶液浓度（0.25μmol/mL）

W：组织鲜重（g）

简化公式

组织样本（鲜重）：NADPase（U/g鲜重）= 0.25 × ΔA测定 ÷ ΔA标准 ÷ W

液体样本：NADPase（U/mL）= 0.25 × ΔA测定 ÷ ΔA标准

细胞/细菌样本：NADPase（U/10⁶cell）= 0.25 × ΔA测定 ÷ ΔA标准 ÷ N

注意事项

样本处理：

样本需新鲜制备，避免NADPase失活；密封冷藏可保存24h

细胞/组织样本需避免反复冻融，以免NADPase降解

避免样本接触金属离子，可用EDTA螯合

试剂使用：

试剂需按比例混合，现配现用；不同批号试剂禁止混用

定磷试剂需现配现用，若配制后为蓝色则为磷污染，需重新配制

标准磷溶液需现配现用，避免磷污染

测定过程：

反应温度需严格控制在37℃（哺乳动物）或25℃（其它物种），避免温度影响酶活性

若吸光度值超出标准曲线范围，需调整稀释倍数重新测定

每个样本需设置平行实验，结果取平均值

对测定所用试管要求严格，要没有一点磷，若试管放过磷酸或磷酸盐缓冲液，一定要洗得非常干净，避免磷污染是检测成败的关键

质量控制：

每次实验需设置空白对照（蒸馏水替代样本）和质控样本

若结果偏差较大，需检查试剂是否失效或样本处理是否正确

若样本NADPase含量较低，可延长反应时间至60min或增加取样量

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