人牙周膜干细胞
细胞简介 :

人牙周膜干分离自牙周膜组织;牙周膜(牙周韧带、牙周间隙)是由致密结缔组织所构成。多数纤维排列成束,纤维的一端埋于牙骨质内,另一端则埋于牙槽窝骨壁里,使牙齿固位于牙槽窝内;牙周膜内有神经、血管、淋巴和上皮细胞等。成纤维细胞(Fibroblast)是疏松结缔组织的主要细胞成分,由胚胎时期的间充质细胞分化而来。间充质干细胞(mesenchymal stem cells,MSCs)来源于胚胎时期的中胚层组织,具有很强的自我复制和多向分化潜能,具有向脂肪细胞、成骨细胞、软骨细胞及肌细胞等多种终末细胞定向分化的能力,运用 MSCs来修复软骨损伤具有很好的应用前景,目前已能够从骨髓、脂肪、滑膜、骨骼、肌肉等组织以及羊水、脐带、脐带血中分离和制备间充质干细胞。牙周膜干细胞参与了牙周组织的病变、修复及再生过程。现在,利用牙周膜干细胞建立体外模型,已经成为有关员研究牙周组织疾病的重要手段。
产品规格 | 5×10^5Cells/T25 | 英文名称 | Human Periodontal Ligament Stem Cells |
生长特性 | 贴壁 | 细胞形态 | 成纤维细胞样 |
货号 | XG-X4673 | 组织来源 | 牙周膜组织 |
产品信息:

产品名称 人牙周膜干细胞
英文名称 Human Periodontal Ligament Stem Cells
组织来源 牙周膜组织
默认种属 人
产品规格 5×10^5Cells/T25
培养信息:

培养基 含FBS、生长添加剂、Penicillin、Streptomycin等
换液频率 每2-3天换液一次
生长特性 贴壁
细胞形态 成纤维细胞样
传代特性 可传3-5代左右
消化液 0.25%
培养条件 气相:空气,95%;CO2,5%
人牙周膜干细胞体外培养周期有限;建议使用配套的专用生长培养基及正确的操作方法来培养,以此保证该细胞的最佳培养状态。
方法简介 公司实验室分离的人牙周膜干采用胶原酶消化结合差速贴壁法制备而来,细胞总量约为5×10?cells/瓶。
质量检测 公司实验室分离的人牙周膜干经CD44免疫荧光鉴定,纯度可达90%以上,且不含有HIV-1、HBV、HCV、支原体、细菌、酵母和真菌等。
培养操作方法:

核心特点
高度生理相关性:保留了体内来源组织的结构、功能和基因表达特征。
有限寿命:与无限增殖的肿瘤细胞系不同,原代细胞增殖能力有限,经过一定次数的分裂后会进入衰老期,这更符合正常细胞的生理状态。
异质性:初始培养物通常是多种细胞类型的混合物,有时需要通过差速贴壁等方法进行纯化。
操作要求高:对培养环境、试剂质量和无菌操作的要求极为严格,培养难度大于永生化细胞系。
组织块培养法
取材与剪切
在无菌条件下取出组织,用Hanks液或PBS清洗,去除血污和脂肪、结缔组织等非目标成分。
用眼科剪将组织剪切成 0.5-1 mm3 的小块。
接种
用吸管将组织块均匀地贴附在培养皿或培养瓶的内表面,各组织块之间保持一定间距(约0.5 cm)。
吸去多余液体,将培养器皿翻转,放入 37℃、5% CO 的培养箱中,静置 1-3小时,让组织块牢固贴壁。
加液培养
待组织块贴壁后,轻轻翻转培养瓶,从一侧缓慢加入足量的培养液,使组织块浸没在液体中,注意不要让液体直接冲击组织块,以免冲起。
继续在培养箱中静置培养。通常 3-5天 后可观察到细胞从组织块边缘长出。
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关键操作技巧与注意事项:
成功的原代培养依赖于严谨的细节控制:
严格无菌操作:这是实验成功的基石。所有操作需在生物安全柜中进行,试剂和耗材必须无菌。
保持静置:细胞接种后的最初24-48小时内,应保持培养瓶绝对静置,避免频繁取出观察或晃动,这有助于细胞贴壁和伸展。
优化消化过程:
消化时间要恰到好处,过长会损伤细胞,过短则细胞分散不佳。
胶原酶对组织的损伤较小,常用于分离活性要求高的细胞;胰蛋白酶作用较强,需严格控制时间。
酶液应新鲜配制,避免活性下降。
控制接种密度:原代细胞在低密度下不易存活,建议适当提高初始接种密度,以保证细胞间的相互作用促进其生长。
定期换液:根据培养基颜色变化(如变黄)或每隔2-3天更换一次培养液,以清除代谢废物并补充营养。