H7N9 亚型禽流感病毒 HA 基因检测试剂盒

 1. 检测原理：

该试剂盒通常采用实时荧光定量 RT-PCR（qPCR）技术，具体为 TaqMan 荧光探针法。

核心原理：

靶基因：专门针对 H7N9 病毒的 HA 基因（血凝素基因） 设计特异性引物和探针。

双重/多重检测：市面上的先进试剂盒通常采用双重荧光 PCR 技术。这意味着在一个反应管中，可以同时检测 H7 基因（包含 HA 基因片段）和 N9 基因。

内标质控：为了防止假阴性，试剂盒通常会加入内参系统（如核糖核酸酶 P，RNase P），用于监控样本采集质量、核酸提取效率以及 PCR 扩增过程是否受到抑制。

检测机制：

逆转录：将样本中的病毒 RNA 反转录为 cDNA。

扩增与检测：在 PCR 扩增过程中，荧光探针与模板结合，被酶切降解后释放荧光信号（通常 FAM 通道检测 H7/HA，HEX/VIC 通道检测 N9，ROX 通道检测内标）。

 2. 试剂盒组成 (典型配置)

一个标准的 48 人份/盒（或 50 次反应/盒）的试剂盒通常包含以下组分：

组分名称 规格 (示例) 作用 保存条件

PCR 反应液 500 μL (2×) 含 dNTPs、Mg2、缓冲液 -20℃

酶混合液 50 μL 含逆转录酶、Taq DNA 聚合酶 -20℃

H7/N9 引物/探针混合液 50 μL 识别 H7N9 特异序列 -20℃

阳性对照 50 μL 含 H7N9 靶基因片段的质粒或假病毒 -20℃

阴性对照 100 μL 无核酸酶水 2-8℃或-20℃

内标 (Internal Control) 50 μL 监控样本提取和扩增过程 -20℃

 3. 适用样本与操作流程

适用样本类型：

人/动物呼吸道样本：咽拭子、鼻拭子、痰液、肺泡灌洗液。

组织样本：禽类或病死者的肺、脾、脑等组织研磨液。

操作流程详解：

第一步：样本采集与处理

使用无菌采样拭子采集呼吸道分泌物，放入含病毒保存液（VTM）的采样管中。

第二步：病毒 RNA 提取

使用病毒 RNA 提取试剂盒（如磁珠法或柱提法）从样本液中提取总 RNA。

注意：此步骤需防止 RNA 酶降解，建议在生物安全柜中操作。

第三步：PCR 反应体系配置 (20-25 μL 体系)

在冰上配制反应混合液：

2× qPCR Mix: 10 μL

引物/探针混合液: 1 μL

酶混合液: 0.4 - 1 μL

模板 RNA: 5 - 10 μL

无核酸酶水: 补足至体系体积

第四步：上机扩增

仪器设置：根据试剂盒说明书设置荧光通道（FAM 用于 H7/HA，HEX 用于 N9，ROX 用于内标）。

反应程序：

逆转录：42℃ - 50℃ (15-30 分钟)

预变性：95℃ (2-5 分钟)

循环扩增：95℃ 15秒 → 60℃ 30-60秒 (采集荧光)，进行 40-45 个循环。

第五步：结果判读

阳性 (+)：FAM 通道（H7/HA）出现典型的“S”型扩增曲线，且 Ct 值 ≤ 38（具体阈值参考说明书）。

阴性 (-)：FAM 通道无扩增曲线，或 Ct 值 > 40。

内标质控：ROX 通道必须有正常扩增（Ct 值 < 35），否则说明样本提取或扩增失败，结果无效。

 4. 关键注意事项

生物安全等级：

H7N9 禽流感病毒属于高致病性病原微生物。样本处理和核酸提取应在 BSL-2 实验室进行，操作人员需穿戴二级以上生物安全防护装备。

病毒分离培养需在 BSL-3 实验室进行。

防污染：

PCR 实验室必须严格分区（试剂准备区、样本制备区、PCR 扩增区）。

阳性对照含有高浓度病毒核酸，极易造成气溶胶污染，操作时必须格外小心。

假阴性风险：

样本采集时间：病程早期病毒载量低，可能导致假阴性。

样本类型：下呼吸道样本（如肺泡灌洗液）的检出率通常高于上呼吸道样本（如咽拭子）。

临床意义：

该试剂盒是 H7N9 诊断的“金标准”之一。

如果检测到 H7 基因（HA） 阳性，通常提示感染了 H7 亚型流感病毒；若同时 N9 基因 阳性，则确诊为 H7N9 亚型。

 总结

H7N9 亚型禽流感病毒 HA 基因检测试剂盒是一种基于荧光 PCR 技术的高灵敏度、高特异性检测工具。它通过特异性识别病毒的 HA 基因，能够在短时间内快速筛查出感染者或携带者。在使用时，务必严格遵守生物安全规范和防污染操作流程。