A4/Fuk细胞

产品信息：

A4/Fuk细胞是一种人淋巴癌细胞系，具有悬浮生长、淋巴母细胞样形态等特征，常用于癌症生物学、药物筛选和免疫治疗研究。

细胞特性

来源与背景：A4/Fuk?细胞由Fukuda等人从B细胞非霍奇金淋巴瘤（NHL）患者中分离建立，可能属于Burkitt淋巴瘤或高级别B细胞淋巴瘤亚型。该细胞表达B细胞标志物（CD19+、CD20+），可能携带MYC易位，是研究淋巴瘤致癌机制的模型。

分子标志：可能表达CD10（CALLA），遗传特征包括MYC易位（如t(8;14)），部分细胞可能伴随BCL2或BCL6重排。EBV状态需验证（部分B细胞淋巴瘤与EBV相关）。

培养条件

培养基：推荐使用RPMI 1640 + 10% fetal bovine serum (FBS) + 1% P/S。

培养环境：37℃, 5% CO₂，培养箱湿度为70%-80%。

传代与冻存：传代比例为1:2-1:5，细胞密度达80%-90%时进行传代，冻存液为90% FBS + 10% DMSO，液氮长期保存。

培养操作

复苏细胞：将冻存管在37℃水浴中迅速摇晃解冻，加入5mL完全培养基混合均匀，在1000RPM条件下离心3-5min，弃去上清，用4-6mL完全培养基重悬细胞，接种至培养瓶中37℃培养过夜。

细胞传代：对于悬浮细胞，当细胞密度达80%-90%，可采用直接传代法（吸弃部分培养液，加入新鲜培养基）或离心传代法（收集细胞离心，用新鲜培养基重悬后分装至新培养瓶）。

细胞冻存：收集对数生长期细胞，1000rpm离心5分钟，弃去上清，用冻存液（90% FBS + 10% DMSO）重悬细胞，按1×10⁶～1×10⁷个活细胞/mL分装至冻存管，程序降温后转入液氮灌储存。

注意事项

污染防控：操作全程需严格无菌，定期检测支原体、细菌、真菌污染。

细胞状态监测：复苏后24小时及传代后需镜下观察细胞生长状态和污染情况，确保细胞活力。

培养基使用：运输用培养基（灌液培养基）不可再用于培养，需换用新配制的完全培养基。

A4/Fuk?细胞在肿瘤生物学、药物筛选（如CHOP方案、BTK抑制剂、BCL2抑制剂）和免疫治疗（如CD19/CD20靶向CAR-T）研究中具有重要应用价值。规范的培养操作可确保细胞正常生长和实验可靠性。

培养操作要点：

基础培养基选择：分为天然培养基、合成培养基（如DMEM、RPMI 1640）和无血清培养基45。目前以合成培养基和无血清培养基使用居多。

培养条件设置：

温度：多数人和哺乳动物细胞为36-37℃，昆虫细胞为27℃。

pH值：多数哺乳动物细胞为7.4，昆虫细胞为6.2。

CO₂浓度：通常维持5-7% CO₂，多数细胞适合5% CO₂气氛。

渗透压：控制在260-320mOsm/kg为宜。

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功能特点

通过被动运输和主动运输实现物质跨膜转运；以ATP为核心载体，通过线粒体氧化磷酸化或叶绿体光合磷酸化途径供能；通过受体-第二信使-效应器的级联反应模式进行信号转导；原核细胞采用二分裂，真核细胞则通过有丝分裂、减数分裂等方式繁殖；细胞可进行程序性死亡（凋亡），并在多细胞生物中实现分化形成不同组织