MB49+LUC小鼠膀胱癌细胞荧光素酶标记

细胞属性：

该细胞通过慢病毒转染的方式携带Luc基因。

细胞特性

1） 来源：小鼠膀胱癌

2） 形态：上皮细胞样，贴壁生长

3） 含量：>1x10^6  细胞数

4） 规格：T25瓶或者1mL冻存管包装

5)  用途：仅供科研使用。

基本特性

细胞来源与标记

MB49+LUC细胞源自小鼠膀胱癌，通过慢病毒转染技术稳定整合萤火虫荧光素酶（LuciferaseLuc）基因，可特异性表达荧光素酶蛋白。该细胞株保留了亲本MB49细胞的肿瘤特性，同时具备荧光素酶活性，适用于活体成像及体外酶活性检测。

形态与培养特性

形态：上皮细胞样，贴壁生长。

培养条件：

培养基：DMEM或89DME10%胎牛血清（FBS1%青霉素/链霉素（PS）。

气相环境：95%空5CO，温度37℃，湿度70%-80%。

传代比例：首次传代建议1:2，后续可根据实验需求调整至1:3至1:5。

药筛与抗性

嘌呤霉素筛选浓度：1.μg/mL，维持培养时可定期使用0.μg/mL浓度以稳定抗性。

注意事项：长期传代可能导致荧光素酶表达衰减，建议定期流式分选或维持筛选压力。

构建方法与验证

构建技术

通过慢病毒载体将Luc基因整合至MB49基因组，筛选稳定表达克隆。该技术确保荧光素酶活性在细胞分裂中持续表达，且不影响原有肿瘤表型。

活性验证

体外检测：使用荧光素酶底物（如D-荧光素钾盐）进行化学发光检测，灵敏度可达单细胞水平。

活体成像：通过IVIS系统检测皮下或原位接种肿瘤的荧光信号，定量分析肿瘤生长及转移。

活性报告：供应商通常提供活性检测报告（如附件1），包含细胞悬液梯度稀释后的发光强度数据。

主要应用领域

肿瘤模型构建

原位膀胱癌模型：通过尿道插管将细胞接种至小鼠膀胱，模拟自然发病过程，结合荧光素酶成像实时监测肿瘤进展。

转移研究：追踪转移灶（如肺、淋巴结），评估抗转移药物疗效。

药物筛选与疗效评估

化疗/免疫治疗评价：通过活体成像定量肿瘤体积变化，筛选有效药物（如吉西他滨）。

耐药机制研究：监测耐药性肿瘤细胞的荧光信号衰减，分析耐药相关基因表达。

基础机制研究

基因功能验证：结合基因编辑技术（如CRISPR），研究特定基因对肿瘤生长和转移的调控作用。

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