COLON 26小鼠结肠癌细胞

COLON 26小鼠结肠癌细胞

 基本特性:

种属来源:小鼠

性别年龄:雌性，6个月

组织来源:结肠

生长特性:贴壁生长

细胞形态:上皮细胞样

细胞规格:1 X 106cells/T25或1 mL冻存管

培养条件:RPMI 1640 + 10% Foetal Bovine Serum (FBS)37 ℃, 5% CO2

冻存条件:90% FBS + 10% DMSO

传代方法:1:3传代, 2-3天传1代

来源与病理特征

物种与类型：

源自 BALB/c小鼠 化学诱导的结肠腺癌（通过甲基亚硝基脲诱导），属 同源免疫活性模型，可用于免疫治疗研究。

分子特征：

高表达β-catenin（Wnt通路激活），常见KRAS突变（需测序验证）。

不表达人类特异性标志物（如CEA），需注意与人类细胞系的区分。

培养特性

形态：贴壁生长，细胞呈梭形或铺路石样，增殖速度快（倍增时间约18-24小时）。

致瘤性：在BALB/c小鼠中皮下接种5-7天即可成瘤，对化疗药物（如5-氟尿嘧啶）敏感。

2. 核心科研应用

免疫治疗研究

免疫检查点抑制剂：

测试PD-1/CTLA-4抗体疗效（需使用野生型BALB/c小鼠，保留完整免疫系统）。

联合疗法：与CD40激动剂或化疗药物联用，评估协同效应。

肿瘤微环境：

分析T细胞浸润（通过流式检测CD8+/CD4+ T细胞比例）及髓系抑制细胞（MDSCs）的作用。

药物开发

化疗药物筛选：评估奥沙利铂、伊立替康等标准方案的敏感性。

纳米载体验证：如叶酸受体靶向的纳米颗粒递送效率测试。

3. 培养与实验操作

标准化培养

培养基：RPMI-1640 + 10% FBS + 1%双抗（青霉素/链霉素）。

传代要点：

消化时间：2-3分钟（0.25%胰酶-EDTA），传代比例1:5至1:10。

注意：避免过度消化导致细胞团块形成。

动物模型构建

皮下移植瘤：接种1×10cells/小鼠（右侧肋腹），肿瘤体积≥100 mm3时开始治疗。

转移模型：脾脏注射模拟肝转移，尾静脉注射模拟肺转移。

4. 质量控制与注意事项

质控节点

支原体检测：每月用PCR或荧光法（如Hoechst 33258）筛查。

功能验证：

体内成瘤实验（每批次冻存前验证致瘤性）。

体外侵袭实验（Transwell预铺Matrigel）。

实验设计建议

免疫实验：使用6-8周龄雌性BALB/c小鼠，避免性别差异影响。

数据可比性：记录细胞代次（建议使用<20代），避免遗传漂变。

公司出售的产品：

 注意事项：

污染防控：细菌污染：培养液浑浊、变黄，需添加抗生素（如青霉素-链霉素），污染严重时丢弃。

霉菌污染：显微镜下可见丝状/絮状漂浮物，需彻底消毒培养箱（过氧乙酸擦拭+紫外线照射），污染细胞立即丢弃。

支原体污染：无明显外观变化，需定期用PCR或荧光法检测，污染后可用支原体清除试剂处理。

操作规范：收到细胞后，先检查包装完整性及干冰状态，镜检细胞形态并拍照记录（40x、100x、200x）。

未开封细胞若污染或活性差（3天内反馈），可申请重发；客户操作失误导致问题不重发。

运输与保存：干冰运输：冻存管含1×10⁶ cells，收到后立即转入液氮或-80℃冰箱。

常温运输：T25培养瓶，收到后静置3-4小时稳定状态，再换液或传代。