小鼠BMMs骨髓源性巨噬细胞

1. 细胞性状

2. 细胞简介

小鼠BMMs骨髓源性巨噬细胞（Mouse Bone Marrow-derived Macrophages, BMMs）是由健康小鼠骨髓细胞经巨噬细胞集落刺激因子（M-CSF）体外诱导分化而成的高纯度巨噬细胞群体。该细胞类型在形态学上多呈多角形或不规则形，具有丰富的胞质、较大的细胞核及较强的吞噬能力。BMMs在免疫应答、炎症调节、病原清除、组织修复等生理与病理过程中发挥核心作用，是研究巨噬细胞生物学、免疫信号通路、病原体与宿主相互作用的常用模型。在培养过程中，BMMs通常表现为贴壁生长，随着分化程度加深，细胞会形成致密的单层结构。由于来源可控、分化条件标准化，BMMs在免疫学、肿瘤学、传染病学以及再生医学研究中得到了广泛应用。

3. 科研与应用领域

小鼠BMMs骨髓源性巨噬细胞在多个研究领域均有重要应用价值：
• 免疫反应与炎症机制研究：用于解析巨噬细胞在先天免疫和适应性免疫中的作用，包括细胞因子分泌、抗原提呈及病原清除机制。
• 肿瘤免疫学：研究肿瘤相关巨噬细胞（TAMs）在肿瘤微环境中的功能调节作用及其在免疫治疗中的潜力。
• 病原体感染模型：作为研究细菌、病毒、真菌及寄生虫与宿主细胞相互作用的重要工具。
• 自身免疫与炎症性疾病：用于探讨类风湿性关节炎、系统性红斑狼疮、炎症性肠病等疾病中巨噬细胞的致病机制。
• 药物筛选与功能评估：用于检测新型抗炎药物、免疫调节剂及抗肿瘤药物的活性与安全性。

4. 推荐实验方案

制备BMMs时，通常从小鼠股骨和胫骨中取出骨髓细胞，经PBS冲洗后置于培养瓶中，加入含有M-CSF的专用完全培养基，在37°C、5% CO₂条件下培养。培养过程中应每2–3天更换一次培养基，并补充M-CSF以维持分化环境。经过5–7天培养后，大部分细胞会分化为成熟的巨噬细胞，表现为形态均一且强贴壁性。在功能实验中，BMMs可用于吞噬实验（如荧光标记微球或细菌吞噬）、细胞因子检测（ELISA、qPCR）、免疫荧光染色及信号通路分析。实验操作需保持无菌条件，避免支原体污染，并在实验前确认细胞活性和分化状态。

5. 技术与性能优势

小鼠BMMs骨髓源性巨噬细胞具备以下技术与性能优势：
• 高纯度：在M-CSF诱导条件下可获得接近100%纯度的巨噬细胞群体。
• 功能稳定：在体外维持较长时间的吞噬与免疫应答能力，适合多类型功能学实验。
• 来源可控：可根据实验需要选择不同品系、性别和年龄的小鼠制备BMMs，以满足个性化研究需求。
• 易于操作：分离与培养方法成熟，重复性高，适合大规模实验。
• 模型广泛：可模拟多种疾病的巨噬细胞状态，包括炎症、肿瘤及感染环境。
• 数据可比性高：由于来源与分化条件标准化，便于不同实验间结果比较与整合。

6. 结论与前景展望

小鼠BMMs骨髓源性巨噬细胞是研究免疫反应、炎症机制及病原体感染的重要工具，其来源可控、功能稳定、实验操作成熟，使其在免疫学、肿瘤学和感染病学中均占有重要地位。未来，结合转录组测序、单细胞分析及基因编辑等技术，BMMs将为解析巨噬细胞的异质性、功能可塑性以及疾病相关性提供更深层次的数据支持。同时，通过与三维培养、类器官模型和体内疾病模型结合，BMMs有望在免疫治疗药物开发及精准医疗领域发挥更大作用。