"HuH-7人肝癌复苏细胞保种中心|带STR证书
传代比例：1:2-1:4(首次传代建议1:2)
生长特性：贴壁生长
正确的细胞复苏需知事项：细胞冻存HAO了，接下来要注意什么问题呢？没错，就是记得到时间了，拿出来复苏。那么，细胞复苏的过程中又有哪些该注意的事项呢？细胞活力和形态检查的作用何在？活力检查——千万不要使用不健康的细胞，可能有污染(真菌、支原体等)，如果发现有污染毫不犹豫的丢弃!形态检查——检查细胞的固有形态和生长行为。冻存细胞：补充新的培养——在您开始冻存细胞的前一天补充新的培养。在细胞长至７０%单层时收获细胞，计数活细胞数，用冻存调整细胞密度~５ x１０６ s/ml (根据不同的细胞类型调整)；冻存——用冻存洗细胞并用冻存重悬细胞，有不同类型的冻存，根据细胞类型选择Zui合适的冻存(常用的冻存成分有)：５-１０% DMSO——注意确保DMSO不含有其他的毒性物质；５-１５%甘油；如果细胞在无血清培养基内生长，应在５０%条件培养基内(细胞在无血清培养基内生长２４小时)内冻存和复苏。在冻存管上标记HAO细胞类型，日期，冻存人等信息，并保证每冻存管不超过１.５ml。放入罐之前记录冻存管的数量和位置。以Zui快的速度转移冻存管知罐内，因此，此步骤ZuiHAO使用干冰，或者把冻存管浸入装有的小盒内。此外还要注意，在冻存管上没有足够的空间记录细胞的详细信息，做HAO记录是非常非常重要的！还有一个Zui重要的，一定要在异地的罐内保存同样的一份细胞，以免其中的一个罐出现问题！细胞正确的复苏方式和正确的冻存方式同样重要，熟记以下要点：当从罐内取出细胞时，有可能会出现冻存管破裂的情况，使用保护面罩和防护服十分必要；其实，细胞复苏只是一个简单的实验，不过这其中却不可避免有一些需要注意的细节，不然，也不一定会尽如人意。例如说，人身健康方面：一定要记得做HAO防冻工作，戴上护目镜；尽量降低DMSO对细胞的损伤等等。
换液周期：每周2-3次
MCA 205 Cells;背景说明：纤维肉瘤;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：SW 1417细胞、Vero-E6细胞、SCL1细胞
MLE-12 Cells;背景说明：肺；上皮细胞；SV４０转化；FVB/N;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：MDA361细胞、Sp 2817细胞、TMK1细胞
2PK-3 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁或悬浮，详见产品说明书部分;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：OC-3-VGH细胞、MLA 144细胞、A 2780 CP细胞
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背景信息：是一种来源于人肝细胞癌（Hepatocellular Carcinoma, HCC）的细胞系，最初于1982年从一名56岁的日本男性患者的肝脏肿瘤中分离出来。据说，HuH-7细胞可产甲胎蛋白、胰酶α抗体、血浆铜蓝蛋白、纤维蛋白原、纤维粘连蛋白等。
公司细胞系形态漂亮、增殖倍数高、纯度高、功能性强，细胞培养就跟养孩子一个样。养孩子要喂奶，养细胞要加补液，都需要在前期补充足够的营养，初始状态的细胞或刚刚复苏的细胞还要适量加入血清或细胞因子来帮助它们的存活增殖，如果营养物质缺乏，细胞就会不生长甚至死亡。养孩子要从小培养学习，养细胞也得培养宝宝顺利生下来，你会经常抚摸他，给他看各种颜色，刺激他的五感。细胞也是一样，分离后的细胞需要使用特定的细胞因子进行活化、增殖。另外加入因子的种类、因子的浓度、加入时间、加入顺序都会影响细胞最终的结果。养孩子最怕孩子生病，养细胞最怕被污染，平时你会仔细观察宝宝是否呕吐、是否突然哭闹，猜测宝宝是否生病了。对于细胞，我们也需要时刻进行观察的，假如培养液浑浊(污染了)，则需要换液后加抗生素；假如细胞增殖不明显，形态变差，则可能是因为营养不足了，对贴壁细胞可以消化后重新用新的培养基接种并加倍加入细胞因子含量；对悬浮细胞增殖能力不强的，则不着急补液，只是先补加血清、细胞因子看是否可以好转。培养时还得全程在无菌的环境，一个小小的偏差，细胞就会死亡。
产品包装：复苏发货：T25培养瓶(一瓶)或冻存发货：1ml冻存管(两支)
来源说明：细胞主要来源ATCC、ECACC、DSMZ、RIKEN等细胞库
CT26.CL25 Cells;背景说明：结肠癌； BALB/c;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：MDA-435细胞、H-64细胞、H2122细胞
TR 146 Cells;背景说明：食管鳞癌;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：SW1222细胞、SNB19细胞、KM H-2细胞
HSAS3 Cells;背景说明：皮肤；成纤维 Cells;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：PE/CA-PJ-34细胞、Buffalo Rat Liver-3A细胞、HUTU80细胞
Hs683T Cells;背景说明：该细胞源自７６岁白人男性的左颞叶侧胶质瘤组织，有微绒毛，无桥粒。 ;传代方法：１：４传代，每周换液２次;生长特性：贴壁生长;形态特性：成纤维细胞;相关产品有：H1836细胞、PBL细胞、HTori3细胞
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物种来源：人源、鼠源等其它物种来源
形态特性：上皮细胞样
细胞传代培养(消化法)标准操作规程【原理】细胞在培养瓶长成致密单层后，已基本上饱和，为使细胞能继续生长，同时也将细胞数量扩大，就必须进行传代(再培养)。传代培养也是一种将细胞种保存下去的方法。同时也是利用培养细胞进行各种实验的必经过程。悬浮型细胞直接分瓶就可以，而贴壁细胞需经消化后才能分瓶。【材料和试剂】１)无菌生理缓冲(PBS)；２)胰酶-EDA溶(０.０５%胰酶-０.５３mM EDA-４Na): 以１０ml分装于１５ ml无菌离心管中，保存于–２０℃，使用前放在３７℃水槽回温；３)新鲜培养基；４)无菌吸管/离心管/培养瓶【传代前准备操作】１)预热培养用：把已经配制HAO的装有培养、PBS和胰蛋白酶的瓶子放入３７℃水浴锅内预热；２)用７５％酒精擦拭经过紫外线照射的超净工作台和双手；３)正确摆放使用的器械：保证足够的操作空间，不仅便于操作而且可减少污染；４)点燃酒精灯：注意火焰不能太小；５)准备HAO将要使用的消毒后的空培养瓶；６)取出预热HAO的培养用，用酒精棉球擦拭HAO后方能放入超净台内；７)从培养箱内取出细胞：注意取出细胞时要旋紧瓶盖，用酒精棉球擦拭显微镜的台面，再在镜下观察细胞；８)打开瓶口：将各瓶口一一打开，同时要在酒精灯上烧口消毒。
MCF 7B Cells;背景说明：浸润性导管癌；胸腔积液转移；女性;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：J-111细胞、CCD 1112SK细胞、Hep 2细胞
AHH1 Cells;背景说明：B淋巴细胞；EBV转化;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：悬浮;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：GOTO细胞、DKMG细胞、NCI-HUT-596细胞
OSC19 Cells;背景说明：舌鳞癌；男性;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：BL-6细胞、SEG-1细胞、SU86_86细胞
STO Cells;背景说明：STO是一株继代生长的胚成纤维细胞系，可用于制备饲养层细胞（feederlayers）和其他研究。;传代方法：１：２传代;生长特性：贴壁生长;形态特性：成纤维细胞样;相关产品有：NCIH1092细胞、WEHI3B细胞、H-146细胞
U138MG Cells;背景说明：星形细胞瘤；男性;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：HT3细胞、Y3.AG.1.2.3细胞、MSTO-211 H细胞
HAPI Cells;背景说明：小胶质细胞；自发永生；Wistar;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：半贴壁;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：ARO细胞、H1944细胞、NCIH2227细胞
SuDHL 2 Cells;背景说明：弥漫性大细胞淋巴瘤；胸腔积液转移；女性;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：悬浮;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：DH 82细胞、Ly7细胞、H378细胞
COLO-684 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２传代;生长特性：悬浮生长;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：DMS 273细胞、NCI-SNU-668细胞、Hs852细胞
KATO 3 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２传代。３天内可长满。;生长特性：贴壁生长;形态特性：上皮细胞;相关产品有：WTRL1细胞、L929细胞、HCC1438细胞
LY Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁或悬浮，详见产品说明书部分;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：H7721细胞、H35 Reuber细胞、Karpas-422细胞
HCC-366 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁或悬浮，详见产品说明书部分;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：NCIH2591细胞、A 549细胞、LC-1细胞
Fao Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁或悬浮，详见产品说明书部分;形态特性：上皮细胞;相关产品有：RPMI #8226细胞、Keio University-19-19细胞、BEL 7402细胞
HSC-2 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁或悬浮，详见产品说明书部分;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：Hs-578-T细胞、EPC细胞、MPC-11细胞
NCI-H1930 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：３-４天换液１次。;生长特性：悬浮生长;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：TCC Sup细胞、Hs695细胞、NCI-H1793细胞
102PT Cells;背景说明：乳腺癌；女性;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：KMH2细胞、COLO 16细胞、C2C12细胞
SR786 Cells;背景说明：间变性大细胞淋巴瘤；男性;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：悬浮;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：NOR-10细胞、NCIH1944细胞、639-V细胞
HSC-I Cells;背景说明：皮肤鳞癌；男性;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：NCI-H69细胞、Co 205细胞、HKC细胞
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Abcam HEK293T FCSK KO Cells(提供STR鉴定图谱)
AG10106 Cells(提供STR鉴定图谱)
BayGenomics ES cell line NPX494 Cells(提供STR鉴定图谱)
BayGenomics ES cell line XC681 Cells(提供STR鉴定图谱)
BT092 Cells(提供STR鉴定图谱)
CPA-Yang1 Cells(提供STR鉴定图谱)
DA04089 Cells(提供STR鉴定图谱)
DA04705 Cells(提供STR鉴定图谱)
FPMI-NL-31 Cells(提供STR鉴定图谱)
MiaPaca.2 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２传代；;生长特性：贴壁生长;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：MGHU1细胞、L-428细胞、MDA-MB-330细胞
KYSE 140 Cells;背景说明：食管鳞癌细胞；男性;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：KU19-19细胞、SG231细胞、LC1/Sq细胞
KYSE-270 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：５传代;生长特性：贴壁生长;形态特性：上皮样;相关产品有：MCA 38细胞、NCI-H2108细胞、GM02132C细胞
CAL 62 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁或悬浮，详见产品说明书部分;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：NTC200细胞、TB1 Lu细胞、SP2-0-Ag14细胞
GNM Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁或悬浮，详见产品说明书部分;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：SW579细胞、Stanford University Pediatric T-cell line 1细胞、SK.MEL.5细胞
U-87 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁或悬浮，详见产品说明书部分;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：LLC-WRC 256细胞、TE-12细胞、McArdle RH-7777细胞
10F8A Cells(提供STR鉴定图谱)
MRC-5 Cells;背景说明：MRC-５细胞系来自１４周龄男性胎儿的正常肺组织，该细胞老化前能传代４２~４６个倍增时间。;传代方法：１：２-１：５传代；每周１-２次。;生长特性：贴壁生长;形态特性：成纤维细胞样;相关产品有：Huh7.5细胞、SW 780细胞、ST2细胞
EB2 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：４ X １０５ cells/mL and maintain at between ４ X １０５ and １ X １０６ cells/mL.，每２-３天换液;生长特性：悬浮生长 ;形态特性：淋巴母细胞样;相关产品有：CX1细胞、786O细胞、NCIH524细胞
XWLC-05 Cells;背景说明：肺癌；女性;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：H1770细胞、V79-1细胞、Hela-mock细胞
MOLM16 Cells;背景说明：急性髓系白血病；女性;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：悬浮;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：16-HBE14o细胞、CEM-CCRF细胞、HSF细胞
CEM C7 Cells;背景说明：急性T淋巴细胞白血病；女性;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：悬浮;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：NPC-TW 039细胞、A2008细胞、BeWo细胞
MDA-436 Cells;背景说明：该细胞源于一名４３岁患有乳腺腺癌女性的胸腔积液。;传代方法：１：２传代，每周换液２—３次;生长特性：贴壁生长;形态特性：多角形;相关产品有：RKOAS451细胞、BNL-CL.2细胞、HUT28细胞
MDA-436 Cells;背景说明：该细胞源于一名４３岁患有乳腺腺癌女性的胸腔积液。;传代方法：１：２传代，每周换液２—３次;生长特性：贴壁生长;形态特性：多角形;相关产品有：RKOAS451细胞、BNL-CL.2细胞、HUT28细胞
Okayama University Medical School-23 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁或悬浮，详见产品说明书部分;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：OC-316细胞、H-2108细胞、ELD-1细胞
GM17472 Cells(提供STR鉴定图谱)
HAP1 HMBS (-) 1 Cells(提供STR鉴定图谱)
CP70 Cells;背景说明：卵巢癌；女性;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：HUTU80细胞、HEL-92-1-7细胞、NCI-N87细胞
FHCRC-11 Cells;背景说明：该细胞源自一位１４岁患有T淋巴细胞白血病男性的外周血;传代方法：保持细胞密度在３—９×１０５cells/ml之间，１：５—１：１０传代，每周换液２—３次;生长特性：悬浮生长;形态特性：圆形，单个或呈片;相关产品有：Metastatic Variant-522细胞、SupT1细胞、NCI-H2227细胞
A.704 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：３—１：４传代，每周换液２-３次;生长特性：贴壁生长;形态特性：上皮细胞样;相关产品有：HEK293-EBNA细胞、16HBE140细胞、HSC-2细胞
UM2 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁或悬浮，详见产品说明书部分;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：Pt K1 (NBL-3)细胞、MDA-MB-435S细胞、Molm 14细胞
LTEP a2 Cells;背景说明：肺腺癌；女性;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：P3X63 AG 8.653细胞、870细胞、Malme-3 M细胞
H-1703 Cells;背景说明：该细胞１９８７年建系，源自一位５４岁患有非小细胞肺癌的白人男性，该患者为吸烟者。;传代方法：１：３—１：６传代，每周换液２—３次;生长特性：贴壁生长;形态特性：上皮细胞样;相关产品有：Porcine Kidney-13细胞、IOSE 80细胞、U343MG细胞
MGECs Cells;背景说明：肾小球；内皮 Cells;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：SKBR-3细胞、Hs 611.T细胞、QBC(939)细胞
HaCaT Cells;背景说明：该细胞源自一位６２岁患有黑色素瘤男性的病灶外围正常皮肤，角蛋白、角化细胞交联外膜蛋白、中间丝相关蛋白阳性。;传代方法：１：３—１：６传代，每周换液２—３次;生长特性：贴壁生长;形态特性：上皮细胞样;相关产品有：HO-1-N-1细胞、Be Wo细胞、MGSMC细胞
HPr-1-AR Cells(提供STR鉴定图谱)
JHU114i Cells(提供STR鉴定图谱)
MCW095i-U2311 Cells(提供STR鉴定图谱)
ND30494 Cells(提供STR鉴定图谱)
PR01089 Cells(提供STR鉴定图谱)
Ubigene A-549 IKBKE KO Cells(提供STR鉴定图谱)
UPSFRi007-A Cells(提供STR鉴定图谱)
HAP1 TIPARP (-) 1 Cells(提供STR鉴定图谱)
DU145 Cells;背景说明：DU １４５ 是从一位有３年淋巴细胞白血病史的前列腺癌患者的脑部转移灶中建立的。该细胞系未检测到激素敏感性，酸性酶阳性，单个的细胞可在软琼脂中形成集落。对此细胞和原始肿瘤的亚显微结构分析可见微绒毛、微丝、细胞桥粒、线粒体、发达的高尔基体和异质溶酶体。该细胞不表达前列腺抗原。;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁;形态特性：上皮细胞样;相关产品有：RKN细胞、Mc Coy细胞、1.1B4细胞
SVGp12 Cells;背景说明：星形胶质细胞；SV４０转化；男性;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：H-2066细胞、SW-1573细胞、TE354T细胞
Hs-688A-T Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２-１：３传代;生长特性：贴壁生长;形态特性：成纤维细胞;相关产品有：LNCaP.FGC细胞、ANA1细胞、HTR-8/SV-neo细胞
KYSE 270 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：５传代;生长特性：贴壁生长;形态特性：上皮样;相关产品有：HOP92细胞、Hs739T细胞、G-361细胞
SUDHL-16 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁或悬浮，详见产品说明书部分;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：F-81细胞、Porcine Kidney-13细胞、NCIH1781细胞
SUDHL-16 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁或悬浮，详见产品说明书部分;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：F-81细胞、Porcine Kidney-13细胞、NCIH1781细胞
HECV Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁或悬浮，详见产品说明书部分;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：CCD 19Lu细胞、NCTC 3960细胞、PANC-28细胞
MonoMac 6 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２传代;生长特性：悬浮生长;形态特性：淋巴母细胞;相关产品有：MDA-MB-231-luc细胞、LA795细胞、AMC-HN-8细胞
WM451 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁或悬浮，详见产品说明书部分;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：KMB 17细胞、EFM19细胞、OCI/AML3细胞
NALM-6-M1 Cells;背景说明：急性B淋巴细胞白血病；男性;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：悬浮;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：HCC-15细胞、KRCY细胞、LAD 2细胞
SU-DHL-16 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁或悬浮，详见产品说明书部分;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：RH8994细胞、NPC-TW 01细胞、H184A1细胞
SU4 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：悬浮;形态特性：淋巴母细胞;相关产品有：NW38细胞、MCA-38细胞、CAL-39细胞
KM12SM Cells;背景说明：结肠癌;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：OV90细胞、16-HBEo细胞、SW 948细胞
IAR-20 Cells;背景说明：肝； BDVI;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：LM1细胞、VA-ES-BJ细胞、BE(2)-M17细胞
PBL Cells;背景说明：外周血淋巴 Cells;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：悬浮;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：H35细胞、RAW 264.7细胞、MA-782细胞
SKBR3-AZDRa Cells(提供STR鉴定图谱)
Oregon J-111 Cells;背景说明：单核细胞白血病;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：悬浮;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：RGC6细胞、hTERT-HME1细胞、ARIP细胞
Immortal Pig Intestinal-2I Cells;背景说明：肠；上皮细胞；SV４０转化;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：CHO Lec1细胞、LM TK negative细胞、Centre Antoine Lacassagne-27细胞
R2C Cells;背景说明：睾丸间质瘤；雄性；Wistar Furth;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：Y3-Ag1,2,3细胞、SW-620细胞、HOP-92细胞
MGHU1 Cells;背景说明：膀胱癌；女性;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：WM2664细胞、MDA-MB-415细胞、RC-K8细胞
NCIH2030 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：３-１：４传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁生长;形态特性：上皮细胞样;相关产品有：DoHH-2细胞、RH-30细胞、GP2-293细胞
GLRK 13 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁或悬浮，详见产品说明书部分;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：IB-RS-2细胞、RCC_7860细胞、67NR细胞
UMUC3 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２传代;生长特性：贴壁生长;形态特性：上皮细胞样;相关产品有：JJN3细胞、hTERT-RPE1细胞、Rat Lung-65细胞
NCI-H358 Cells;背景说明：１９８１年从一位开始化疗之前的患者的肿瘤组织中分离建株。超微结构研究表明细胞质中有Clara细胞的特征结构细胞表达主要的肺表面结合蛋白SP-A的蛋白和RNA。不表达SP-B和SP-C。他们在软琼脂中的克隆形成效率为０.８３%。;传代方法：消化３-５分钟。１：２。３天内可长满。;生长特性：贴壁生长;形态特性：上皮样;相关产品有：OCI Ly3细胞、3T3F442A细胞、WPMY1细胞
BC3H1 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁或悬浮，详见产品说明书部分;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：T9细胞、OC 316细胞、NS-20Y细胞
CHP 126 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁或悬浮，详见产品说明书部分;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：H-23细胞、OCI Ly1细胞、TKB-1细胞
SKN-SH Cells;背景说明：SK-N-SH细胞系由J.L.Bieder建系，它与SK-N-MC所不同的是倍增时间较长且多巴胺-β-羟基酶水平较高。 SK-N-SH在细胞介导的细胞毒性试验中用作靶细胞系。;传代方法：１：２传代;生长特性：悬浮生长;形态特性：上皮细胞样;相关产品有：Hs606细胞、HFLS细胞、CLL-CII细胞
H1666_DA Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２-１：４传代；每周换液２次。;生长特性：贴壁生长，松散;形态特性：上皮细胞;相关产品有：RK13细胞、RT-BM 1细胞、ECC 12细胞
SK-UT-1 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：４-１：１２传代，２天换液１次。;生长特性：贴壁生长;形态特性：上皮细胞;相关产品有：LS 174T细胞、G-292, clone A141B1细胞、E.L.4细胞
MLOY4 Cells;背景说明：骨；SV４０转化;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：NCI-H1373细胞、DHL4细胞、Walker-Ca.256细胞
HuH-7人肝癌复苏细胞保种中心|带STR证书
BayGenomics ES cell line RRH156 Cells(提供STR鉴定图谱)
BayGenomics ES cell line XH215 Cells(提供STR鉴定图谱)
ES[MC1R(20):tetHoxa2(12)] Cells(提供STR鉴定图谱)
N1G-5A6 Cells(提供STR鉴定图谱)
Ubigene NIH/3T3 Tns1 KO Cells(提供STR鉴定图谱)
MBA72R Cells(提供STR鉴定图谱)
" "PubMed=8224613; DOI=10.1096/fasebj.7.14.8224613
Puisieux A., Galvin K., Troalen F., Bressac B., Marcais C., Galun E., Ponchel F., Yakicier C., Ji J.-W., Ozturk M.
Retinoblastoma and p53 tumor suppressor genes in human hepatoma cell lines.
FASEB J. 7:1407-1413(1993)
PubMed=8389256; DOI=10.1093/carcin/14.5.987
Hsu I.-C., Tokiwa T., Bennett W.P., Metcalf R.A., Welsh J.A., Sun T.-T., Harris C.C.
p53 gene mutation and integrated hepatitis B viral DNA sequences in human liver cancer cell lines.
Carcinogenesis 14:987-992(1993)
PubMed=8835345; DOI=10.1002/(SICI)1096-9071(199602)48:2<133::aid-jmv3>3.0.CO;2-A
Tsuboi S., Nagamori S., Miyazaki M., Mihara K., Fukaya K.-i., Teruya K., Kosaka T., Tsuji T., Namba M.
Persistence of hepatitis C virus RNA in established human hepatocellular carcinoma cell lines.
J. Med. Virol. 48:133-140(1996)
DOI=10.11418/jtca1981.16.3_173
Mihara K., Miyazaki M., Fushimi K., Tsuji T., Inoue Y., Fukaya K.-i., Ohashi R., Namba M.
The p53 gene status and other cellular characteristics of human cell lines maintained in our laboratory.
Tissue Cult. Res. Commun. 16:173-178(1997)
PubMed=9290701; DOI=10.1002/(SICI)1098-2744(199708)19:4<243::aid-mc5>3.0.CO;2-D
Jia L.-Q., Osada M., Ishioka C., Gamo M., Ikawa S., Suzuki T., Shimodaira H., Niitani T., Kudo T., Akiyama M., Kimura N., Matsuo M., Mizusawa H., Tanaka N., Koyama H., Namba M., Kanamaru R., Kuroki T.
Screening the p53 status of human cell lines using a yeast functional assay.
Mol. Carcinog. 19:243-253(1997)
PubMed=9359923; DOI=10.18926/AMO/30789
Mihara K., Miyazaki M., Kondo T., Fushimi K., Tsuji T., Inoue Y., Fukaya K.-i., Ishioka C., Namba M.
Yeast functional assay of the p53 gene status in human cell lines maintained in our laboratory.
Acta Med. Okayama 51:261-265(1997)
PubMed=10523694; DOI=10.3892/or.6.6.1267
Gao C., Ohashi R., Pu H., Inoue Y., Tsuji T., Miyazaki M., Namba M.
Yeast functional assay of the p53 gene status in 11 cell lines and 26 surgical specimens of human hepatocellular carcinoma.
Oncol. Rep. 6:1267-1271(1999)
PubMed=11152498; DOI=10.1128/JVI.75.3.1252-1264.2001; PMCID=PMC114031
Pietschmann T., Lohmann V., Rutter G., Kurpanek K., Bartenschlager R.F.W.
Characterization of cell lines carrying self-replicating hepatitis C virus RNAs.
J. Virol. 75:1252-1264(2001)
PubMed=12029633; DOI=10.1053/jhep.2002.33683
Yasui K., Arii S., Zhao C., Imoto I., Ueda M., Nagai H., Emi M., Inazawa J.
TFDP1, CUL4A, and CDC16 identified as targets for amplification at 13q34 in hepatocellular carcinomas.
Hepatology 35:1476-1484(2002)
PubMed=15708988; DOI=10.1128/JVI.79.5.2689-2699.2005; PMCID=PMC548482
Sumpter R.M. Jr., Loo Y.-M., Foy E.M., Li K., Yoneyama M., Fujita T., Lemon S.M., Gale M. Jr.
Regulating intracellular antiviral defense and permissiveness to hepatitis C virus RNA replication through a cellular RNA helicase, RIG-I.
J. Virol. 79:2689-2699(2005)
PubMed=15767549; DOI=10.1158/1535-7163.MCT-04-0234
Nakatsu N., Yoshida Y., Yamazaki K., Nakamura T., Dan S., Fukui Y., Yamori T.
Chemosensitivity profile of cancer cell lines and identification of genes determining chemosensitivity by an integrated bioinformatical approach using cDNA arrays.
Mol. Cancer Ther. 4:399-412(2005)
PubMed=16935386; DOI=10.1016/j.jhep.2006.05.019
Sun D.-X., Nassal M.
Stable HepG2- and Huh7-based human hepatoma cell lines for efficient regulated expression of infectious hepatitis B virus.
J. Hepatol. 45:636-645(2006)
PubMed=20215515; DOI=10.1158/0008-5472.CAN-09-3458; PMCID=PMC2881662
Rothenberg S.M., Mohapatra G., Rivera M.N., Winokur D., Greninger P., Nitta M., Sadow P.M., Sooriyakumar G., Brannigan B.W., Ulman M.J., Perera R.M., Wang R., Tam A., Ma X.-J., Erlander M., Sgroi D.C., Rocco J.W., Lingen M.W., Cohen E.E.W., Louis D.N., Settleman J., Haber D.A.
A genome-wide screen for microdeletions reveals disruption of polarity complex genes in diverse human cancers.
Cancer Res. 70:2158-2164(2010)
PubMed=22460905; DOI=10.1038/nature11003; PMCID=PMC3320027
Barretina J.G., Caponigro G., Stransky N., Venkatesan K., Margolin A.A., Kim S., Wilson C.J., Lehar J., Kryukov G.V., Sonkin D., Reddy A., Liu M., Murray L., Berger M.F., Monahan J.E., Morais P., Meltzer J., Korejwa A., Jane-Valbuena J., Mapa F.A., Thibault J., Bric-Furlong E., Raman P., Shipway A., Engels I.H., Cheng J., Yu G.-Y.K., Yu J.-J., Aspesi P. Jr., de Silva M., Jagtap K., Jones M.D., Wang L., Hatton C., Palescandolo E., Gupta S., Mahan S., Sougnez C., Onofrio R.C., Liefeld T., MacConaill L.E., Winckler W., Reich M., Li N.-X., Mesirov J.P., Gabriel S.B., Getz G., Ardlie K., Chan V., Myer V.E., Weber B.L., Porter J., Warmuth M., Finan P., Harris J.L., Meyerson M.L., Golub T.R., Morrissey M.P., Sellers W.R., Schlegel R., Garraway L.A.
The Cancer Cell Line Encyclopedia enables predictive modelling of anticancer drug sensitivity.
Nature 483:603-607(2012)
PubMed=23285155; DOI=10.1371/journal.pone.0052697; PMCID=PMC3527576
Murayama A., Sugiyama N., Yoshimura S., Ishihara-Sugano M., Masaki T., Kim S., Wakita T., Mishiro S., Kato T.
A subclone of HuH-7 with enhanced intracellular hepatitis C virus production and evasion of virus related-cell cycle arrest.
PLoS ONE 7:E52697-E52697(2012)
PubMed=23505090; DOI=10.1002/hep.26402
Wang K., Lim H.Y., Shi S., Lee J., Deng S.-B., Xie T., Zhu Z., Wang Y.-L., Pocalyko D., Yang W.J., Rejto P.A., Mao M., Park C.-K., Xu J.-C.
Genomic landscape of copy number aberrations enables the identification of oncogenic drivers in hepatocellular carcinoma.
Hepatology 58:706-717(2013)
PubMed=23887712; DOI=10.1038/ncomms3218; PMCID=PMC3731665
Nault J.-C., Mallet M., Pilati C., Calderaro J., Bioulac-Sage P., Laurent C., Laurent A., Cherqui D., Balabaud C., Zucman-Rossi J.
High frequency of telomerase reverse-transcriptase promoter somatic mutations in hepatocellular carcinoma and preneoplastic lesions.
Nat. Commun. 4:2218.1-2218.7(2013)
PubMed=24973239; DOI=10.1099/vir.0.065995-0
Richter M., Reimann I., Schirrmeier H., Kirkland P.D., Beer M.
The viral envelope is not sufficient to transfer the unique broad cell tropism of Bungowannah virus to a related pestivirus.
J. Gen. Virol. 95:2216-2222(2014)
PubMed=25485619; DOI=10.1038/nbt.3080
Klijn C., Durinck S., Stawiski E.W., Haverty P.M., Jiang Z.-S., Liu H.-B., Degenhardt J., Mayba O., Gnad F., Liu J.-F., Pau G., Reeder J., Cao Y., Mukhyala K., Selvaraj S.K., Yu M.-M., Zynda G.J., Brauer M.J., Wu T.D., Gentleman R.C., Manning G., Yauch R.L., Bourgon R., Stokoe D., Modrusan Z., Neve R.M., de Sauvage F.J., Settleman J., Seshagiri S., Zhang Z.-M.
A comprehensive transcriptional portrait of human cancer cell lines.
Nat. Biotechnol. 33:306-312(2015)
PubMed=25574106; DOI=10.3748/wjg.v21.i1.311; PMCID=PMC4284350
Cevik D., Yildiz G., Ozturk M.
Common telomerase reverse transcriptase promoter mutations in hepatocellular carcinomas from different geographical locations.
World J. Gastroenterol. 21:311-317(2015)
PubMed=25877200; DOI=10.1038/nature14397
Yu M., Selvaraj S.K., Liang-Chu M.M.Y., Aghajani S., Busse M., Yuan J., Lee G., Peale F.V., Klijn C., Bourgon R., Kaminker J.S., Neve R.M.
A resource for cell line authentication, annotation and quality control.
Nature 520:307-311(2015)
PubMed=26589293; DOI=10.1186/s13073-015-0240-5; PMCID=PMC4653878
Scholtalbers J., Boegel S., Bukur T., Byl M., Goerges S., Sorn P., Loewer M., Sahin U., Castle J.C.
TCLP: an online cancer cell line catalogue integrating HLA type, predicted neo-epitopes, virus and gene expression.
Genome Med. 7:118.1-118.7(2015)
PubMed=27329724; DOI=10.18632/oncotarget.10161; PMCID=PMC5216950
Watari K., Nishitani A., Shibata T., Noda M., Kawahara A., Akiba J., Murakami Y., Yano H., Kuwano M., Ono M.
Phosphorylation of mTOR Ser2481 is a key target limiting the efficacy of rapalogs for treating hepatocellular carcinoma.
Oncotarget 7:47403-47417(2016)
PubMed=27397505; DOI=10.1016/j.cell.2016.06.017; PMCID=PMC4967469
Iorio F., Knijnenburg T.A., Vis D.J., Bignell G.R., Menden M.P., Schubert M., Aben N., Goncalves E., Barthorpe S., Lightfoot H., Cokelaer T., Greninger P., van Dyk E., Chang H., de Silva H., Heyn H., Deng X.-M., Egan R.K., Liu Q.-S., Miroo T., Mitropoulos X., Richardson L., Wang J.-H., Zhang T.-H., Moran S., Sayols S., Soleimani M., Tamborero D., Lopez-Bigas N., Ross-Macdonald P., Esteller M., Gray N.S., Haber D.A., Stratton M.R., Benes C.H., Wessels L.F.A., Saez-Rodriguez J., McDermott U., Garnett M.J.
A landscape of pharmacogenomic interactions in cancer.
Cell 166:740-754(2016)
PubMed=28196595; DOI=10.1016/j.ccell.2017.01.005; PMCID=PMC5501076
Li J., Zhao W., Akbani R., Liu W.-B., Ju Z.-L., Ling S.-Y., Vellano C.P., Roebuck P., Yu Q.-H., Eterovic A.K., Byers L.A., Davies M.A., Deng W.-L., Gopal Y.N.V., Chen G., von Euw E.M., Slamon D.J., Conklin D., Heymach J.V., Gazdar A.F., Minna J.D., Myers J.N., Lu Y.-L., Mills G.B., Liang H.
Characterization of human cancer cell lines by reverse-phase protein arrays.
Cancer Cell 31:225-239(2017)
PubMed=29610054; DOI=10.1016/j.dmpk.2018.03.003; PMCID=PMC6309175
Shi J., Wang X.-W., Lyu L.-Y., Jiang H., Zhu H.-J.
Comparison of protein expression between human livers and the hepatic cell lines HepG2, Hep3B, and Huh7 using SWATH and MRM-HR proteomics: Focusing on drug-metabolizing enzymes.
Drug Metab. Pharmacokinet. 33:133-140(2018)
PubMed=29774518; DOI=10.1007/s13577-018-0212-3; PMCID=PMC6002425
Kasai F., Hirayama N., Ozawa M., Satoh M., Kohara A.
HuH-7 reference genome profile: complex karyotype composed of massive loss of heterozygosity.
Hum. Cell 31:261-267(2018)
PubMed=30894373; DOI=10.1158/0008-5472.CAN-18-2747; PMCID=PMC6445675
Dutil J., Chen Z.-H., Monteiro A.N.A., Teer J.K., Eschrich S.A.
An interactive resource to probe genetic diversity and estimated ancestry in cancer cell lines.
Cancer Res. 79:1263-1273(2019)
PubMed=31063779; DOI=10.1053/j.gastro.2019.05.001
Caruso S., Calatayud A.-L., Pilet J., La Bella T., Rekik S., Imbeaud S., Letouze E., Meunier L., Bayard Q., Rohr-Udilova N., Peneau C., Grasl-Kraupp B., de Koning L., Ouine B., Bioulac-Sage P., Couchy G., Calderaro J., Nault J.-C., Zucman-Rossi J., Rebouissou S.
Analysis of liver cancer cell lines identifies agents with likely efficacy against hepatocellular carcinoma and markers of response.
Gastroenterology 157:760-776(2019)
PubMed=31068700; DOI=10.1038/s41586-019-1186-3; PMCID=PMC6697103
Ghandi M., Huang F.W., Jane-Valbuena J., Kryukov G.V., Lo C.C., McDonald E.R. 3rd, Barretina J.G., Gelfand E.T., Bielski C.M., Li H.-X., Hu K., Andreev-Drakhlin A.Y., Kim J., Hess J.M., Haas B.J., Aguet F., Weir B.A., Rothberg M.V., Paolella B.R., Lawrence M.S., Akbani R., Lu Y.-L., Tiv H.L., Gokhale P.C., de Weck A., Mansour A.A., Oh C., Shih J., Hadi K., Rosen Y., Bistline J., Venkatesan K., Reddy A., Sonkin D., Liu M., Lehar J., Korn J.M., Porter D.A., Jones M.D., Golji J., Caponigro G., Taylor J.E., Dunning C.M., Creech A.L., Warren A.C., McFarland J.M., Zamanighomi M., Kauffmann A., Stransky N., Imielinski M., Maruvka Y.E., Cherniack A.D., Tsherniak A., Vazquez F., Jaffe J.D., Lane A.A., Weinstock D.M., Johannessen C.M., Morrissey M.P., Stegmeier F., Schlegel R., Hahn W.C., Getz G., Mills G.B., Boehm J.S., Golub T.R., Garraway L.A., Sellers W.R.
Next-generation characterization of the Cancer Cell Line Encyclopedia.
Nature 569:503-508(2019)
PubMed=31378681; DOI=10.1016/j.ccell.2019.07.001; PMCID=PMC7505724
Qiu Z.-X., Li H., Zhang Z.-T., Zhu Z.-F., He S., Wang X.-J., Wang P.-C., Qin J.-J., Zhuang L.-P., Wang W., Xie F.-B., Gu Y., Zou K.-K., Li C., Li C., Wang C.-H., Cen J., Chen X.-T., Shu Y.-J., Zhang Z., Sun L.-L., Min L.-H., Fu Y., Huang X.-W., Lv H., Zhou H., Ji Y., Zhang Z.-G., Meng Z.-Q., Shi X.-L., Zhang H.-B., Li Y.-X., Hui L.-J.
A pharmacogenomic landscape in human liver cancers.
Cancer Cell 36:179-193.e11(2019)
PubMed=31395879; DOI=10.1038/s41467-019-11415-2; PMCID=PMC6687785
Yu K., Chen B., Aran D., Charalel J., Yau C., Wolf D.M., van 't Veer L.J., Butte A.J., Goldstein T., Sirota M.
Comprehensive transcriptomic analysis of cell lines as models of primary tumors across 22 tumor types.
Nat. Commun. 10:3574.1-3574.11(2019)
PubMed=31903165; DOI=10.18632/oncotarget.27361; PMCID=PMC6925031
Zheng A., Chevalier N., Calderoni M., Dubuis G., Dormond O., Ziros P.G., Sykiotis G.P., Widmann C.
CRISPR/Cas9 genome-wide screening identifies KEAP1 as a sorafenib, lenvatinib, and regorafenib sensitivity gene in hepatocellular carcinoma.
Oncotarget 10:7058-7070(2019)
PubMed=31978347; DOI=10.1016/j.cell.2019.12.023; PMCID=PMC7339254
Nusinow D.P., Szpyt J., Ghandi M., Rose C.M., McDonald E.R. 3rd, Kalocsay M., Jane-Valbuena J., Gelfand E.T., Schweppe D.K., Jedrychowski M.P., Golji J., Porter D.A., Rejtar T., Wang Y.K., Kryukov G.V., Stegmeier F., Erickson B.K., Garraway L.A., Sellers W.R., Gygi S.P.
Quantitative proteomics of the Cancer Cell Line Encyclopedia.
Cell 180:387-402.e16(2020)
PubMed=32899426; DOI=10.3390/cancers12092510; PMCID=PMC7565451
Scherer D., Davila-Lopez M., Goeppert B., Abrahamsson S., Gonzalez Silos R., Nova I., Marcelain K., Roa J.C., Ibberson D., Umu S.U., Rounge T.B., Roessler S., Lorenzo-Bermejo J.
RNA sequencing of hepatobiliary cancer cell lines: data and applications to mutational and transcriptomic profiling.
Cancers (Basel) 12:2510.1-2510.14(2020)
PubMed=33193621; DOI=10.3389/fgene.2020.546106; PMCID=PMC7581915
Kawamoto M., Yamaji T., Saito K., Shirasago Y., Satomura K., Endo T., Fukasawa M., Hanada K., Osada N.
Identification of characteristic genomic markers in human hepatoma Huh-7 and Huh7.5.1-8 cell lines.
Front. Genet. 11:546106.1-546106.10(2020)"
