"786-O[786-0]人肾透明细胞腺癌复苏细胞保种中心|带STR证书
传代比例:1:2-1:4(首次传代建议1:2)
生长特性:贴壁生长
贴壁细胞的消化方法介绍:1、胰酶。这是用得Zui多的。一般浓度在0.25-0.5%。作用时间根据细胞种类、作用温度等因素而变化很大,从几分钟到几十分钟不等。0.25%的胰酶作用于单层贴壁的细胞,在37度条件下,一般消化1-5分钟就足够了。终止是用血清。主要作用于细胞间。配制时不能用含、镁的平衡,否则影响活性。保存于-20度。2、胶原酶。这种方法比较少,一般是用原代培养时,从组织消化下细胞。这种方法作用温和,对细胞损伤较小,但是,价格也较贵。中止同样是用血清。3、EDA。用得也是非常多。一般浓度在0.02%左右。作用于细胞与间质,对细胞间也有一定作用。注意,它能显著影响pH值,而且在弱碱性条件下才易溶。因此,配制时应调节HAO碱度。它不能被终和。因此,消化下来的细胞要洗一遍。4、商品化的无酶消化。个人的使用经常觉得对细胞的损伤比较大,但是分离成单细胞悬的能力确实比较强。5、物理法。直接吹打或用细胞刮子将细胞刮下来。6、冷冻法。此方法仅能用于细胞传代时。无法使组织上的细胞脱落下来。本方法的原理,我想是因细胞冷冻后收缩,从而从培养瓶上脱落下来。YOU点是:对细胞损伤小,不需要中止或洗细胞,方便,不需要另外配制消化。别适用那些贴壁不是别紧,又别娇气的细胞。不足是细胞常成小片脱落。此种方法曾用于因用其它方法传代导致大量细胞死亡操作的间充质干细胞、DC细胞的培养,效果非常满意。具体过程是:1、用较多的4度的PBS 洗涤一遍细胞(以6孔板为例,加1.5ml/孔),2、再加0.5毫升4度的PBS,静置操作台上,很快细胞就小片脱落,3、轻轻吹打,细胞即完全脱落,4、按一定比例传代。
换液周期:每周2-3次
Metastatic Variant-522 Cells;背景说明:肺腺癌;女性;传代方法:1:2-1:3传代;每周换液2-3次。;生长特性:贴壁;形态特性:详见产品说明书;相关产品有:NCI-H2291细胞、GH 3细胞、Granta 519细胞
U-343-MG Cells;背景说明:详见相关文献介绍;传代方法:1:2传代;生长特性:贴壁生长 ;形态特性:详见产品说明书;相关产品有:OUMS-27细胞、CMT 93细胞、H1568细胞
HCT.116 Cells;背景说明:结肠腺癌;男性;传代方法:1:2-1:3传代;每周换液2-3次。;生长特性:贴壁;形态特性:详见产品说明书;相关产品有:SO-Rb 50细胞、P3-X63-Ag8-653细胞、SHSY-5Y细胞
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背景信息:该细胞源自一位原发性肾透明细胞癌患者。该细胞有微绒毛和桥粒,能在软琼脂上生长。此细胞生成一种PTH(甲状旁腺素)样的多肽,与乳癌和肺癌中生成的肽相似,其N端序列与PTH相似,具有PTH样活性,分子量为6000D。
细胞系的应用:1)免疫组化研究2)RNA干扰研究3)药物作用研究4)慢病毒转染研究等其它应用。细胞系通常用于实验研究,如增殖、迁移、侵袭等。细胞系在多个领域的研究中被广泛应用,包括基础医学、临床试验、药物筛选和分子生物学研究。这些研究不仅在中国,也在日本、美国和欧洲等多个国家和地区进行。
产品包装:复苏发货:T25培养瓶(一瓶)或冻存发货:1ml冻存管(两支)
来源说明:细胞主要来源ATCC、ECACC、DSMZ、RIKEN等细胞库
TU 686 Cells;背景说明:详见相关文献介绍;传代方法:1:2传代;生长特性:贴壁生长 ;形态特性:详见产品说明书;相关产品有:NF639细胞、KOPN8细胞、N-Tera-2细胞
OVCA5 Cells;背景说明:卵巢癌;腹水转移;女性;传代方法:1:2-1:3传代;每周换液2-3次。;生长特性:贴壁;形态特性:详见产品说明书;相关产品有:PANC-10-05细胞、ML2细胞、MDA-MB-134-VI细胞
WM115 Cells;背景说明:黑色素瘤;女性;传代方法:1:2-1:3传代;每周换液2-3次。;生长特性:贴壁;形态特性:详见产品说明书;相关产品有:NE1细胞、SN12PM6细胞、Jurkat FHCRC细胞
PC3M Cells;背景说明:详见相关文献介绍;传代方法:1:2传代;生长特性:贴壁生长 ;形态特性:详见产品说明书;相关产品有:BMSC/hBMSCs细胞、KM12SM细胞、PNT-1A细胞
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物种来源:人源、鼠源等其它物种来源
形态特性:上皮细胞样
其实绝大部分细胞消化的时候是只要用胰酶润洗一遍即可,吸去胰酶后,残留的那些无法计算体积的附着在细胞表面的微量胰酶在37度一般不到2min足够消化细胞(绝大部分1min不到)。对于这些细胞原则上不要用胰酶孵育细胞,连续这样传代,对细胞伤害很大。简单的程序是PBS润洗吸去,胰酶润洗吸去,然后37度消化;什么算是消化HAO了呢?不是细胞全部成间隔分布很离散的单个圆形才算消化HAO了,一般你肉眼观察贴壁细胞层,只要能移动了,多半呈沙壮移动,其实已经可以了,很多人喜欢把细胞消化或者吹打成完全分离细胞,这是没有必要的。一般能移动了,说明细胞与培养基质材料的附着已经消失了,细胞之间的附着也已经消失了,细胞已经独立分布了(虽然没有呈现很广的离散分布)。这个时候应该停止消化,不要等到看到镜下所有细胞都分离得非常HAO,间隙很大,才停止。细胞就是完全成单个细胞悬,之后在贴壁的过程中仍然会聚集,这个是贴壁培养的细胞,尤其是肿瘤细胞的一个性,无论死活的细胞都是如此,你可以尝试,准备100%的单个细胞悬,贴壁后观察细胞,仍然是几个几个细胞聚集在一起。一些悬浮培养细胞也是如此,容易聚集,不要去尝试过几个小时就拿出来吹打成单细胞悬(不要笑,这个是初养悬浮细胞的人常犯的错误,以为悬浮培养就是一个一个分开)。细胞只要能从基质上脱离下来,这个时候即使是成片的(比如Calu-3细胞),吹打不超过20次后(一般10次即可),成小规模聚集(10个细胞左右),是正常的,不要试图再去延长消化时间,或者像有的同学那样吹打1h,等待单细胞悬出现。
RA-FLSs Cells;背景说明:关节;成纤维 Cells;传代方法:1:2-1:3传代;每周换液2-3次。;生长特性:贴壁;形态特性:详见产品说明书;相关产品有:HCC0044细胞、ZR75-30细胞、L6细胞
CHOS Cells;背景说明:详见相关文献介绍;传代方法:1:2-1:3传代;每周换液2-3次。;生长特性:贴壁或悬浮,详见产品说明书部分;形态特性:详见产品说明书;相关产品有:MCF 7细胞、HBE 135-E6E7细胞、TYKnu细胞
H9c2 Cells;背景说明:详见相关文献介绍;传代方法:1:2传代;生长特性:贴壁生长 ;形态特性:详见产品说明书;相关产品有:DU_145细胞、HOS(TE85)细胞、FOX-NY细胞
VMM5 Cells;背景说明:黑色素瘤;神经节转移;男性;传代方法:1:2-1:3传代;每周换液2-3次。;生长特性:贴壁;形态特性:详见产品说明书;相关产品有:NuTu 19细胞、HCC9724细胞、EM3细胞
OCI-Ly8 Cells;背景说明:弥漫大B淋巴瘤;传代方法:1:2-1:3传代;每周换液2-3次。;生长特性:悬浮;形态特性:详见产品说明书;相关产品有:FRTL5细胞、LCMS细胞、NCI-H69细胞
PLA801D Cells;背景说明:这是一株高转移肺癌。;传代方法:消化3-5分钟,1:2,3天内可长满;生长特性:贴壁生长;形态特性:上皮样;相关产品有:P388-D1细胞、LU-65M细胞、LTEP-a-2细胞
NS1/1-Ag4.1 Cells;背景说明:这是P3X63Ag8(ATCCTIB-9)的一个不分泌克隆。Kappa链合成了但不分泌。能抗0.1mM8-氮杂鸟嘌呤但不能在HAT培养基中生长。据报道它是由于缺失了3-酮类固醇还原酶活性的胆固醇营养缺陷型。检测表明肢骨发育畸形病毒(鼠痘)阴性。;传代方法:1:2传代,3天内可长满。;生长特性:悬浮生长;形态特性:淋巴母细胞;相关产品有:JEG-3细胞、SW 839细胞、MCF-7ADR细胞
JF305 Cells;背景说明:胰腺癌;传代方法:1:2-1:3传代;每周换液2-3次。;生长特性:贴壁;形态特性:详见产品说明书;相关产品有:HT115细胞、HT22细胞、HTh74细胞
PA317 Cells;背景说明:胚胎;成纤维细胞;NIH Swiss;传代方法:1:2-1:3传代;每周换液2-3次。;生长特性:贴壁;形态特性:详见产品说明书;相关产品有:R 2 C细胞、Panc04.03细胞、H3396细胞
H2227 Cells;背景说明:详见相关文献介绍;传代方法:1:2-1:4传代;每周换液2次。;生长特性:该细胞既有悬浮生长,又有贴壁生长;形态特性:上皮细胞;相关产品有:ARPE19细胞、TW01细胞、COLO 741细胞
Panc 05.04 Cells;背景说明:详见相关文献介绍;传代方法:1:2传代;生长特性:贴壁生长;形态特性:上皮样;相关产品有:KMST6细胞、CMEC/D3细胞、NUGC-4细胞
OCI Ly3 Cells;背景说明:弥漫大B淋巴瘤;男性;传代方法:1:2-1:3传代;每周换液2-3次。;生长特性:悬浮;形态特性:详见产品说明书;相关产品有:Tokyo Medical and Dental university 8细胞、MDAMB436细胞、CESS细胞
hMSC-BM Cells;背景说明:详见相关文献介绍;传代方法:1:2-1:3传代;每周换液2-3次。;生长特性:贴壁或悬浮,详见产品说明书部分;形态特性:详见产品说明书;相关产品有:YT细胞、FAO-1细胞、NCIH1755细胞
BNL-HCC Cells;背景说明:肝;上皮细胞;BALB/c;传代方法:1:2-1:3传代;每周换液2-3次。;生长特性:贴壁;形态特性:详见产品说明书;相关产品有:Walker 256细胞、Vero细胞、QGY细胞
HT Cells;背景说明:详见相关文献介绍;传代方法:每2-3天换液;生长特性:悬浮生长 ;形态特性:淋巴母细胞样;相关产品有:WM35细胞、MIHA细胞、SNU1细胞
HPAF Cells;背景说明:详见相关文献介绍;传代方法:1:2-1:3传代;每周换液2-3次。;生长特性:贴壁或悬浮,详见产品说明书部分;形态特性:详见产品说明书;相关产品有:Hs 729细胞、SKMEL-24细胞、SNK1细胞
KCL22S Cells;背景说明:详见相关文献介绍;传代方法:1:2传代;生长特性:悬浮;形态特性:详见产品说明书;相关产品有:Stanford University-Diffuse Histiocytic Lymphoma-10细胞、SHG-44细胞、SK UT 1细胞
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Abcam A-549 MBNL1 KO Cells(提供STR鉴定图谱)
Abcam U2OS QKI KO Cells(提供STR鉴定图谱)
BayGenomics ES cell line CSG246 Cells(提供STR鉴定图谱)
BayGenomics ES cell line RRU049 Cells(提供STR鉴定图谱)
BayGenomics ES cell line YTC623 Cells(提供STR鉴定图谱)
CHO W3-7 Cells(提供STR鉴定图谱)
DA02429 Cells(提供STR鉴定图谱)
EC-Esrratm1Dgen Cells(提供STR鉴定图谱)
GM04937 Cells(提供STR鉴定图谱)
KM12 Cells;背景说明:详见相关文献介绍;传代方法:1:2传代;生长特性:贴壁生长;形态特性:上皮样;相关产品有:Farage Original Line细胞、NCI-H165细胞、SW-839细胞
NCIH2347 Cells;背景说明:详见相关文献介绍;传代方法:1:2-1:6传代,每周2-3次。;生长特性:贴壁生长;形态特性:上皮样;相关产品有:SW-48细胞、MFE296细胞、KOPN8细胞
NUGC4 Cells;背景说明:胃癌;女性;传代方法:1:2-1:3传代;每周换液2-3次。;生长特性:半贴壁;形态特性:详见产品说明书;相关产品有:HCEpiC细胞、IGROV-1细胞、TGW-nu-1细胞
IEC6 Cells;背景说明:详见相关文献介绍;传代方法:1:2传代;生长特性:贴壁生长;形态特性:上皮细胞样;相关产品有:HEK 293-EBNA细胞、COR-L23细胞、ME-180细胞
GM03573A Cells;背景说明:这是P3X63Ag8(ATCCTIB-9)的一个不分泌克隆。Kappa链合成了但不分泌。能抗0.1mM8-氮杂鸟嘌呤但不能在HAT培养基中生长。据报道它是由于缺失了3-酮类固醇还原酶活性的胆固醇营养缺陷型。检测表明肢骨发育畸形病毒(鼠痘)阴性。;传代方法:1:2传代,3天内可长满。;生长特性:悬浮生长;形态特性:淋巴母细胞;相关产品有:Panc 5.04细胞、NOMO1细胞、LLC-PK1细胞
HT 115 Cells;背景说明:结肠癌;传代方法:1:2-1:3传代;每周换液2-3次。;生长特性:贴壁;形态特性:详见产品说明书;相关产品有:SBC5细胞、H2171细胞、KYSE520细胞
8H11 [Mouse hybridoma against human IL22RA1] Cells(提供STR鉴定图谱)
RCS Cells;背景说明:软骨肉瘤;SD;传代方法:1:2-1:3传代;每周换液2-3次。;生长特性:贴壁;形态特性:详见产品说明书;相关产品有:A375细胞、GM17219细胞、PANC3.27细胞
AtT 20 Cells;背景说明:详见相关文献介绍;传代方法:1:2-1:3传代;每周换液2-3次。;生长特性:贴壁或悬浮,详见产品说明书部分;形态特性:详见产品说明书;相关产品有:HN13细胞、A549/ATCC细胞、MCF7/WT细胞
G-361 Cells;背景说明:详见相关文献介绍;传代方法:1:2-1:4传代,2-3天换液1次。;生长特性:贴壁生长;形态特性:上皮细胞;相关产品有:U-118MG细胞、U-87MG细胞、HCMEC细胞
F9 Cells;背景说明:详见相关文献介绍;传代方法:1:2-1:3传代;每周换液2-3次。;生长特性:贴壁或悬浮,详见产品说明书部分;形态特性:详见产品说明书;相关产品有:Roswell Park Memorial Institute 8402细胞、NCI-H2052细胞、A-1847细胞
H-510 Cells;背景说明:详见相关文献介绍;传代方法:1:3-1:8传代;每周换液2次。;生长特性:混合生长;形态特性:上皮细胞样;相关产品有:LC-2 ad细胞、FHL124细胞、SK-BR3细胞
V79-4 Cells;背景说明:详见相关文献介绍;传代方法:1:2-1:3传代;每周换液2-3次。;生长特性:贴壁或悬浮,详见产品说明书部分;形态特性:详见产品说明书;相关产品有:LAN5细胞、Tissue Culture-1细胞、HPAFII细胞
OVMANA Cells;背景说明:详见相关文献介绍;传代方法:5 x 10^4 cells/ml;生长特性:贴壁生长;形态特性:上皮细胞;相关产品有:SK-MEL-5细胞、LIXC-002细胞、PA317细胞
D-283 Med Cells;背景说明:详见相关文献介绍;传代方法:每周换液2-3次。;生长特性:悬浮细胞的多细胞聚集体,和一些贴壁 Cells;形态特性:上皮细胞;相关产品有:KALS1细胞、HCC1954 BL细胞、RA-FLSs细胞
GM21893 Cells(提供STR鉴定图谱)
HAP1 MARK4 (-) 1 Cells(提供STR鉴定图谱)
H548 Cells;背景说明:详见相关文献介绍;传代方法:1:2-1:3传代;每周换液2-3次。;生长特性:贴壁或悬浮,详见产品说明书部分;形态特性:详见产品说明书;相关产品有:Jurkat, Clone E6-1细胞、CCD18Co细胞、TSCCa细胞
MKN28 Cells;背景说明:详见相关文献介绍;传代方法:1:2-1:3传代;每周换液2-3次。;生长特性:贴壁或悬浮,详见产品说明书部分;形态特性:详见产品说明书;相关产品有:TOV112细胞、D324细胞、SKLU1细胞
Ca Ski Cells;背景说明:这株细胞是从小肠肠系膜转移灶的细胞中建立的。 据报道,它含有完整的HPV-16(每个细胞大约600个拷贝)和HPV-18相关序列。;传代方法:1:2传代;生长特性:贴壁生长;形态特性:上皮细胞样;相关产品有:Tb 1 Lu (NBL-12)细胞、University of Michigan-Urothelial Carcinoma-14细胞、D-407细胞
H184A1 Cells;背景说明:乳腺上皮细胞;女性;传代方法:1:2-1:3传代;每周换液2-3次。;生长特性:贴壁;形态特性:详见产品说明书;相关产品有:28SC细胞、Baby Hamster Kidney 21细胞、Hs888 Lu细胞
A-172 MG Cells;背景说明:详见相关文献介绍;传代方法:1:2-1:3传代;每周换液2-3次。;生长特性:贴壁或悬浮,详见产品说明书部分;形态特性:详见产品说明书;相关产品有:HCC-827细胞、COLO-824细胞、MEC1细胞
SK-OV-433 Cells;背景说明:卵巢癌;女性;传代方法:1:2-1:3传代;每周换液2-3次。;生长特性:贴壁;形态特性:详见产品说明书;相关产品有:KYSE-450细胞、WIL2S细胞、DMS 273细胞
HCC1171 Cells;背景说明:详见相关文献介绍;传代方法:1:2-1:3传代;每周换液2-3次。;生长特性:贴壁或悬浮,详见产品说明书部分;形态特性:详见产品说明书;相关产品有:Wistar Institute-38细胞、MiaPaCa-2细胞、DSL-6A/C1细胞
L-5178-Y Cells;背景说明:详见相关文献介绍;传代方法:1:2-1:3传代;每周换液2-3次。;生长特性:贴壁或悬浮,详见产品说明书部分;形态特性:详见产品说明书;相关产品有:Clone 929细胞、MD Anderson-Metastatic Breast-330细胞、GM03569D细胞
HPSI0616i-bury_5 Cells(提供STR鉴定图谱)
KAUSTi008-B Cells(提供STR鉴定图谱)
MEQC2 Cells(提供STR鉴定图谱)
NHIK 3016 Cells(提供STR鉴定图谱)
Raji HLA-A*03:01 Cells(提供STR鉴定图谱)
Ubigene A-549 MOB1A KO Cells(提供STR鉴定图谱)
UT-SCC-15 Cells(提供STR鉴定图谱)
HAP1 TRAF3IP2 (-) 3 Cells(提供STR鉴定图谱)
NCIH1993 Cells;背景说明:详见相关文献介绍;传代方法:1:2—1:6传代;生长特性:贴壁或悬浮,详见产品说明书部分;形态特性:详见产品说明书;相关产品有:3AA细胞、KPL4细胞、HUV-EC-C细胞
Pro-5WgaRI3C Cells;背景说明:详见相关文献介绍;传代方法:1:2-1:3传代;每周换液2-3次。;生长特性:贴壁或悬浮,详见产品说明书部分;形态特性:详见产品说明书;相关产品有:NCI-SNU-423细胞、NCIH69细胞、Hs 934.T细胞
MOVAS Cells;背景说明:主动脉平滑肌;SV40转化;C57BL/6;传代方法:1:2-1:3传代;每周换液2-3次。;生长特性:贴壁;形态特性:详见产品说明书;相关产品有:SUM159PT细胞、KHYG细胞、M-O7e细胞
HT55 Cells;背景说明:详见相关文献介绍;传代方法:1:2-1:3传代;每周换液2-3次。;生长特性:贴壁生长;形态特性:上皮样;相关产品有:SUM 159PT细胞、UM-UC-14细胞、ML-2细胞
NIH-3T3 Cells;背景说明:详见相关文献介绍;传代方法:1:2-1:3传代;每周换液2-3次。;生长特性:贴壁或悬浮,详见产品说明书部分;形态特性:详见产品说明书;相关产品有:TM-4细胞、CAL-85-1细胞、HA1800细胞
Vx2 Cells;背景说明:表皮鳞癌;传代方法:1:2-1:3传代;每周换液2-3次。;生长特性:贴壁;形态特性:详见产品说明书;相关产品有:697细胞、NCIH2196细胞、Psi-2 DAP细胞
WB F344 Cells;背景说明:详见相关文献介绍;传代方法:1:2传代;生长特性:贴壁生长;形态特性:上皮样;相关产品有:T-HSC细胞、LS-174T细胞、RPMI8226/S细胞
HN4 Cells;背景说明:喉鳞癌;男性;传代方法:1:2-1:3传代;每周换液2-3次。;生长特性:贴壁;形态特性:详见产品说明书;相关产品有:LA4细胞、MDA361细胞、H-1618细胞
LA-N-6(OAN) Cells;背景说明:详见相关文献介绍;传代方法:1:2-1:3传代;每周换液2-3次。;生长特性:贴壁或悬浮,详见产品说明书部分;形态特性:详见产品说明书;相关产品有:Mel RM细胞、MHCC97H细胞、NG 108-15细胞
WSU-DLCL(2) Cells;背景说明:弥漫大B淋巴瘤;男性;传代方法:1:2-1:3传代;每周换液2-3次。;生长特性:悬浮;形态特性:详见产品说明书;相关产品有:MDCK细胞、V 79-4细胞、HCV 29细胞
VP 267 Cells;背景说明:详见相关文献介绍;传代方法:1:2-1:3传代;每周换液2-3次。;生长特性:贴壁或悬浮,详见产品说明书部分;形态特性:详见产品说明书;相关产品有:Statens Seruminstitut Rabbit Cornea细胞、ELD-1细胞、GM03190细胞
Walker-Ca.256 Cells;背景说明:乳腺癌;雌性;传代方法:1:2-1:3传代;每周换液2-3次。;生长特性:贴壁;形态特性:详见产品说明书;相关产品有:Tu 177细胞、WSU-DLCL(2)细胞、KNS42细胞
DI TNC-1 Cells;背景说明:详见相关文献介绍;传代方法:1:2传代;生长特性:贴壁生长;形态特性:成纤维母细胞样;相关产品有:MXI细胞、KP-4细胞、SW948细胞
UK Pan-1 Cells;背景说明:详见相关文献介绍;传代方法:1:2-1:3传代;每周换液2-3次。;生长特性:贴壁或悬浮,详见产品说明书部分;形态特性:详见产品说明书;相关产品有:HPMEC细胞、DAN-G细胞、RBE4细胞
ES-2 Cells;背景说明:ES-2细胞系源于一位47岁黑人女性的临床卵巢透明细胞癌手术标本。该细胞对中低剂量的阿霉素,顺铂,双乙基亚硝脲,表鬼臼毒素吡喃葡糖苷等化疗药物有一定耐药性。该细胞少量表达糖蛋白P。;传代方法:1:3传代,2-3天传一次;生长特性:贴壁生长;形态特性:上皮样;相关产品有:OCI/AML-2细胞、GMK,BSC-1细胞、TOV-112细胞
ST90/MHT14 Cells(提供STR鉴定图谱)
Hs-281-T Cells;背景说明:详见相关文献介绍;传代方法:1:2传代,每周换液2-3次。;生长特性:贴壁生长;形态特性:成纤维细胞;相关产品有:NPC-TW01细胞、OVCA432_Bast细胞、HT 1080细胞
KYSE180 Cells;背景说明:食管鳞癌;男性;传代方法:1:2-1:3传代;每周换液2-3次。;生长特性:贴壁;形态特性:详见产品说明书;相关产品有:RSC-96细胞、SU4细胞、JROECL21细胞
CHO Lec1 Cells;背景说明:详见相关文献介绍;传代方法:1:2-1:3传代;每周换液2-3次。;生长特性:贴壁或悬浮,详见产品说明书部分;形态特性:详见产品说明书;相关产品有:Caco-2/BBe细胞、Adult Retinal Pigment Epithelial cell line-19细胞、A375S2细胞
J 82 Cells;背景说明:电子显微镜下未观察到桥粒但观察到数目不同的粗面内质网和突出微丝。 含ras (H-ras)癌基因。;传代方法:1:2传代;生长特性:贴壁生长;形态特性:上皮细胞样;相关产品有:RK-13细胞、MNNG-HOS (TE 85, clone F-5)细胞、REC细胞
RSC-96 Cells;背景说明:雪旺细胞;自发永生;传代方法:1:2-1:3传代;每周换液2-3次。;生长特性:贴壁;形态特性:详见产品说明书;相关产品有:SKRC-52细胞、769-P细胞、SUM 52PE细胞
MARC145 Cells;背景说明:胚肾;自发永生;传代方法:1:2-1:3传代;每周换液2-3次。;生长特性:贴壁;形态特性:详见产品说明书;相关产品有:FRH-0201细胞、IPLB-SF-21-AE细胞、HCC2157细胞
F98 Cells;背景说明:恶性胶质瘤;雌性;Fischer大鼠;传代方法:1:2-1:3传代;每周换液2-3次。;生长特性:贴壁;形态特性:详见产品说明书;相关产品有:MC-CAR细胞、YES 2细胞、YAC-1细胞
PK136 Cells;背景说明:详见相关文献介绍;传代方法:1:2-1:3传代;每周换液2-3次。;生长特性:贴壁或悬浮,详见产品说明书部分;形态特性:详见产品说明书;相关产品有:NFS60细胞、Vero-76细胞、Institute for Medical Research-90细胞
RPE1-hTERT Cells;背景说明:视网膜色素上皮;hTERT永生;女性;传代方法:1:2-1:3传代;每周换液2-3次。;生长特性:贴壁;形态特性:详见产品说明书;相关产品有:H1993细胞、FRTL 5细胞、A2780S细胞
SG231 Cells;背景说明:肝内胆管癌;男性;传代方法:1:2-1:3传代;每周换液2-3次。;生长特性:贴壁;形态特性:详见产品说明书;相关产品有:K7M2细胞、BCP1细胞、HuH7细胞
MM1S Cells;背景说明:详见相关文献介绍;传代方法:1:2-1:4传代,2-3天换液1次。;生长特性:混合生长;形态特性:淋巴母细胞样;相关产品有:L-1210细胞、KYSE-70细胞、KM-12细胞
SUM159 Cells;背景说明:乳腺癌;女性;传代方法:1:2-1:3传代;每周换液2-3次。;生长特性:贴壁;形态特性:详见产品说明书;相关产品有:DH-82细胞、NCIH650细胞、HSC/mHSC细胞
IOSE-80 Cells;背景说明:卵巢;上皮细胞;SV40转化;女性;传代方法:1:2-1:3传代;每周换液2-3次。;生长特性:贴壁;形态特性:详见产品说明书;相关产品有:CAL78细胞、HEP3B2细胞、Hs888T细胞
MM.1S Cells;背景说明:详见相关文献介绍;传代方法:1:2-1:4传代,2-3天换液1次。;生长特性:混合生长;形态特性:淋巴母细胞样;相关产品有:HG2855细胞、Ca-Ski细胞、TCCSUP细胞
786-O[786-0]人肾透明细胞腺癌复苏细胞保种中心|带STR证书
BayGenomics ES cell line CSI772 Cells(提供STR鉴定图谱)
BayGenomics ES cell line SYA125 Cells(提供STR鉴定图谱)
CB11 Cells(提供STR鉴定图谱)
Luc90 Cells(提供STR鉴定图谱)
RAW 264.7 Sting1 R330A/R333A Cells(提供STR鉴定图谱)
RNK-0 Cells(提供STR鉴定图谱)
" "PubMed=2041050; DOI=10.1093/jnci/83.11.757
Monks A., Scudiero D.A., Skehan P., Shoemaker R.H., Paull K.D., Vistica D.T., Hose C.D., Langley J., Cronise P., Vaigro-Wolff A., Gray-Goodrich M., Campbell H., Mayo J.G., Boyd M.R.
Feasibility of a high-flux anticancer drug screen using a diverse panel of cultured human tumor cell lines.
J. Natl. Cancer Inst. 83:757-766(1991)
PubMed=7915601; DOI=10.1038/ng0594-85
Gnarra J.R., Tory K., Weng Y.-K., Schmidt L.S., Wei M.H., Li H., Latif F., Liu S., Chen F., Duh F.-M., Lubensky I.A., Duan D.-S.R., Florence C., Pozzatti R., Walther M.M., Bander N.H., Grossman H.B., Brauch H., Pomer S., Brooks J.D., Isaacs W.B., Lerman M.I., Zbar B., Linehan W.M.
Mutations of the VHL tumour suppressor gene in renal carcinoma.
Nat. Genet. 7:85-90(1994)
PubMed=10700174; DOI=10.1038/73432
Ross D.T., Scherf U., Eisen M.B., Perou C.M., Rees C., Spellman P.T., Iyer V.R., Jeffrey S.S., van de Rijn M., Waltham M.C., Pergamenschikov A., Lee J.C.F., Lashkari D., Shalon D., Myers T.G., Weinstein J.N., Botstein D., Brown P.O.
Systematic variation in gene expression patterns in human cancer cell lines.
Nat. Genet. 24:227-235(2000)
PubMed=15585611; DOI=10.1158/1078-0432.CCR-04-0072
Tykodi S.S., Warren E.H., Thompson J.A., Riddell S.R., Childs R.W., Otterud B.E., Leppert M.F., Storb R., Sandmaier B.M.
Allogeneic hematopoietic cell transplantation for metastatic renal cell carcinoma after nonmyeloablative conditioning: toxicity, clinical response, and immunological response to minor histocompatibility antigens.
Clin. Cancer Res. 10:7799-7811(2004)
PubMed=15748285; DOI=10.1186/1479-5876-3-11; PMCID=PMC555742
Adams S., Robbins F.-M., Chen D., Wagage D., Holbeck S.L., Morse H.C. 3rd, Stroncek D., Marincola F.M.
HLA class I and II genotype of the NCI-60 cell lines.
J. Transl. Med. 3:11.1-11.8(2005)
PubMed=17088437; DOI=10.1158/1535-7163.MCT-06-0433; PMCID=PMC2705832
Ikediobi O.N., Davies H.R., Bignell G.R., Edkins S., Stevens C., O'Meara S., Santarius T., Avis T., Barthorpe S., Brackenbury L., Buck G., Butler A.P., Clements J., Cole J., Dicks E., Forbes S., Gray K., Halliday K., Harrison R., Hills K., Hinton J., Hunter C., Jenkinson A., Jones D., Kosmidou V., Lugg R., Menzies A., Miroo T., Parker A., Perry J., Raine K.M., Richardson D., Shepherd R., Small A., Smith R., Solomon H., Stephens P.J., Teague J.W., Tofts C., Varian J., Webb T., West S., Widaa S., Yates A., Reinhold W.C., Weinstein J.N., Stratton M.R., Futreal P.A., Wooster R.
Mutation analysis of 24 known cancer genes in the NCI-60 cell line set.
Mol. Cancer Ther. 5:2606-2612(2006)
PubMed=19372543; DOI=10.1158/1535-7163.MCT-08-0921; PMCID=PMC4020356
Lorenzi P.L., Reinhold W.C., Varma S., Hutchinson A.A., Pommier Y., Chanock S.J., Weinstein J.N.
DNA fingerprinting of the NCI-60 cell line panel.
Mol. Cancer Ther. 8:713-724(2009)
PubMed=20164919; DOI=10.1038/nature08768; PMCID=PMC3145113
Bignell G.R., Greenman C.D., Davies H.R., Butler A.P., Edkins S., Andrews J.M., Buck G., Chen L., Beare D., Latimer C., Widaa S., Hinton J., Fahey C., Fu B.-Y., Swamy S., Dalgliesh G.L., Teh B.T., Deloukas P., Yang F.-T., Campbell P.J., Futreal P.A., Stratton M.R.
Signatures of mutation and selection in the cancer genome.
Nature 463:893-898(2010)
PubMed=22068913; DOI=10.1073/pnas.1111840108; PMCID=PMC3219108
Gillet J.-P., Calcagno A.M., Varma S., Marino M., Green L.J., Vora M.I., Patel C., Orina J.N., Eliseeva T.A., Singal V., Padmanabhan R., Davidson B., Ganapathi R., Sood A.K., Rueda B.R., Ambudkar S.V., Gottesman M.M.
Redefining the relevance of established cancer cell lines to the study of mechanisms of clinical anti-cancer drug resistance.
Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 108:18708-18713(2011)
PubMed=22185343; DOI=10.1186/1471-2407-11-523; PMCID=PMC3292516
Matsuura K., Nakada C., Mashio M., Narimatsu T., Yoshimoto T., Tanigawa M., Tsukamoto Y., Hijiya N., Takeuchi I., Nomura T., Sato F., Mimata H., Seto M., Moriyama M.
Downregulation of SAV1 plays a role in pathogenesis of high-grade clear cell renal cell carcinoma.
BMC Cancer 11:523.1-523.10(2011)
PubMed=22347499; DOI=10.1371/journal.pone.0031628; PMCID=PMC3276511
Ruan X.-Y., Kocher J.-P.A., Pommier Y., Liu H.-F., Reinhold W.C.
Mass homozygotes accumulation in the NCI-60 cancer cell lines as compared to HapMap trios, and relation to fragile site location.
PLoS ONE 7:E31628-E31628(2012)
PubMed=22384151; DOI=10.1371/journal.pone.0032096; PMCID=PMC3285665
Lee J.-S., Kim Y.K., Kim H.J., Hajar S., Tan Y.L., Kang N.-Y., Ng S.H., Yoon C.N., Chang Y.-T.
Identification of cancer cell-line origins using fluorescence image-based phenomic screening.
PLoS ONE 7:E32096-E32096(2012)
PubMed=22460905; DOI=10.1038/nature11003; PMCID=PMC3320027
Barretina J.G., Caponigro G., Stransky N., Venkatesan K., Margolin A.A., Kim S., Wilson C.J., Lehar J., Kryukov G.V., Sonkin D., Reddy A., Liu M., Murray L., Berger M.F., Monahan J.E., Morais P., Meltzer J., Korejwa A., Jane-Valbuena J., Mapa F.A., Thibault J., Bric-Furlong E., Raman P., Shipway A., Engels I.H., Cheng J., Yu G.-Y.K., Yu J.-J., Aspesi P. Jr., de Silva M., Jagtap K., Jones M.D., Wang L., Hatton C., Palescandolo E., Gupta S., Mahan S., Sougnez C., Onofrio R.C., Liefeld T., MacConaill L.E., Winckler W., Reich M., Li N.-X., Mesirov J.P., Gabriel S.B., Getz G., Ardlie K., Chan V., Myer V.E., Weber B.L., Porter J., Warmuth M., Finan P., Harris J.L., Meyerson M.L., Golub T.R., Morrissey M.P., Sellers W.R., Schlegel R., Garraway L.A.
The Cancer Cell Line Encyclopedia enables predictive modelling of anticancer drug sensitivity.
Nature 483:603-607(2012)
PubMed=22628656; DOI=10.1126/science.1218595; PMCID=PMC3526189
Jain M., Nilsson R., Sharma S., Madhusudhan N., Kitami T., Souza A.L., Kafri R., Kirschner M.W., Clish C.B., Mootha V.K.
Metabolite profiling identifies a key role for glycine in rapid cancer cell proliferation.
Science 336:1040-1044(2012)
PubMed=22949125; DOI=10.1002/ijc.27822
Pawlowski R., Muhl S.M., Sulser T., Krek W., Moch H., Schraml P.
Loss of PBRM1 expression is associated with renal cell carcinoma progression.
Int. J. Cancer 132:E11-E17(2013)
PubMed=23856246; DOI=10.1158/0008-5472.CAN-12-3342; PMCID=PMC4893961
Abaan O.D., Polley E.C., Davis S.R., Zhu Y.-L.J., Bilke S., Walker R.L., Pineda M.A., Gindin Y., Jiang Y., Reinhold W.C., Holbeck S.L., Simon R.M., Doroshow J.H., Pommier Y., Meltzer P.S.
The exomes of the NCI-60 panel: a genomic resource for cancer biology and systems pharmacology.
Cancer Res. 73:4372-4382(2013)
PubMed=23933261; DOI=10.1016/j.celrep.2013.07.018
Moghaddas Gholami A., Hahne H., Wu Z.-X., Auer F.J., Meng C., Wilhelm M., Kuster B.
Global proteome analysis of the NCI-60 cell line panel.
Cell Rep. 4:609-620(2013)
PubMed=24279929; DOI=10.1186/2049-3002-1-20; PMCID=PMC4178206
Dolfi S.C., Chan L.L.-Y., Qiu J., Tedeschi P.M., Bertino J.R., Hirshfield K.M., Oltvai Z.N., Vazquez A.
The metabolic demands of cancer cells are coupled to their size and protein synthesis rates.
Cancer Metab. 1:20.1-20.13(2013)
PubMed=24670534; DOI=10.1371/journal.pone.0092047; PMCID=PMC3966786
Varma S., Pommier Y., Sunshine M., Weinstein J.N., Reinhold W.C.
High resolution copy number variation data in the NCI-60 cancer cell lines from whole genome microarrays accessible through CellMiner.
PLoS ONE 9:E92047-E92047(2014)
PubMed=25984343; DOI=10.1038/sdata.2014.35; PMCID=PMC4432652
Cowley G.S., Weir B.A., Vazquez F., Tamayo P., Scott J.A., Rusin S., East-Seletsky A., Ali L.D., Gerath W.F.J., Pantel S.E., Lizotte P.H., Jiang G.-Z., Hsiao J., Tsherniak A., Dwinell E., Aoyama S., Okamoto M., Harrington W., Gelfand E.T., Green T.M., Tomko M.J., Gopal S., Wong T.C., Li H.-B., Howell S., Stransky N., Liefeld T., Jang D., Bistline J., Meyers B.H., Armstrong S.A., Anderson K.C., Stegmaier K., Reich M., Pellman D., Boehm J.S., Mesirov J.P., Golub T.R., Root D.E., Hahn W.C.
Parallel genome-scale loss of function screens in 216 cancer cell lines for the identification of context-specific genetic dependencies.
Sci. Data 1:140035-140035(2014)
PubMed=25485619; DOI=10.1038/nbt.3080
Klijn C., Durinck S., Stawiski E.W., Haverty P.M., Jiang Z.-S., Liu H.-B., Degenhardt J., Mayba O., Gnad F., Liu J.-F., Pau G., Reeder J., Cao Y., Mukhyala K., Selvaraj S.K., Yu M.-M., Zynda G.J., Brauer M.J., Wu T.D., Gentleman R.C., Manning G., Yauch R.L., Bourgon R., Stokoe D., Modrusan Z., Neve R.M., de Sauvage F.J., Settleman J., Seshagiri S., Zhang Z.-M.
A comprehensive transcriptional portrait of human cancer cell lines.
Nat. Biotechnol. 33:306-312(2015)
PubMed=25877200; DOI=10.1038/nature14397
Yu M., Selvaraj S.K., Liang-Chu M.M.Y., Aghajani S., Busse M., Yuan J., Lee G., Peale F.V., Klijn C., Bourgon R., Kaminker J.S., Neve R.M.
A resource for cell line authentication, annotation and quality control.
Nature 520:307-311(2015)
PubMed=25894527; DOI=10.1371/journal.pone.0121314; PMCID=PMC4404347
Bausch-Fluck D., Hofmann A., Bock T., Frei A.P., Cerciello F., Jacobs A., Moest H., Omasits U., Gundry R.L., Yoon C., Schiess R., Schmidt A., Mirkowska P., Hartlova A.S., Van Eyk J.E., Bourquin J.-P., Aebersold R., Boheler K.R., Zandstra P.W., Wollscheid B.
A mass spectrometric-derived cell surface protein atlas.
PLoS ONE 10:E0121314-E0121314(2015)
PubMed=26589293; DOI=10.1186/s13073-015-0240-5; PMCID=PMC4653878
Scholtalbers J., Boegel S., Bukur T., Byl M., Goerges S., Sorn P., Loewer M., Sahin U., Castle J.C.
TCLP: an online cancer cell line catalogue integrating HLA type, predicted neo-epitopes, virus and gene expression.
Genome Med. 7:118.1-118.7(2015)
PubMed=26972028; DOI=10.1016/j.jprot.2016.03.008
Masuishi Y., Kimura Y., Arakawa N., Hirano H.
Identification of glycosylphosphatidylinositol-anchored proteins and omega-sites using TiO2-based affinity purification followed by hydrogen fluoride treatment.
J. Proteomics 139:77-83(2016)
PubMed=27141528; DOI=10.1016/j.dib.2016.04.001; PMCID=PMC4838930
Masuishi Y., Kimura Y., Arakawa N., Hirano H.
Data for identification of GPI-anchored peptides and omega-sites in cancer cell lines.
Data Brief 7:1302-1305(2016)
PubMed=27377824; DOI=10.1038/sdata.2016.52; PMCID=PMC4932877
Mestdagh P., Lefever S., Volders P.-J., Derveaux S., Hellemans J., Vandesompele J.
Long non-coding RNA expression profiling in the NCI60 cancer cell line panel using high-throughput RT-qPCR.
Sci. Data 3:160052-160052(2016)
PubMed=27397505; DOI=10.1016/j.cell.2016.06.017; PMCID=PMC4967469
Iorio F., Knijnenburg T.A., Vis D.J., Bignell G.R., Menden M.P., Schubert M., Aben N., Goncalves E., Barthorpe S., Lightfoot H., Cokelaer T., Greninger P., van Dyk E., Chang H., de Silva H., Heyn H., Deng X.-M., Egan R.K., Liu Q.-S., Miroo T., Mitropoulos X., Richardson L., Wang J.-H., Zhang T.-H., Moran S., Sayols S., Soleimani M., Tamborero D., Lopez-Bigas N., Ross-Macdonald P., Esteller M., Gray N.S., Haber D.A., Stratton M.R., Benes C.H., Wessels L.F.A., Saez-Rodriguez J., McDermott U., Garnett M.J.
A landscape of pharmacogenomic interactions in cancer.
Cell 166:740-754(2016)
PubMed=27807467; DOI=10.1186/s13100-016-0078-4; PMCID=PMC5087121
Zampella J.G., Rodic N., Yang W.R., Huang C.R.L., Welch J., Gnanakkan V.P., Cornish T.C., Boeke J.D., Burns K.H.
A map of mobile DNA insertions in the NCI-60 human cancer cell panel.
Mob. DNA 7:20.1-20.11(2016)
PubMed=27993170; DOI=10.1186/s12943-016-0565-8; PMCID=PMC5168717
Brodaczewska K.K., Szczylik C., Fiedorowicz M., Porta C., Czarnecka A.M.
Choosing the right cell line for renal cell cancer research.
Mol. Cancer 15:83.1-83.15(2016)
PubMed=28196595; DOI=10.1016/j.ccell.2017.01.005; PMCID=PMC5501076
Li J., Zhao W., Akbani R., Liu W.-B., Ju Z.-L., Ling S.-Y., Vellano C.P., Roebuck P., Yu Q.-H., Eterovic A.K., Byers L.A., Davies M.A., Deng W.-L., Gopal Y.N.V., Chen G., von Euw E.M., Slamon D.J., Conklin D., Heymach J.V., Gazdar A.F., Minna J.D., Myers J.N., Lu Y.-L., Mills G.B., Liang H.
Characterization of human cancer cell lines by reverse-phase protein arrays.
Cancer Cell 31:225-239(2017)
PubMed=28489074; DOI=10.1038/ncomms15165; PMCID=PMC5436135
Sinha R., Winer A.G., Chevinsky M.S., Jakubowski C., Chen Y.-B., Dong Y.-Y., Tickoo S.K., Reuter V.E., Russo P., Coleman J.A., Sander C., Hsieh J.J.-D., Hakimi A.A.
Analysis of renal cancer cell lines from two major resources enables genomics-guided cell line selection.
Nat. Commun. 8:15165.1-15165.10(2017)
PubMed=30260228; DOI=10.1021/acs.jproteome.8b00538
Knott M.E., Manzi M., Zabalegui N., Salazar M.O., Puricelli L.I., Monge M.E.
Metabolic footprinting of a clear cell renal cell carcinoma in vitro model for human kidney cancer detection.
J. Proteome Res. 17:3877-3888(2018)
PubMed=30894373; DOI=10.1158/0008-5472.CAN-18-2747; PMCID=PMC6445675
Dutil J., Chen Z.-H., Monteiro A.N.A., Teer J.K., Eschrich S.A.
An interactive resource to probe genetic diversity and estimated ancestry in cancer cell lines.
Cancer Res. 79:1263-1273(2019)
PubMed=31068700; DOI=10.1038/s41586-019-1186-3; PMCID=PMC6697103
Ghandi M., Huang F.W., Jane-Valbuena J., Kryukov G.V., Lo C.C., McDonald E.R. 3rd, Barretina J.G., Gelfand E.T., Bielski C.M., Li H.-X., Hu K., Andreev-Drakhlin A.Y., Kim J., Hess J.M., Haas B.J., Aguet F., Weir B.A., Rothberg M.V., Paolella B.R., Lawrence M.S., Akbani R., Lu Y.-L., Tiv H.L., Gokhale P.C., de Weck A., Mansour A.A., Oh C., Shih J., Hadi K., Rosen Y., Bistline J., Venkatesan K., Reddy A., Sonkin D., Liu M., Lehar J., Korn J.M., Porter D.A., Jones M.D., Golji J., Caponigro G., Taylor J.E., Dunning C.M., Creech A.L., Warren A.C., McFarland J.M., Zamanighomi M., Kauffmann A., Stransky N., Imielinski M., Maruvka Y.E., Cherniack A.D., Tsherniak A., Vazquez F., Jaffe J.D., Lane A.A., Weinstock D.M., Johannessen C.M., Morrissey M.P., Stegmeier F., Schlegel R., Hahn W.C., Getz G., Mills G.B., Boehm J.S., Golub T.R., Garraway L.A., Sellers W.R.
Next-generation characterization of the Cancer Cell Line Encyclopedia.
Nature 569:503-508(2019)"