"BT-549人乳腺管癌细胞代次低|培养基|送STR图谱
传代比例：1:2-1:4(首次传代建议1:2)
生长特性：贴壁生长
公司细胞系形态漂亮、增殖倍数高、纯度高、功能性强，细胞培养就跟养孩子一个样。养孩子要喂奶，养细胞要加补液，都需要在前期补充足够的营养，初始状态的细胞或刚刚复苏的细胞还要适量加入血清或细胞因子来帮助它们的存活增殖，如果营养物质缺乏，细胞就会不生长甚至死亡。养孩子要从小培养学习，养细胞也得培养宝宝顺利生下来，你会经常抚摸他，给他看各种颜色，刺激他的五感。细胞也是一样，分离后的细胞需要使用特定的细胞因子进行活化、增殖。另外加入因子的种类、因子的浓度、加入时间、加入顺序都会影响细胞最终的结果。养孩子最怕孩子生病，养细胞最怕被污染，平时你会仔细观察宝宝是否呕吐、是否突然哭闹，猜测宝宝是否生病了。对于细胞，我们也需要时刻进行观察的，假如培养液浑浊(污染了)，则需要换液后加抗生素；假如细胞增殖不明显，形态变差，则可能是因为营养不足了，对贴壁细胞可以消化后重新用新的培养基接种并加倍加入细胞因子含量；对悬浮细胞增殖能力不强的，则不着急补液，只是先补加血清、细胞因子看是否可以好转。培养时还得全程在无菌的环境，一个小小的偏差，细胞就会死亡。
换液周期：每周2-3次
HCC2157 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：每周换液２—３次;生长特性：悬浮生长;形态特性：上皮样;相关产品有：IMR-32细胞、Panc10.05细胞、OV433细胞
H-211 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：３-４天换液１次。;生长特性：悬浮生长;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：SUM 190细胞、HT1197细胞、CEM C7细胞
H1238 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁或悬浮，详见产品说明书部分;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：Dysplastic Oral Keratinocyte细胞、PC-3M-IE8细胞、A549-Taxol细胞
BT-549人乳腺管癌细胞代次低|培养基|送STR图谱
背景信息：该细胞１９７８年由W.G.Coutinho和E.Y.Lasfargues建系，源自一位７２岁患有乳腺导管癌的白人女性，来源组织包括乳头及浸润导管。该细胞形态包括上皮样细胞及多核巨细胞，可分泌一种粘性物质。
┈订┈购(技术服务)┈热┈线：1┈3┈6┈4┈1┈9┈3┈0┈7┈9┈1【微信同号】┈Q┈Q：3┈1┈8┈0┈8┈0┈7┈3┈2┈4；
细胞培养应用于分子生物学、细胞生物学、遗传学、免疫学、肿瘤学及病毒学等领域，细胞培养是指将细胞从动物或植物体内取出，然后在适宜的人工环境中生长的过程。细胞可以在培养前直接从组织中取出并通过酶或机械方法进行解离，也可以来源于已建立的细胞系。传代培养是指当细胞生长至高密度时，将其分殖至新的培养瓶中，以维持其生长和增殖。贴壁细胞是指在培养基表面附着生长的细胞，悬浮细胞是指在培养基中悬浮生长的细胞，不依附于培养皿表面。半贴壁半悬浮细胞同时具备贴壁细胞和悬浮细胞的特点，通常在培养基中部分附着生长，部分悬浮于培养基上。
产品包装：复苏发货：T25培养瓶(一瓶)或冻存发货：1ml冻存管(两支)
来源说明：细胞主要来源ATCC、ECACC、DSMZ、RIKEN等细胞库
BT-549人乳腺管癌细胞代次低|培养基|送STR图谱
物种来源：人源、鼠源等其它物种来源
NCI-H847 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁或悬浮，详见产品说明书部分;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：Namalwa细胞、NCI-H-128细胞、IPLB-SF 21AE细胞
MD Anderson-Metastatic Breast-468 Cells;背景说明：该细胞是１９７７年由CailleauR等从一位患有转移性乳腺癌的５１岁黑人女性的胸腔积液中分离得到的。虽然供体组织的G６PD等位基因杂合，但此细胞株始终表现为G６PDA表型。P５３基因２７３位密码子存在G→A突变，从而导致Arg→His替代。每个细胞上存在１×１０６个EGF受体。;传代方法：１：２-１：４传代；２-３天换液１次;生长特性：贴壁生长;形态特性：上皮样;相关产品有：YH-13细胞、SLK细胞、NCIH1869细胞
MDA-MB 361 Cells;背景说明：该细胞源自４０岁女性乳腺癌的脑转移组织。;传代方法： １：２—１：６传代，每周换液２—３次;生长特性：松散贴壁生长;形态特性：上皮细胞样;相关产品有：Roswell Park Memorial Institute 6666细胞、HUASMC细胞、SF-126细胞
R3/1 Cells;背景说明：肺；Ⅰ 型上皮 Cells;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：JS1细胞、NK-10A细胞、HSC2细胞
┈订┈购(技术服务)┈热┈线：1┈3┈6┈4┈1┈9┈3┈0┈7┈9┈1【微信同号】┈Q┈Q：3┈1┈8┈0┈8┈0┈7┈3┈2┈4；
形态特性：上皮细胞样
贴壁细胞消化传代时通常采用两种方法：一、加入胰酶等细胞脱落后，再加培养基中止胰酶作用，离心传代；二、加入胰酶后，镜下观察待细胞始脱落时，弃胰酶，加培养分瓶。但前者太麻烦，而后者有可能对细胞施加胰酶选择，因为总是贴壁不牢的细胞先脱落，对肿瘤细胞来说，这部分细胞有可能是恶性程度较GAO的细胞亚群。一种简单的消化传代方法。加入PBS洗去血清或加入胰酶先中和血清的作用(３０s)，弃之，再加入适量胰酶作用１０s-４０s(根据细胞消化的难易程度)，弃之，这样依赖残余的胰酶就可将细胞消化单细胞。对于较难消化的细胞，可以用２%利多卡因消化５-８分钟，然后再弃去，加培养基吹打也可以，对细胞的影响不大。不用PBS也不用Hanks洗，只要把旧培养吸的干净一点，直接加酶消化应该不会有什么问题。弃培养后，用０.０４%的EDA冲洗一次，再用１/４v的０.０４%的EDA室温孵育５min，弃取大部分EDA，加入与剩余EDA等量的胰酶(预热)总体积１/１０v。消化到有细胞脱落。不过有人说EDA对细胞不HAO，有证据吗？培养的BASMC：倒掉旧培养加入少量胰酶冲一下，倒掉再加入０.１２５-０.２５%胰酶约６-１０滴或１ml(２５ml bole)消化再加入适量新培养基中和，并分瓶这种方法简单、省事；效果很HAO并且不损失细胞！
CV-1 in Origin Simian-1 Cells;背景说明：该细胞源自CV-１细胞株，经转染编码野生型T抗原、起始点缺陷突变的SV４０得到；细胞中整合有SV４０基因组完整早期区段的单个拷贝。该细胞表达T抗原，适用于需要SV４０T抗原表达的载体的转染；保留SV４０溶细胞性生长的特性；支持４０℃时温度敏感性A２０９病毒的复制；支持早期区段缺失的SV４０纯体的复制。因含有SV４０的DNA序列，该细胞需要在２级生物安全柜中操作。;传代方法：１：２传代;生长特性：贴壁生长;形态特性：成纤维细胞样;相关产品有：H-1993细胞、PG-4 (S+L-)细胞、TF-1a细胞
H446 Cells;背景说明：该细胞是１９８２年由CarneyD和GazdarAF等从一位小细胞肺癌患者的胸腔积液中建立的。细胞的原始形态并不具有小细胞肺癌特征。这个细胞株是小细胞肺癌的生化和形态学上的变种，表达神经元特有的烯醇酶和脑型肌酸激酶同工酶；左旋多巴脱羧酶、蚕素、抗利尿激素、催产素或胃泌激素释放肽未达到可检测水平。与正常细胞相比，该细胞c-mycDNA序列扩增约２０倍，RNA增加１５倍。最初传代培养基用含有５%FBS的RPMI１６４０，另外添加１０nM化可的松、０.００５mg/ml胰岛素、０.０１mg/ml转铁;传代方法：１：２传代;生长特性：贴壁/悬浮生长，混合;形态特性：上皮样;相关产品有：SUIT 2细胞、OV-CA 432细胞、SF 767细胞
SupB15WT Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２传代。３天内可长满。;生长特性：悬浮生长;形态特性：淋巴母细胞;相关产品有：H-1944细胞、IGROV 1细胞、ME 180细胞
NTera-2D1 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁或悬浮，详见产品说明书部分;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：HuH7细胞、NALM-6-M1细胞、TKB1细胞
U-343 MG Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２传代;生长特性：贴壁生长 ;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：MGH-U3 (RN)细胞、H735细胞、H1385细胞
PANC0203 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２传代;生长特性：贴壁生长;形态特性：上皮样;相关产品有：SK-BR3细胞、SNU423细胞、HeLa 229细胞
OSK-1 Cells;背景说明：诱导型多能干 Cells;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：REC-1细胞、Pro-5 Lec1.3c细胞、A-549细胞
102PT Cells;背景说明：乳腺癌；女性;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：KMH2细胞、COLO 16细胞、C2C12细胞
MHCC 97-L Cells;背景说明：来源于中山医院，生长较缓慢;传代方法：１：２传代;生长特性：贴壁生长;形态特性：上皮样;相关产品有：CT-26 WT细胞、U-2OS细胞、Colon38细胞
Hs 870.T Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２—１：３传代；每周换液２-３次;生长特性：贴壁生长;形态特性：成纤维细胞;相关产品有：RPVSMC细胞、MRC5细胞、KYSE510细胞
C81-61 Cells;背景说明：皮肤黑色素瘤；腹壁转移；女性;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：JB 6细胞、Hs 445细胞、Panc8.13细胞
H-522 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：３-１：６传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁生长;形态特性：上皮样;相关产品有：HEK-293-F细胞、HTR8/SVneo细胞、H-1703细胞
Sp2/O Cells;背景说明：该细胞是由绵羊红细胞免疫的BALB/c小鼠脾细胞和P３X６３Ag８骨髓瘤细胞融合得到的。该细胞不分泌免疫球蛋白，对２０μg/ml的８-氮鸟嘌呤有抗性，对HAT比较敏感；该细胞可以作为细胞融合时的B细胞组分用于制备杂交瘤；鼠痘病毒阴性。;传代方法：１：２传代;生长特性：悬浮生长;形态特性：淋巴母细胞样；圆形;相关产品有：X63-AG 8.653细胞、OUMS-23细胞、SCC4细胞
R1610 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁或悬浮，详见产品说明书部分;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：H510细胞、Murine Thymic Epithelial Cell line 1细胞、HUT 28细胞
hMSC-BM Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁或悬浮，详见产品说明书部分;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：YT细胞、FAO-1细胞、NCIH1755细胞
REC-1 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：３—１：６传代，２-３天换液１次;生长特性：悬浮生长 ;形态特性：淋巴母细胞样;相关产品有：NCI-H-82细胞、MDA-MB 361细胞、SY5Y细胞
DHL-8 Cells;背景说明：弥漫大B淋巴瘤；腹腔积液转移；男性;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：悬浮;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：NS-1细胞、CAL-51细胞、PTK 2细胞
30A-5 Cells(提供STR鉴定图谱)
Abcam HeLa STX17 KO Cells(提供STR鉴定图谱)
AH129-NC1 Cells(提供STR鉴定图谱)
BayGenomics ES cell line RRJ023 Cells(提供STR鉴定图谱)
BayGenomics ES cell line XJ144 Cells(提供STR鉴定图谱)
C2191 Cells(提供STR鉴定图谱)
DA00191 Cells(提供STR鉴定图谱)
DA05609 Cells(提供STR鉴定图谱)
GILM1 Cells(提供STR鉴定图谱)
UCLA SO M14 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：３传代;生长特性：混合生长;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：H-220细胞、CEF细胞、C2BBe 1细胞
BT-549人乳腺管癌细胞代次低|培养基|送STR图谱
VSC4.1 Cells;背景说明：神经元瘤;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：UCH-1细胞、KE-37细胞、118 MG细胞
BC-3H-1 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁或悬浮，详见产品说明书部分;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：H766T细胞、BALB/3T3 (clone A31)细胞、MCA 205细胞
SKNSH Cells;背景说明：SK-N-SH细胞系由J.L.Bieder建系，它与SK-N-MC所不同的是倍增时间较长且多巴胺-β-羟基酶水平较高。 SK-N-SH在细胞介导的细胞毒性试验中用作靶细胞系。;传代方法：１：２传代;生长特性：悬浮生长;形态特性：上皮细胞样;相关产品有：OVCAR 432细胞、Pfeiffer细胞、AR41P细胞
U-343 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２传代;生长特性：贴壁生长 ;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：P3HR1-BL细胞、HCCC9810细胞、786-0细胞
AU-565 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：４—１：６传代；每３-５天换一次液。;生长特性：贴壁生长;形态特性：上皮细胞;相关产品有：LCLC-103H细胞、Clone 166细胞、Panc04.03细胞
20-4-4 Cells(提供STR鉴定图谱)
AD293 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２传代;生长特性：贴壁生长;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：T-T细胞、MV4:11细胞、ID8/MOSEC细胞
SCC4 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２传代;生长特性：贴壁生长;形态特性：上皮样;相关产品有：COLO 201细胞、SMA 560细胞、Pt K2细胞
Hs 695.T Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２-１：４传代，２-３天换液１次。;生长特性：贴壁生长;形态特性：上皮细胞;相关产品有：HSC6细胞、IBRS-2细胞、CHL-11细胞
NHRF Cells;背景说明：肾；成纤维 Cells;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：D-341 Med细胞、MB 157细胞、IOSE 29细胞
SNU407 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁或悬浮，详见产品说明书部分;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：NCI-BL6细胞、SNU251细胞、OVCAR.4细胞
GDM-1 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：２-３天换液１次。;生长特性：悬浮生长;形态特性：淋巴母细胞样 ;相关产品有：MCF7-GFP细胞、B16 melanoma F10细胞、UWB1289细胞
MCM Cells;背景说明：心肌;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：P-36细胞、C3H 10T1/2细胞、MFE280细胞
PaCa2 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２传代；;生长特性：贴壁生长;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：NTera-2D1细胞、118MG细胞、OCILY19细胞
GM13413 Cells(提供STR鉴定图谱)
HAP1 FLOT1 (-) 1 Cells(提供STR鉴定图谱)
SGC7901 Cells;背景说明：１９７９年建系；这株细胞源自一位５６岁女性胃腺癌患者的淋巴结转移灶。RPMI-１６４０培养１２天，细胞开始生长，首次传代１０天；３１个月中传代１８６代。免疫抑制的ICR小鼠、乳犬皮下移植成功，家兔、乳犬眼前房移植成功；淋巴结转移，从小鼠皮下侵袭至肌层。;传代方法：１：２传代;生长特性：贴壁生长;形态特性：上皮样;相关产品有：Daoy细胞、Tokyo Medical and Dental university 8细胞、MDA-415细胞
H-196 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：４-１：６传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁生长;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：HCC941122细胞、NCIH510细胞、X63Ag8-653细胞
Fao Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁或悬浮，详见产品说明书部分;形态特性：上皮细胞;相关产品有：RPMI #8226细胞、Keio University-19-19细胞、BEL 7402细胞
HCC-1599 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：每３-４天换液;生长特性：悬浮生长;形态特性：上皮样;相关产品有：B/C3T3细胞、HBEpiC细胞、Human ErythroLeukemia细胞
Functional Liver Cell-7 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁或悬浮，详见产品说明书部分;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：OK-WT细胞、BC-3H-1细胞、CAMA1细胞
WIL2-S Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁或悬浮，详见产品说明书部分;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：COLO 824细胞、TH1细胞、HRPEpiC细胞
Porcine Kidney-13 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２—１：４传代，每周换液２—３次;生长特性：贴壁生长;形态特性：上皮细胞样;相关产品有：H-1048细胞、P3HRI细胞、HPAF II细胞
GM02131 Cells;背景说明：B淋巴细胞；EBV转化;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：悬浮;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：NCTC-3960细胞、Rat Fetal Lung-6细胞、LICR-HN6细胞
HM [Human gestational choriocarcinoma] Cells(提供STR鉴定图谱)
IRR-3T3 Cells(提供STR鉴定图谱)
MCF-7-luc-F5 Cells(提供STR鉴定图谱)
ND12921 Cells(提供STR鉴定图谱)
PPAP-10 Cells(提供STR鉴定图谱)
Ubigene HeLa TNFRSF1A KO Cells(提供STR鉴定图谱)
XPH11PV Cells(提供STR鉴定图谱)
HAP1 TMEM30A (-) 2 Cells(提供STR鉴定图谱)
NCIH1341 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：３-４天换液１次。;生长特性：悬浮生长;形态特性：圆形细胞;相关产品有：L5178-R细胞、WRL68细胞、HCC-827细胞
MB49 Cells;背景说明：膀胱癌；雄性；C５７BL/Icrfa(t);传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：HOC细胞、SF-763细胞、Mhh-Call 2细胞
87 MG Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁或悬浮，详见产品说明书部分;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：Hs888 Lu细胞、KU.812细胞、HSC-T6细胞
H-596 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：４-１：８传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁生长;形态特性：上皮样;相关产品有：H-661细胞、CAL62细胞、Tb1Lu细胞
OAW42 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁或悬浮，详见产品说明书部分;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：EAC细胞、M210B4细胞、MDA-MB-175-VII细胞
OAW42 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁或悬浮，详见产品说明书部分;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：EAC细胞、M210B4细胞、MDA-MB-175-VII细胞
HSAS3 Cells;背景说明：皮肤；成纤维 Cells;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：PE/CA-PJ-34细胞、Buffalo Rat Liver-3A细胞、HUTU80细胞
HEK-AD293 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２传代;生长特性：贴壁生长;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：KASUMI1细胞、ROS1728细胞、LA-N-5细胞
SUIT 2 Cells;背景说明：胰腺管癌；男性;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：K562/ADR细胞、P-3J细胞、SUDHL5细胞
KNS62 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：每周换液２次。;生长特性：贴壁生长;形态特性：上皮细胞;相关产品有：LLC-MK-2细胞、AML12细胞、SKNEP-1细胞
OCI AML5 Cells;背景说明：急性髓系白血病细胞；男性;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：悬浮;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：H-1693细胞、Hs-688A-T细胞、X63Ag8.653细胞
OCIAML2 Cells;背景说明：急性髓系白血病；男性;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：悬浮;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：DF1细胞、Hk-2细胞、GM00637I细胞
PanC1 Cells;背景说明：这株人胰腺癌细胞株源自于胰腺癌导管细胞，其倍增时间为５２小时。染色体研究表明，该细胞染色体众数为６３，包括３个独特标记的染色体和１个小环状染色体。该细胞的生长可被１unit/ml的左旋天冬酰胺酶抑制；能在软琼脂上生长；能在裸鼠上成瘤。;传代方法：１：２-１：４传代；每周２-３次。;生长特性：贴壁生长;形态特性：上皮样；多角形;相关产品有：TB1 Lu细胞、OLN-93细胞、M-20细胞
T24 Cells;背景说明：该细胞源自一位８１岁白人女性患者的膀胱移行细胞癌组织；来源于移行细胞癌病人的白血病和血浆对T２４和相关细胞株有细胞毒性；倍增时间为１９小时；含ras(H-ras)癌基因,表达肿瘤特有抗原。;传代方法：１：２传代;生长特性：贴壁生长;形态特性：上皮样;相关产品有：KCL22S细胞、GA-10细胞、UCLA-RO 81细胞
C-28/I2 Cells;背景说明：软骨；SV４０转化；女性;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：C-32细胞、L-5178-Y-R细胞、BNCL-2细胞
Si-TGCT-2 Cells(提供STR鉴定图谱)
SUM 52 Cells;背景说明：乳腺癌；胸腔积液转移；女性;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：MDA415细胞、SU86-86细胞、SKRC-20细胞
P3HRI Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：每２-３天换液;生长特性：悬浮生长 ;形态特性：淋巴母细胞样;相关产品有：SCL I细胞、CCF-STTG1细胞、MDST8细胞
P30/Ohkubo Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１０^５ cells/６０mm dish;生长特性：悬浮生长;形态特性：淋巴母细胞;相关产品有：OVCAR 433细胞、SUM 149细胞、CEM T4细胞
HOP-62 Cells;背景说明：肺癌；女性;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：LK2细胞、HUTU80细胞、T24细胞
GBCSD Cells;背景说明：GBC-SD 细胞株是王展明等２０００年从一位６１岁的男性低分化胆囊癌患者中建立的。 细胞的形状有多边形、纺锤形和正方形。 分泌CEA和CA１９-９。倍增时间大约为２１.４小时。 可移植到裸鼠。 生成的肿瘤与原发肿瘤相似。;传代方法：１：２传代;生长特性：贴壁生长;形态特性：上皮细胞样;相关产品有：Vx2细胞、IGROV细胞、Hs 274.T细胞
TE11 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：消化３-５分钟。１：２。３天内可长满。;生长特性：贴壁生长;形态特性：上皮样;相关产品有：Lung cancer-1/squamous细胞、OUMS-27细胞、U2OS细胞
BT-549人乳腺管癌细胞代次低|培养基|送STR图谱
T47D Cells;背景说明：浸润性导管癌；胸腔积液转移；女性;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：AR-42J细胞、Hs895T细胞、Hs888T细胞
SN12C Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：２x１０^４ cells/ml;生长特性：贴壁生长;形态特性：上皮细胞样;相关产品有：H727细胞、D283-MED细胞、TJ905细胞
293c18 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：４-１：１０传代；每周２次。;生长特性：贴壁生长;形态特性：上皮细胞样;相关产品有：NCIH23细胞、UO31细胞、BC-023细胞
P30/0HK Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１０^５ cells/６０mm dish;生长特性：悬浮生长;形态特性：淋巴母细胞;相关产品有：UMUC3细胞、RT112细胞、WRL 68细胞
Hs68 Cells;背景说明：该细胞１９６９年由Owens RB建立。;传代方法：１：２传代;生长特性：贴壁生长 ;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：DMS 114细胞、Epstein-Barr-3细胞、QGY-7701细胞
SCC-25 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：３-１：１０传代，２-３天换液１次。;生长特性：贴壁生长;形态特性：上皮细胞;相关产品有：ZR75-1细胞、HCT 8细胞、H838细胞
McA-RH 8994 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁或悬浮，详见产品说明书部分;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：GC1-SPG细胞、PL5细胞、OVCAR.5细胞
Panc-02 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２传代;生长特性：贴壁生长 ;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：A10细胞、NCI747细胞、MA-104细胞
BayGenomics ES cell line CSH440 Cells(提供STR鉴定图谱)
BayGenomics ES cell line RRY376 Cells(提供STR鉴定图谱)
BF10 Cells(提供STR鉴定图谱)
KOP Cells(提供STR鉴定图谱)
PD-L1.1 Cells(提供STR鉴定图谱)
PC12 HTT-SW2-Q73 clone 29 Cells(提供STR鉴定图谱)
" "PubMed=7902062
de la Torre M., Hao X.-Y., Larsson R., Nygren P., Tsuruo T., Mannervik B., Bergh J.
Characterization of four doxorubicin adapted human breast cancer cell lines with respect to chemotherapeutic drug sensitivity, drug resistance associated membrane proteins and glutathione transferases.
Anticancer Res. 13:1425-1430(1993)
DOI=10.1016/B978-0-12-333530-2.50009-5
Leibovitz A.
Cell lines from human breast.
(In book chapter) Atlas of human tumor cell lines; Hay R.J., Park J.-G., Gazdar A.F. (eds.); pp.161-184; Academic Press; New York; USA (1994)
PubMed=21552935; DOI=10.3892/ijo.7.5.1079
Nangia-Makker P., Thompson E., Hogan C., Ochieng J., Raz A.
Induction of tumorigenicity by galectin-3 in a nontumorigenic human breast-carcinoma cell-line.
Int. J. Oncol. 7:1079-1087(1995)
PubMed=9561029
Warfield P.R., Nangia-Makker P., Raz A., Ochieng J.
Adhesion of human breast carcinoma to extracellular matrix proteins is modulated by galectin-3.
Invasion Metastasis 17:101-112(1997)
PubMed=9671407; DOI=10.1038/sj.onc.1201814
Sweeney K.J., Swarbrick A., Sutherland R.L., Musgrove E.A.
Lack of relationship between CDK activity and G1 cyclin expression in breast cancer cells.
Oncogene 16:2865-2878(1998)
PubMed=10700174; DOI=10.1038/73432
Ross D.T., Scherf U., Eisen M.B., Perou C.M., Rees C., Spellman P.T., Iyer V.R., Jeffrey S.S., van de Rijn M., Waltham M.C., Pergamenschikov A., Lee J.C.F., Lashkari D., Shalon D., Myers T.G., Weinstein J.N., Botstein D., Brown P.O.
Systematic variation in gene expression patterns in human cancer cell lines.
Nat. Genet. 24:227-235(2000)
PubMed=10862037; DOI=10.1002/1098-2264(200007)28:3<308::AID-GCC9>3.0.CO;2-B
Kytola S., Rummukainen J., Nordgren A., Karhu R., Farnebo F., Isola J.J., Larsson C.
Chromosomal alterations in 15 breast cancer cell lines by comparative genomic hybridization and spectral karyotyping.
Genes Chromosomes Cancer 28:308-317(2000)
PubMed=10969801
Forozan F., Mahlamaki E.H., Monni O., Chen Y.-D., Veldman R., Jiang Y., Gooden G.C., Ethier S.P., Kallioniemi A.H., Kallioniemi O.-P.
Comparative genomic hybridization analysis of 38 breast cancer cell lines: a basis for interpreting complementary DNA microarray data.
Cancer Res. 60:4519-4525(2000)
PubMed=11343771; DOI=10.1016/S0165-4608(00)00387-3
Rummukainen J., Kytola S., Karhu R., Farnebo F., Larsson C., Isola J.J.
Aberrations of chromosome 8 in 16 breast cancer cell lines by comparative genomic hybridization, fluorescence in situ hybridization, and spectral karyotyping.
Cancer Genet. Cytogenet. 126:1-7(2001)
PubMed=15153330; DOI=10.1593/neo.3292; PMCID=PMC1502105
Watts G.S., Oshiro M.M., Junk D.J., Wozniak R.J., Watterson S.J., Domann F.E., Futscher B.W.
The acetyltransferase p300/CBP-associated factor is a p53 target gene in breast tumor cells.
Neoplasia 6:187-194(2004)
PubMed=15677628; DOI=10.1093/carcin/bgi032
Gorringe K.L., Chin S.-F., Pharoah P.D.P., Staines J.M., Oliveira C., Edwards P.A.W., Caldas C.
Evidence that both genetic instability and selection contribute to the accumulation of chromosome alterations in cancer.
Carcinogenesis 26:923-930(2005)
PubMed=15748285; DOI=10.1186/1479-5876-3-11; PMCID=PMC555742
Adams S., Robbins F.-M., Chen D., Wagage D., Holbeck S.L., Morse H.C. 3rd, Stroncek D., Marincola F.M.
HLA class I and II genotype of the NCI-60 cell lines.
J. Transl. Med. 3:11.1-11.8(2005)
PubMed=16397213; DOI=10.1158/0008-5472.CAN-05-2853
Elstrodt F., Hollestelle A., Nagel J.H.A., Gorin M., Wasielewski M., van den Ouweland A.M.W., Merajver S.D., Ethier S.P., Schutte M.
BRCA1 mutation analysis of 41 human breast cancer cell lines reveals three new deleterious mutants.
Cancer Res. 66:41-45(2006)
PubMed=16541312; DOI=10.1007/s10549-006-9186-z
Wasielewski M., Elstrodt F., Klijn J.G.M., Berns E.M.J.J., Schutte M.
Thirteen new p53 gene mutants identified among 41 human breast cancer cell lines.
Breast Cancer Res. Treat. 99:97-101(2006)
PubMed=17088437; DOI=10.1158/1535-7163.MCT-06-0433; PMCID=PMC2705832
Ikediobi O.N., Davies H.R., Bignell G.R., Edkins S., Stevens C., O'Meara S., Santarius T., Avis T., Barthorpe S., Brackenbury L., Buck G., Butler A.P., Clements J., Cole J., Dicks E., Forbes S., Gray K., Halliday K., Harrison R., Hills K., Hinton J., Hunter C., Jenkinson A., Jones D., Kosmidou V., Lugg R., Menzies A., Miroo T., Parker A., Perry J., Raine K.M., Richardson D., Shepherd R., Small A., Smith R., Solomon H., Stephens P.J., Teague J.W., Tofts C., Varian J., Webb T., West S., Widaa S., Yates A., Reinhold W.C., Weinstein J.N., Stratton M.R., Futreal P.A., Wooster R.
Mutation analysis of 24 known cancer genes in the NCI-60 cell line set.
Mol. Cancer Ther. 5:2606-2612(2006)
PubMed=17157791; DOI=10.1016/j.ccr.2006.10.008; PMCID=PMC2730521
Neve R.M., Chin K., Fridlyand J., Yeh J., Baehner F.L., Fevr T., Clark L., Bayani N., Coppe J.-P., Tong F., Speed T., Spellman P.T., DeVries S., Lapuk A., Wang N.J., Kuo W.-L., Stilwell J.L., Pinkel D., Albertson D.G., Waldman F.M., McCormick F., Dickson R.B., Johnson M.D., Lippman M.E., Ethier S.P., Gazdar A.F., Gray J.W.
A collection of breast cancer cell lines for the study of functionally distinct cancer subtypes.
Cancer Cell 10:515-527(2006)
PubMed=18516279; DOI=10.1016/j.molonc.2007.02.004; PMCID=PMC2391005
Kenny P.A., Lee G.Y., Myers C.A., Neve R.M., Semeiks J.R., Spellman P.T., Lorenz K., Lee E.H., Barcellos-Hoff M.H., Petersen O.W., Gray J.W., Bissell M.J.
The morphologies of breast cancer cell lines in three-dimensional assays correlate with their profiles of gene expression.
Mol. Oncol. 1:84-96(2007)
PubMed=18277095; DOI=10.4161/cbt.7.5.5712
Berglind H., Pawitan Y., Kato S., Ishioka C., Soussi T.
Analysis of p53 mutation status in human cancer cell lines: a paradigm for cell line cross-contamination.
Cancer Biol. Ther. 7:699-708(2008)
PubMed=19372543; DOI=10.1158/1535-7163.MCT-08-0921; PMCID=PMC4020356
Lorenzi P.L., Reinhold W.C., Varma S., Hutchinson A.A., Pommier Y., Chanock S.J., Weinstein J.N.
DNA fingerprinting of the NCI-60 cell line panel.
Mol. Cancer Ther. 8:713-724(2009)
PubMed=19582160; DOI=10.1371/journal.pone.0006146; PMCID=PMC2702084
Kao J., Salari K., Bocanegra M., Choi Y.-L., Girard L., Gandhi J., Kwei K.A., Hernandez-Boussard T., Wang P., Gazdar A.F., Minna J.D., Pollack J.R.
Molecular profiling of breast cancer cell lines defines relevant tumor models and provides a resource for cancer gene discovery.
PLoS ONE 4:E6146-E6146(2009)
PubMed=19727395; DOI=10.1371/journal.pone.0006888; PMCID=PMC2731225
Wadlow R.C., Wittner B.S., Finley S.A., Bergquist H., Upadhyay R., Finn S.P., Loda M., Mahmood U., Ramaswamy S.
Systems-level modeling of cancer-fibroblast interaction.
PLoS ONE 4:E6888-E6888(2009)
DOI=10.25904/1912/1434
Morrison B.J.
Breast cancer stem cells: tumourspheres and implications for therapy.
Thesis PhD (2010); Griffith University; Brisbane; Australia
PubMed=19593635; DOI=10.1007/s10549-009-0460-8
Hollestelle A., Nagel J.H.A., Smid M., Lam S., Elstrodt F., Wasielewski M., Ng S.S., French P.J., Peeters J.K., Rozendaal M.J., Riaz M., Koopman D.G., ten Hagen T.L.M., de Leeuw B.H.C.G.M., Zwarthoff E.C., Teunisse A.F.A.S., van der Spek P.J., Klijn J.G.M., Dinjens W.N.M., Ethier S.P., Clevers H.C., Jochemsen A.G., den Bakker M.A., Foekens J.A., Martens J.W.M., Schutte M.
Distinct gene mutation profiles among luminal-type and basal-type breast cancer cell lines.
Breast Cancer Res. Treat. 121:53-64(2010)
PubMed=20164919; DOI=10.1038/nature08768; PMCID=PMC3145113
Bignell G.R., Greenman C.D., Davies H.R., Butler A.P., Edkins S., Andrews J.M., Buck G., Chen L., Beare D., Latimer C., Widaa S., Hinton J., Fahey C., Fu B.-Y., Swamy S., Dalgliesh G.L., Teh B.T., Deloukas P., Yang F.-T., Campbell P.J., Futreal P.A., Stratton M.R.
Signatures of mutation and selection in the cancer genome.
Nature 463:893-898(2010)
PubMed=20215515; DOI=10.1158/0008-5472.CAN-09-3458; PMCID=PMC2881662
Rothenberg S.M., Mohapatra G., Rivera M.N., Winokur D., Greninger P., Nitta M., Sadow P.M., Sooriyakumar G., Brannigan B.W., Ulman M.J., Perera R.M., Wang R., Tam A., Ma X.-J., Erlander M., Sgroi D.C., Rocco J.W., Lingen M.W., Cohen E.E.W., Louis D.N., Settleman J., Haber D.A.
A genome-wide screen for microdeletions reveals disruption of polarity complex genes in diverse human cancers.
Cancer Res. 70:2158-2164(2010)
PubMed=20679594; DOI=10.1093/jnci/djq279; PMCID=PMC2935474
Gazdar A.F., Girard L., Lockwood W.W., Lam W.L., Minna J.D.
Lung cancer cell lines as tools for biomedical discovery and research.
J. Natl. Cancer Inst. 102:1310-1321(2010)
PubMed=21778573; DOI=10.3233/BD-2010-0307; PMCID=PMC3532890
Chavez K.J., Garimella S.V., Lipkowitz S.
Triple negative breast cancer cell lines: one tool in the search for better treatment of triple negative breast cancer.
Breast Dis. 32:35-48(2010)
PubMed=22068913; DOI=10.1073/pnas.1111840108; PMCID=PMC3219108
Gillet J.-P., Calcagno A.M., Varma S., Marino M., Green L.J., Vora M.I., Patel C., Orina J.N., Eliseeva T.A., Singal V., Padmanabhan R., Davidson B., Ganapathi R., Sood A.K., Rueda B.R., Ambudkar S.V., Gottesman M.M.
Redefining the relevance of established cancer cell lines to the study of mechanisms of clinical anti-cancer drug resistance.
Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 108:18708-18713(2011)
PubMed=22347499; DOI=10.1371/journal.pone.0031628; PMCID=PMC3276511
Ruan X.-Y., Kocher J.-P.A., Pommier Y., Liu H.-F., Reinhold W.C.
Mass homozygotes accumulation in the NCI-60 cancer cell lines as compared to HapMap trios, and relation to fragile site location.
PLoS ONE 7:E31628-E31628(2012)
PubMed=22384151; DOI=10.1371/journal.pone.0032096; PMCID=PMC3285665
Lee J.-S., Kim Y.K., Kim H.J., Hajar S., Tan Y.L., Kang N.-Y., Ng S.H., Yoon C.N., Chang Y.-T.
Identification of cancer cell-line origins using fluorescence image-based phenomic screening.
PLoS ONE 7:E32096-E32096(2012)
PubMed=22460905; DOI=10.1038/nature11003; PMCID=PMC3320027
Barretina J.G., Caponigro G., Stransky N., Venkatesan K., Margolin A.A., Kim S., Wilson C.J., Lehar J., Kryukov G.V., Sonkin D., Reddy A., Liu M., Murray L., Berger M.F., Monahan J.E., Morais P., Meltzer J., Korejwa A., Jane-Valbuena J., Mapa F.A., Thibault J., Bric-Furlong E., Raman P., Shipway A., Engels I.H., Cheng J., Yu G.-Y.K., Yu J.-J., Aspesi P. Jr., de Silva M., Jagtap K., Jones M.D., Wang L., Hatton C., Palescandolo E., Gupta S., Mahan S., Sougnez C., Onofrio R.C., Liefeld T., MacConaill L.E., Winckler W., Reich M., Li N.-X., Mesirov J.P., Gabriel S.B., Getz G., Ardlie K., Chan V., Myer V.E., Weber B.L., Porter J., Warmuth M., Finan P., Harris J.L., Meyerson M.L., Golub T.R., Morrissey M.P., Sellers W.R., Schlegel R., Garraway L.A.
The Cancer Cell Line Encyclopedia enables predictive modelling of anticancer drug sensitivity.
Nature 483:603-607(2012)
PubMed=22585861; DOI=10.1158/2159-8290.CD-11-0224; PMCID=PMC5057396
Marcotte R., Brown K.R., Suarez Saiz F.J., Sayad A., Karamboulas K., Krzyzanowski P.M., Sircoulomb F., Medrano M., Fedyshyn Y., Koh J.L.-Y., van Dyk D., Fedyshyn B., Luhova M., Brito G.C., Vizeacoumar F.J., Vizeacoumar F.S., Datti A., Kasimer D., Buzina A., Mero P., Misquitta C., Normand J., Haider M., Ketela T., Wrana J.L., Rottapel R., Neel B.G., Moffat J.
Essential gene profiles in breast, pancreatic, and ovarian cancer cells.
Cancer Discov. 2:172-189(2012)
PubMed=22628656; DOI=10.1126/science.1218595; PMCID=PMC3526189
Jain M., Nilsson R., Sharma S., Madhusudhan N., Kitami T., Souza A.L., Kafri R., Kirschner M.W., Clish C.B., Mootha V.K.
Metabolite profiling identifies a key role for glycine in rapid cancer cell proliferation.
Science 336:1040-1044(2012)
PubMed=23151021; DOI=10.1186/1471-2164-13-619; PMCID=PMC3546428
Grigoriadis A., Mackay A., Noel E., Wu P.-J., Natrajan R., Frankum J., Reis-Filho J.S., Tutt A.
Molecular characterisation of cell line models for triple-negative breast cancers.
BMC Genomics 13:619.1-619.14(2012)
PubMed=23601657; DOI=10.1186/bcr3415; PMCID=PMC3672661
Riaz M., van Jaarsveld M.T.M., Hollestelle A., Prager-van der Smissen W.J.C., Heine A.A.J., Boersma A.W.M., Liu J.-J., Helmijr J.C.A., Ozturk B., Smid M., Wiemer E.A.C., Foekens J.A., Martens J.W.M.
miRNA expression profiling of 51 human breast cancer cell lines reveals subtype and driver mutation-specific miRNAs.
Breast Cancer Res. 15:R33.1-R33.17(2013)
PubMed=23637631; DOI=10.1371/journal.pgen.1003464; PMCID=PMC3636093
Giacomini C.P., Sun S., Varma S., Shain A.H., Giacomini M.M., Balagtas J.M.S., Sweeney R.T., Lai E., Del Vecchio C.A., Forster A.D., Clarke N., Montgomery K.D., Zhu S., Wong A.J., van de Rijn M., West R.B., Pollack J.R.
Breakpoint analysis of transcriptional and genomic profiles uncovers novel gene fusions spanning multiple human cancer types.
PLoS Genet. 9:E1003464-E1003464(2013)
PubMed=23856246; DOI=10.1158/0008-5472.CAN-12-3342; PMCID=PMC4893961
Abaan O.D., Polley E.C., Davis S.R., Zhu Y.-L.J., Bilke S., Walker R.L., Pineda M.A., Gindin Y., Jiang Y., Reinhold W.C., Holbeck S.L., Simon R.M., Doroshow J.H., Pommier Y., Meltzer P.S.
The exomes of the NCI-60 panel: a genomic resource for cancer biology and systems pharmacology.
Cancer Res. 73:4372-4382(2013)
PubMed=23933261; DOI=10.1016/j.celrep.2013.07.018
Moghaddas Gholami A., Hahne H., Wu Z.-X., Auer F.J., Meng C., Wilhelm M., Kuster B.
Global proteome analysis of the NCI-60 cell line panel.
Cell Rep. 4:609-620(2013)
PubMed=24094812; DOI=10.1016/j.ccr.2013.08.020; PMCID=PMC3931310
Timmerman L.A., Holton T., Yuneva M., Louie R.J., Padro M., Daemen A., Hu M., Chan D.A., Ethier S.P., van 't Veer L.J., Polyak K., McCormick F., Gray J.W.
Glutamine sensitivity analysis identifies the xCT antiporter as a common triple-negative breast tumor therapeutic target.
Cancer Cell 24:450-465(2013)
PubMed=24162158; DOI=10.1007/s10549-013-2743-3; PMCID=PMC3832776
Prat A., Karginova O., Parker J.S., Fan C., He X.-P., Bixby L.M., Harrell J.C., Roman E., Adamo B., Troester M.A., Perou C.M.
Characterization of cell lines derived from breast cancers and normal mammary tissues for the study of the intrinsic molecular subtypes.
Breast Cancer Res. Treat. 142:237-255(2013)
PubMed=24176112; DOI=10.1186/gb-2013-14-10-r110; PMCID=PMC3937590
Daemen A., Griffith O.L., Heiser L.M., Wang N.J., Enache O.M., Sanborn Z., Pepin F., Durinck S., Korkola J.E., Griffith M., Hur J.S., Huh N., Chung J., Cope L., Fackler M.J., Umbricht C.B., Sukumar S., Seth P., Sume V.P., Jakkula L.R., Lu Y.-L., Mills G.B., Cho R.J., Collisson E.A., van 't Veer L.J., Spellman P.T., Gray J.W.
Modeling precision treatment of breast cancer.
Genome Biol. 14:R110.1-R110.14(2013)
PubMed=24279929; DOI=10.1186/2049-3002-1-20; PMCID=PMC4178206
Dolfi S.C., Chan L.L.-Y., Qiu J., Tedeschi P.M., Bertino J.R., Hirshfield K.M., Oltvai Z.N., Vazquez A.
The metabolic demands of cancer cells are coupled to their size and protein synthesis rates.
Cancer Metab. 1:20.1-20.13(2013)
PubMed=24670534; DOI=10.1371/journal.pone.0092047; PMCID=PMC3966786
Varma S., Pommier Y., Sunshine M., Weinstein J.N., Reinhold W.C.
High resolution copy number variation data in the NCI-60 cancer cell lines from whole genome microarrays accessible through CellMiner.
PLoS ONE 9:E92047-E92047(2014)
PubMed=25960936; DOI=10.4161/21624011.2014.954893; PMCID=PMC4355981
Boegel S., Lower M., Bukur T., Sahin U., Castle J.C.
A catalog of HLA type, HLA expression, and neo-epitope candidates in human cancer cell lines.
OncoImmunology 3:e954893.1-e954893.12(2014)
PubMed=25984343; DOI=10.1038/sdata.2014.35; PMCID=PMC4432652
Cowley G.S., Weir B.A., Vazquez F., Tamayo P., Scott J.A., Rusin S., East-Seletsky A., Ali L.D., Gerath W.F.J., Pantel S.E., Lizotte P.H., Jiang G.-Z., Hsiao J., Tsherniak A., Dwinell E., Aoyama S., Okamoto M., Harrington W., Gelfand E.T., Green T.M., Tomko M.J., Gopal S., Wong T.C., Li H.-B., Howell S., Stransky N., Liefeld T., Jang D., Bistline J., Meyers B.H., Armstrong S.A., Anderson K.C., Stegmaier K., Reich M., Pellman D., Boehm J.S., Mesirov J.P., Golub T.R., Root D.E., Hahn W.C.
Parallel genome-scale loss of function screens in 216 cancer cell lines for the identification of context-specific genetic dependencies.
Sci. Data 1:140035-140035(2014)
PubMed=25485619; DOI=10.1038/nbt.3080
Klijn C., Durinck S., Stawiski E.W., Haverty P.M., Jiang Z.-S., Liu H.-B., Degenhardt J., Mayba O., Gnad F., Liu J.-F., Pau G., Reeder J., Cao Y., Mukhyala K., Selvaraj S.K., Yu M.-M., Zynda G.J., Brauer M.J., Wu T.D., Gentleman R.C., Manning G., Yauch R.L., Bourgon R., Stokoe D., Modrusan Z., Neve R.M., de Sauvage F.J., Settleman J., Seshagiri S., Zhang Z.-M.
A comprehensive transcriptional portrait of human cancer cell lines.
Nat. Biotechnol. 33:306-312(2015)
PubMed=25877200; DOI=10.1038/nature14397
Yu M., Selvaraj S.K., Liang-Chu M.M.Y., Aghajani S., Busse M., Yuan J., Lee G., Peale F.V., Klijn C., Bourgon R., Kaminker J.S., Neve R.M.
A resource for cell line authentication, annotation and quality control.
Nature 520:307-311(2015)
PubMed=25892236; DOI=10.1016/j.celrep.2015.03.050; PMCID=PMC4425736
Lawrence R.T., Perez E.M., Hernandez D., Miller C.P., Haas K.M., Irie H.Y., Lee S.-I., Blau C.A., Villen J.
The proteomic landscape of triple-negative breast cancer.
Cell Rep. 11:630-644(2015)
PubMed=26589293; DOI=10.1186/s13073-015-0240-5; PMCID=PMC4653878
Scholtalbers J., Boegel S., Bukur T., Byl M., Goerges S., Sorn P., Loewer M., Sahin U., Castle J.C.
TCLP: an online cancer cell line catalogue integrating HLA type, predicted neo-epitopes, virus and gene expression.
Genome Med. 7:118.1-118.7(2015)
PubMed=27377824; DOI=10.1038/sdata.2016.52; PMCID=PMC4932877
Mestdagh P., Lefever S., Volders P.-J., Derveaux S., Hellemans J., Vandesompele J.
Long non-coding RNA expression profiling in the NCI60 cancer cell line panel using high-throughput RT-qPCR.
Sci. Data 3:160052-160052(2016)
PubMed=27397505; DOI=10.1016/j.cell.2016.06.017; PMCID=PMC4967469
Iorio F., Knijnenburg T.A., Vis D.J., Bignell G.R., Menden M.P., Schubert M., Aben N., Goncalves E., Barthorpe S., Lightfoot H., Cokelaer T., Greninger P., van Dyk E., Chang H., de Silva H., Heyn H., Deng X.-M., Egan R.K., Liu Q.-S., Miroo T., Mitropoulos X., Richardson L., Wang J.-H., Zhang T.-H., Moran S., Sayols S., Soleimani M., Tamborero D., Lopez-Bigas N., Ross-Macdonald P., Esteller M., Gray N.S., Haber D.A., Stratton M.R., Benes C.H., Wessels L.F.A., Saez-Rodriguez J., McDermott U., Garnett M.J.
A landscape of pharmacogenomic interactions in cancer.
Cell 166:740-754(2016)
PubMed=27807467; DOI=10.1186/s13100-016-0078-4; PMCID=PMC5087121
Zampella J.G., Rodic N., Yang W.R., Huang C.R.L., Welch J., Gnanakkan V.P., Cornish T.C., Boeke J.D., Burns K.H.
A map of mobile DNA insertions in the NCI-60 human cancer cell panel.
Mob. DNA 7:20.1-20.11(2016)
PubMed=28196595; DOI=10.1016/j.ccell.2017.01.005; PMCID=PMC5501076
Li J., Zhao W., Akbani R., Liu W.-B., Ju Z.-L., Ling S.-Y., Vellano C.P., Roebuck P., Yu Q.-H., Eterovic A.K., Byers L.A., Davies M.A., Deng W.-L., Gopal Y.N.V., Chen G., von Euw E.M., Slamon D.J., Conklin D., Heymach J.V., Gazdar A.F., Minna J.D., Myers J.N., Lu Y.-L., Mills G.B., Liang H.
Characterization of human cancer cell lines by reverse-phase protein arrays.
Cancer Cell 31:225-239(2017)
PubMed=28287265; DOI=10.1021/acs.jproteome.6b00470; PMCID=PMC5557415
Yen T.-Y., Bowen S., Yen R., Piryatinska A., Macher B.A., Timpe L.C.
Glycoproteins in claudin-low breast cancer cell lines have a unique expression profile.
J. Proteome Res. 16:1391-1400(2017)
PubMed=28889351; DOI=10.1007/s10549-017-4496-x
Saunus J.M., Smart C.E., Kutasovic J.R., Johnston R.L., Kalita-de Croft P., Miranda M., Rozali E.N., Vargas A.C., Reid L.E., Lorsy E., Cocciardi S., Seidens T., McCart Reed A.E., Dalley A.J., Wockner L.F., Johnson J., Sarkar D., Askarian-Amiri M.E., Simpson P.T., Khanna K.K., Chenevix-Trench G., Al-Ejeh F., Lakhani S.R.
Multidimensional phenotyping of breast cancer cell lines to guide preclinical research.
Breast Cancer Res. Treat. 167:289-301(2018)
PubMed=30613774; DOI=10.1126/sciadv.aau7314; PMCID=PMC6314821
Vande Voorde J., Ackermann T., Pfetzer N., Sumpton D., Mackay G., Kalna G., Nixon C., Blyth K., Gottlieb E., Tardito S.
Improving the metabolic fidelity of cancer models with a physiological cell culture medium.
Sci. Adv. 5:eaau7314.1-eaau7314.14(2019)
PubMed=30894373; DOI=10.1158/0008-5472.CAN-18-2747; PMCID=PMC6445675
Dutil J., Chen Z.-H., Monteiro A.N.A., Teer J.K., Eschrich S.A.
An interactive resource to probe genetic diversity and estimated ancestry in cancer cell lines.
Cancer Res. 79:1263-1273(2019)"
