中文名：T4 DNA连接酶
英文名：T4 DNA Ligase (Fast)
货号：T397964
包装：1kit
存储温度：-20°C储存
产品介绍：
产品组成
| 货号 |
组分 |
规格 |
| T397964A-1000U |
T4 DNA Ligase (Fast) (5 U/μl) |
1000U |
| T397964B-1ml |
10×T4 DNA Ligase Buffer |
1ml |
| T397964C-1ml |
50% PEG |
1ml |
|
注：1 U=1 Weiss unit
产品简介
T4 DNA Ligase(Fast) 由携带 T4 噬菌体 gene 30 的大肠杆菌产生。 该酶催化双螺旋 DNA 或 RNA 之间的 5'- 磷酸基团和 3'- 羟基之间形成磷酸二酯键。该酶在双链 DNA、RNA 或者 DNA/RNA 复合物间可修复单链缺刻 , 并且可以连接有粘性末端或者平末端的 DNA 片段，但对于单链核酸无活性，主要用于限制性内切酶酶切产物 DNA 片段克隆、基因定点突变与 PCR 产物克隆、修复双链 DNA 缺刻与线性 DNA 自环化。T4 DNA Ligase(Fast) 需要 ATP 作为辅助因子，在室温下完成粘性末端连接反应仅需 10 分钟。
酶活单位定义
37℃条件下，1 Weiss unit 的酶在 20 min 内催化 1 nmol 的 [32PPi] 转变为活性炭吸附态。1 Weiss unit 等同于约 200 个粘性末端连接反应单位（CEU），相当于在 16℃条件下，30 min 内连接 50% HindIII 消化后的 λDNA 片段。
酶活检测条件
酶活在如下反应混合物中进行测试：66 mM Tris-HCl (pH 7.6)，6.6 mM MgCl2，0.066 mM ATP，10 mM DTT，3.3 μM [32PPi]。
质量控制
核酸内切酶残留测试：37℃条件下，将 200 U 的 T4 DNA Ligase(Fast) 与 1 μg 的 pUC19 DNA 中温育 4 h，未检测出由共价闭合环状 DNA 转变为带有缺刻的 DNA。
核酸外切酶残留检测：将酶液与双链 DNA 底物在 37℃温育 16 h，通过 DNA 电泳检测双链 DNA 底物无变化。
蓝白斑测试：室温条件下，使用 30 U T4 DNA Ligase 连接 pUC57 DNA/HindIII， pUC57 DNA/PstI 或 pUC57 DNA/SmaI 消化产物 1 h，然后用 E.coli XL1- Blue 感受态细胞转化连接产物，检测到少于 1% 的白斑。
使用方法
1. DNA 插入片段连接至载体 DNA（粘性末端连接）
① 于冰上配制如下反应体系：
② 充分混匀并瞬离，22℃温育 10 min；
③ 取 1~5 μl 的连接产物用于 50 μl 化学感受态细胞的转化，或者取 1~2 μl 用于 50 μl 电转感受态细胞的转化。 注：如果连接反应产物用于电转化，应使用离心柱或者氯仿抽提清洁 DNA 代替热失活步骤。
2. DNA 插入片段连接至载体 DNA（平末端连接）
① 于冰上配制如下反应体系：
②充分混匀并瞬离，22℃温育 1 h；
③ 取 1~5 μl 的连接产物用于 50 μl 化学感受态细胞的转化，或者取 1~2 μl 用于 50 μl 电转感受态细胞的转化。 注：如果连接反应产物用于电转化，应使用离心柱或者氯仿抽提清洁 DNA 代替热失活步骤。
3. 线性 DNA 自环化
① 于冰上配制如下反应体系：
② 彻底混匀并瞬离，22℃温育 10 min；
③ 取 1~5 μl 的连接产物用于 50 μl 化学感受态细胞的转化，或者取 1~2 μl 用于 50 μl 电转感受态细胞的转化。 注：如果连接反应产物用于电转化，应使用离心柱或者氯仿抽提清洁 DNA 代替热失活步骤。
4. 接头连接 双链寡核苷酸接头经常被用于在插入片段上产生粘性末端。接头通常包含限制酶识别位点，在连接后经酶切处理产生和克隆载体匹配的粘端。有时候接头已包含与克隆载体匹配的粘端，此时无需在接头连接完成后进行插入片段的进一步处理。
① 于冰上配制如下反应体系：
② 彻底混匀并瞬离，22℃温育 10 min；
③ 在 65℃作用 10 min 或者 70℃作用 5 min，进行热失活。
注：添加 1 mM ATP 的条件下，T4 DNA Ligase(Fast) 在 CutOne™ 酶切缓冲液中具有 100% 的活力。因此，接头连接反应时可以在 CutOne™ 酶切缓冲液中进行， 以简化“接头连接 - 酶切”实验流程。具体方法为：接头连接反应完成后，先失活 T4 DNA Ligase，然后向该体系中添加 ATP 至终浓度 1 mM，再在体系中加入适量的 LightNing™ 快速内切酶，最后使用最适酶切反应温度进行温育即可。
注意事项
1. T4 DNA Ligase 在浓度高于 200 mM 的 NaCl 或 KCl 中会被强烈抑制；
2. 连接反应液添加量不应该超过感受态细胞体积的 10%，不推荐体系中加入过量的 T4 DNA Ligase；
3. 与 T4 DNA Ligase 结合的 DNA 可能会在琼脂糖凝胶中出现带移或弥散，为了避免此现象，可以在上样前对酶进行热失活，必要时加入适量的 SDS；
4. 聚乙二醇（PEG）能极大地提高平末端连接的连接效率，PEG 8000 的推荐添加量是连接体系的 5%（w/v）；
5. 电转化效率可能通过对 T4 DNA Ligase 热失活或者使用离心柱或者氯仿抽提纯化 DNA 方式来提高；
6. 转化子数目可通过延长反应时间至 1 h 而增加。
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