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鸡源性成分(Chicken)核酸检测试剂盒(荧光 PCR 法)

发布人:上海臻科生物科技有限公司

发布日期:2026/11/9 15:18:17


鸡源性成分(Chicken)核酸检测试剂盒(荧光 PCR 法)

【产品名称】

商品名称:鸡源性成分(Chicken)核酸检测试剂盒(荧光 PCR 法)

Name :Chicken derived ingredients Detection Kit (Real-Time PCR Method)

【包装规格】25T/盒、50T/盒

【预期用途】

动物源性成分广泛分布于食品、饲料、化妆品等,与人们的生活息息相关,其中食品和饲料所占的比例最 大。肉及肉制品掺假成为世界各国共同关注的热点问题,肉食品及其饲料的安全隐患直接关系到人类的安危。 近几十年来,以 PCR 技术为核心的动物源性成分检测获得了广泛应用。

本试剂盒适用于动物组织以及食品、饲料等样本中鸡源性成分的检测。

【检验原理】

本试剂盒采用 TaqMan 探针法实时荧光 PCR 技术,设计一对鸡源性成分基因保守区特异性引物,结合一条 特异性探针,用荧光 PCR技术对鸡源性成分基因保守区的 DNA 进行体外扩增检测,从而达到快速检测之目的 用于临床上对可疑感染病料的病原学诊断。

【试剂组成】

包装规格25T/盒50T/盒
Chicken 反应液500μL \times 1管500μL \times 2管
酶液25μL \times 1管50μL \times 1管
Chicken 阳性质控品250μL \times 1管250μL \times 1管
阴性质控品250μL \times 1管250μL \times 1管

说明:不同批号的试剂盒组分不可交互使用。

【储存条件及有效期】

-20℃±5℃,避光保存、运输、反复冻融次数不超过 5 次,有效期 12 个月。

【适用仪器】

ABI7500、安捷伦 MX3000P/3005P、LightCycler、Bio-Rad、Eppendorf 等系列荧光定量 PCR 检测仪。 【标本采集】

取动物组织及其制品、食品或饲料约 1g。

【保存和运输】

采集或处理好的样品在 2∘C ∼ 8∘C条件下保存应不超过 24 h;若需长期保存,应放置 −70∘C 以下保存,冻融不 超过 3 次。

【使用方法】

1. 样品处理(样本处理区)

1.1 样本前处理

对于饲料样品,按照《GB/T14699.1-2005 饲料 采样》进行采样及处理。

取动物组织及其制品、食品,手术剪剪碎混匀后取 0.5g 于研磨器中研磨,加入 1.5mL 生理盐水后继续研磨, 待匀浆后转至 1.5mL灭菌离心管中,8000rpm 离心 2min,取上清液 100μL于 1.5mL 灭菌离心管中。

1.2 核酸提取

采用核酸提取或纯化试剂(磁珠法或离心柱法)进行核酸提取,请按照试剂说明书进行操作。

2. 试剂配制(试剂准备区)

根据待检测样本总数,设所需要的 PCR 反应管管数为 N(N=样本数+1 管阴性对照+1 管阳性对照;样品每满 10 份,多配制 1 份),每测试反应体系配制如下表:

试剂Chicken 反应液酶液
用量19μL1μL

将混合好的测试反应液分装到 PCR 反应管中,20μL/管。

3. 加样(样本处理区)

将步骤 1 提取的核酸、阳性质控品、阴性质控品各取 5μL,分别加入相应的反应管中,盖好管盖,混匀, 短暂离心。

4. PCR扩增(核酸扩增区)

4.1 将待检测反应管置于荧光定量 PCR仪反应槽内;

4.2 设置好通道、样品信息,反应体系设置为 25μL;

荧光通道选择: 检测通道(Reporter Dye)FAM, 淬灭通道(Quencher Dye)NONE,ABI 系列仪器请勿选择 ROX 参比荧光,选择None 即可。

4.3 推荐循环参数设置:

步骤循环数温度时间收集荧光信号
11 cycle95°C2min否
240 cycles95°C15sec否
60°C30sec是

5. 结果分析判定

5.1 结果分析条件设定(请参照各仪器使用说明书进行设置,以分析 ABI7500 仪器为例)

反应结束后自动保存结果,根据分析后图像调节 Baseline 的 Start值、End 值以及 Threshold 值(用户可 根据实际情况自行调整,Start 值可设在 3~15、End 值可设在 5~20,使阈值线位于扩增曲线指数期,阴性 质控品的扩增曲线平直或低于阈值线),点击 Analyze 自动获得分析结果。

5.2 结果判断

阳性:检测通道 Ct 值≤35,且曲线有明显的指数增长曲线;

阴性:样本检测结果无 Ct 值,且无特异性扩增曲线;

可疑:样本检测结果 35

5.3 质控标准

阴性质控品:无特异性扩增曲线或无 Ct 值显示;

阳性质控品:扩增曲线有明显指数增长期,且 Ct 值≤32;

以上条件应同时满足,否则实验视为无效。

6. 检测方法的局限性

1.样本检测结果与样本收集、处理、运送以及保存质量有关;

2.样本提取过程中没有控制好交叉污染,会出现假阳性结果;

3.阳性对照、扩增产物泄漏,会导致假阳性结果;

4.病原体在流行过程中基因突变、重组,会导致假阴性结果;

5.不同的提取方法存在提取效率差异,会导致假阴性结果;

6.试剂运输,保存不当或试剂配制不准确引起的试剂检测效能下降,出现假阴性或定量检测不准确的结果;

7.本检测结果仅供参考,如须确诊请结合临床症状以及其他检测手段。

【注意事项】

1.所有操作严格按照说明书进行;

2.试剂盒内各种组分使用前应自然融化,完全混匀并短暂离心;

3.反应液应避光保存;

4.反应中尽量避免气泡存在,管盖需盖紧;

5.使用一次性吸头、一次性手套和各区专用工作服;

6.样本处理、试剂配制、加样需在不同区进行,以免交叉污染;

7.实验完毕后用 10%次氯酸或 75%酒精或紫外灯处理工作台和移液器;

8.试剂盒里所有物品应视为污染物对待,并按照《微生物生物医学实验室生物安全通则》进行处理。

【参考文献】

[1] 国家市场监督管理总局.GB/T 38164-2019, 常见畜禽动物源性成分检测方法 实时荧光 PCR 法[S].

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