2YR企业会员
发布人:苏州丰度蛋白生物技术有限公司
发布日期:2026/10/26 9:26:40
在肿瘤免疫和抗原呈递研究中,HLA-A*0201(人类白细胞抗原A2超型中最常见的等位基因)几乎是绕不开的靶点。无论是鉴定新抗原表位、构建四聚体检测抗原特异性T细胞,还是研究TCR-pMHC互作,研究者都需要拿到足量、正确折叠的HLA-A0201重链蛋白。但问题恰恰出在这里:很多人卡在“有蛋白”和“有功能”之间的那道坎上。
HLA-A0201属于MHC I类分子重链,由α1、α2、α3三个结构域组成,分子量约32 kDa(去糖基化后),需要与β2-微球蛋白(β2m)非共价结合,并加载约8-10个氨基酸的表位肽,才能形成稳定的三元复合物。它的天然构象依赖二硫键正确配对和糖基化修饰——这恰恰是原核表达系统的短板。
原核表达HLA-A0201的常见困境:
重链在BL21(DE3)中高效表达,但几乎全部以包涵体形式存在
包涵体溶解后复性效率低,易形成错配二硫键
即使复性成功,缺乏β2m和表位肽时重链极不稳定

HLA-A0201将内源性抗原肽呈递给CD8+ T细胞,是适应性免疫应答的核心环节。在肿瘤免疫中,新抗原能否被HLA-A0201有效呈递,直接决定T细胞能否识别并杀伤肿瘤细胞。近年火热的TCR-T疗法和肿瘤疫苗设计,都需要在体外验证候选表位与HLA-A0201的结合亲和力。此外,HLA-A0201还与自身免疫病、药物超敏反应(如阿巴卡韦)密切相关。没有高质量的重组HLA-A0201蛋白,这些研究就成了空中楼阁。
如果选择大肠杆菌表达HLA-A0201胞外域(通常为α1-α3,去除跨膜区和胞内段),需要做好以下环节:
1. 载体与菌株选择
常用pET系列载体,N端加His标签便于纯化
推荐BL21(DE3)或Rosetta(DE3)(补充稀有密码子)
诱导条件:16-18°C、0.1-0.5 mM IPTG过夜诱导,可提高可溶性比例
2. 包涵体复性
这是决定成败的步骤。经典方法为稀释复性:将溶解的包涵体缓慢加入含β2m和过量表位肽的复性缓冲液中
复性buffer通常含L-精氨酸、氧化/还原型谷胱甘肽,pH 8.0左右
复性后通过分子筛(Superdex 200)分离正确组装的异源二聚体
3. 验证复合物形成

非还原SDS-PAGE观察二硫键依赖的构象变化
ELISA或SPR检测与β2m及表位肽的结合
必要时用构象特异性抗体(如W6/32)进行验证
拿到蛋白后,抗体是验证和检测的核心工具:
Western Blot:抗His标签抗体验证重链表达;抗HLA-A抗体(如EP1395Y)检测天然构象
免疫沉淀(IP) :用抗HLA-A抗体从细胞裂解液中富集HLA-A0201-肽复合物,后续可做质谱鉴定表位肽
流式细胞术:检测细胞表面HLA-A0201表达水平,常用克隆BB7.2
ELISA:检测复性后复合物与β2m的结合活性
选择抗体时需注意:变性条件(WB)和天然条件(IP/流式)对抗体识别表位的要求不同。做IP或流式时,务必选择已验证可用于天然构象的克隆号。
| 问题 | 可能原因 | 排查思路 |
|---|---|---|
| 包涵体复性后无复合物 | β2m或肽比例不足 | 增加β2m和肽的摩尔比至3-5倍 |
| WB条带偏大 | 糖基化或标签影响 | 原核表达无糖基化,考虑截短体设计 |
| 复性后聚集严重 | 蛋白浓度过高 | 控制复性时蛋白浓度<0.1 mg/mL |
| 流式无信号 | 抗体识别变性表位 | 换用BB7.2等构象特异性克隆 |
在重组蛋白和抗体定制方面,丰度蛋白(Fedprotein)可提供HLA-A0201胞外域蛋白及配套抗体系列,其现货重组蛋白纯度经SDS-PAGE和HPLC双重验证,批间CV控制在5%以内,适合需要稳定原料的长期研究项目。
原核表达HLA-A0201并非不可行,但要有“做复合物而非做单体”的思维。如果课题对糖基化有严格要求,或需要分泌表达,真核系统(HEK293或昆虫细胞)可能更合适。但在成本可控、通量要求高的场景下——比如大规模表位筛选——原核复性路线依然是值得优先考虑的选择。关键是:别只盯着重链表达量,要看最终能拿到多少功能性复合物。
相关新闻资讯