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人弓形虫抗体(Tox Ab)试剂盒说明书

发布人:上海雅吉生物科技有限公司

发布日期:2023/3/3 10:45:18

弓形虫抗体(Tox Ab)试剂盒说明书

本试剂盒仅供研究使用。

 

96T

 

使用目的:

本试剂盒用于测定人血清、血浆及相关液体样本中弓形虫抗体(Tox Ab)表达。 验原理

本试剂盒应用双抗原夹心法测定标本中人弓形虫抗体(Tox Ab)表达。用纯化的抗原包被微孔 板,制成固相抗原,可与样品中弓形虫抗体(Tox Ab)相结合,经洗涤除去未结合的抗原和其 他成分后再与 HRP  标记的抗原结合,形成抗原-抗体-酶标抗原复合物,经过彻底洗涤后加 TMB 显色。TMB HRP 酶的催化下转化成蓝色,并在酸的作用下转化成最终的黄色。 用酶标仪 450nm 波长下测定吸光度 (OD ),与 CUTOFF 值相比较,从而判定标本中人 形虫抗体(Tox Ab)的存在与否。

试剂盒组成

弓形虫抗体(Tox Ab)试剂盒说明书

1

30 倍浓缩洗涤液

20ml×1

7

6ml×1

2

酶标试剂

6ml×1

8

性对照

0.5ml×1

3

酶标包被板

12 ×8

9

性对照

0.5ml×1

4

样品稀释

6ml×1

10

明书

1 

5

色剂 A

6ml×1

11

板膜

2

6

显色剂 B 

6ml×1/

12

密封袋

1 

本要求

1.标本采集后尽早进行提取,提取按相关文献进行,提取后应尽快进行实验。若不能 马上进行试验,可将标本放于-20℃保存,但应避免反复冻融

2.不能检测含 NaN3 样品,因 NaN3 抑制辣根过氧化物酶的 (HRP) 活性。

操作步

1.     编号:将样品对应微孔按序编号,每板应设阴性对照 2 孔、阳性对照 2 孔、空白对照 1 (空白对照孔不加样品及酶标试剂,其余各步操作相同)

 

 

2.     加样:分别在阴、阳性对照孔中加入阴性对照、阳性对照 50µl。然后在待测样品孔先 加样品稀释液 40µl,然后再加待测样品 10µl。加样将样品加于酶标板孔底部,尽量不 触及孔壁,轻轻晃动混匀,

3.     温育:用封板膜封板后置 37℃温育 30 分钟。

4.     配液:将 30 倍浓缩洗涤液用蒸馏水 30 倍稀释后备用

5.     洗涤:小心揭掉封板膜,弃去液体,甩干,每孔加满洗涤液,静置 30 秒后弃去,如此 重复 5 次,拍干

6.     加酶:每孔加入酶标试剂 50µl,空白孔除外。

7.     温育:操作同 3

弓形虫抗体(Tox Ab)试剂盒说明书

8.     洗涤:操作同 5

9.     色:每孔先加入显色剂 A50µl,再加入显色剂 B50µl,轻轻震荡混匀,37℃避光显色

10 分钟.

10.   终止:每孔终止液 50µl,终止反应 (此时蓝色立转黄色)。

11.   测定:以空白空调零,450nm 波长依序测量各孔的吸光度(OD )。  测定应在加终止

液后 15 分钟以内进行。

 

 

作程序总结:

 

 

 

计算和结果判定:

试验有效性:阳性对照孔平均值≥1.00;  阴性对照平均值≤0. 10

临界 (CUT OFF) 计算:临界值=阴性对照孔平均值+0. 15

阴性判定:样品 OD <  临界值 (CUT OFF) 者为弓形虫抗体(Tox Ab)阴性 阳性判定:样品 OD ≥  临界值 (CUT OFF) 者为弓形虫抗体(Tox Ab)阳性

注意事项

1.操作严格按照说明书进行,本试剂不同批号组分不得混用。

 

2.试剂盒从冷藏环境中取出应在室温平衡 15-30 分钟后方可使用,酶标包被板开封后如未 用完,板条应装入密封袋中保存。

3.浓洗涤液可能会有结晶析出,稀释时可在水浴中加温助溶,洗涤时不影响结果。

4 封板膜只限一次性使用,以避免交叉污染

5.底物请避光保存。

6.试验结果判定必须以酶标仪读数为准,使用双波长检测时,参考波长为 630nm

7.所有样品,洗涤液和各种废弃物都应按传染物处理。终止液为 2M 的硫酸,使用时必须 意安全。

保存条件及有效期

1.试剂盒保存:;2-8℃。

2有效期:6 个月弓形虫抗体(Tox Ab)试剂盒说明书

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