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路书领航,磁珠分选稳当当~

发布人:上海优宁维生物科技股份有限公司

发布日期:2026/5/15 11:10:07

做过细胞分选的科研人都懂,磁珠分选看似步骤简单,却总容易因为细节翻车:纯度不够、细胞回收率低、操作手忙脚乱……

路书领航员上线again,超详细磁珠分选实操指南,从试剂准备到流式验证,全程 step by step 拆解,稳稳拿下高纯度样本!

 

磁珠分选技术全流程

一、实验前准备-全套试剂耗材

 

磁珠分选-所用全套试剂耗材

二、磁珠分选步骤参考(以小鼠脾脏为例)

实验思路框架

样本来源

C57 Mouse

取材

Spleen

样本处理

通过研磨加裂红方式处理为单细胞悬液

分选目的细胞

l CD11B+Myloid髓系细胞

l F4/80 MacroPhage巨噬细胞

 

实验所用试剂耗材

产品分类

产品编号

名称

规格

Myloid髓系分选磁珠

CD11b NanoBeads, human and mouse(RUO)

1ml/2ml

巨噬细胞分选磁珠

Anti-F4/80 Nanobeads, mouse(RUO)

1ml/2ml

CD8分选试剂盒

CD8 Nanobeads, mouse(RUO)

1ml/2ml

分选器/磁铁

Starter MagSep Separator (8S)

分选柱

S Separation Columns

25个/盒

分选架

MultiStand

分选Buffer

Starter MagSep Separation Buffer

250ml

组织消化解离

Tissue Dissociation Solution

10T/25T/50T

筛网

70um细胞筛网(200目,白色,底面过滤)

50个/箱

免疫细胞预富集

percoll

100ml

10XPBS缓冲液

PBS缓冲液(10×)

500ml

1640培养基

RPMI 1640培养基(含L-谷氨酰胺,不含HEPES)

500ml

红细胞裂解液(1×)

RBC Lysis Buffer

100ml

阻断FCR非特异性染色

Mouse FcR Blocking Reagent

200T

染色缓冲液

Flow cytometry staining buffer

500ml

流式鉴定

BV711 Rat Anti-CD11b

50ug

流式鉴定

BV421 Rat Anti-Mouse F4/80

50ug

流式鉴定

BV510 Rat Anti-Mouse CD8a

50ug

流式鉴定

APC-Cy™7 Rat Anti-Mouse CD45

100ug

 

1,分选Buffer预处理:关键步骤勿省略!

 

开启超声仪,对分选 Buffer 进行超声去气约10min

去气完成后,将Buffer预冷至 2~8℃,备用

2、细胞计数&活率测定

提前制备完成单细胞悬液

取10-20μL细胞悬液,与等体积的 台盼蓝染液(4%) 混合

取适量混合液(通常10μL)加入计数仪专用的一次性计数载玻片

将载玻片插入仪器,自动分析细胞总浓度(cells/mL)、活细胞浓度和活率百分比

3、分选柱润洗及磁性标记

 

准备分选柱:选择合适的分选柱(如MS、LS、LD柱),将其置于磁性分选器上。用3 mL 缓冲液润洗柱子。

细胞计数后,300×g 离心 10min,弃上清

每 1×10⁷细胞加 90 μL 缓冲液重悬每 1×10⁷细胞:90μL 缓冲液重悬 + 10μL 磁珠,2~8℃孵育 15min

4、磁性分离

上样:将标记后的细胞悬液加载到分选柱上(未标记细胞)。

洗涤与收集:根据实验需求分管收集

阴性分选(去除非目标细胞):目标细胞未结合磁珠,会直接流穿分选柱。收集流穿液,即为富集的目标细胞。

阳性分选(直接获取目标细胞):目标细胞结合磁珠并被吸附在柱内。

缓冲液洗涤柱子 3 次,每次 3 mL,待柱内液体完全流空后再加下一次。合并所有流出液为阴性组分;将分选柱移出磁场,置于收集管上。

向柱内加入 5 mL 缓冲液,用配套柱塞快速、用力推压,洗脱磁性标记的阳性细胞

5、流式验证:分选效果金标准

取适量细胞用荧光抗体染色,上流式细胞仪检测分选纯度,这是验证分选效果的金标准。

未分选前,小鼠CD11b   

分选后,小鼠CD11b(S0K0007,用量20ul)   

分选后,小鼠CD11b(S0K0007,用量10ul)

未分选前,小鼠F4/80

分选后,小鼠F4/80(S0K0012,用量10ul)      

分选后,小鼠F4/80(S0K0012,用量5ul)

三、小优有妙计--新手避坑核心要点

1,磁珠分选实验前,分选Buffer超声去气有必要吗?

超声去气的首要目的是去除缓冲液中的溶解气体。避免缓冲液过柱时因压力变化析出气泡。在分选柱的基质中形成微小气泡。气泡易堵塞分选柱空隙,造成流速变慢甚至堵柱,还会干扰细胞结合与洗脱,降低分选纯度和细胞回收率。所以实验全程(加样、孵育、过柱)需注意不要出现气泡,有气泡需要及时吸出。

2,磁珠分选,什么时候选择阳性分选,什么时候选择阴性分选?

如果下游是功能研究,推荐优先使用阴性分选,以确保细胞功能不受分选过程的影响。

如果追求高纯度、速度快,且下游实验对细胞激活不敏感,阳性分选是更直接的选择。

对于非常稀有或复杂的细胞(如肿瘤浸润淋巴细胞),也可采用 “复合分选”策略:先阴性分选去除大量杂质(如B细胞、巨噬细胞等)进行“预富集”,再对富集后的细胞进行阳性分选,以获得超高纯度。

更多磁珠分选产品(部分List展示),欢迎选购~

分选

斯达特货号

品名

阳性分选-有柱式

CD14 Nanobeads, human(RUO)

Dead Cell Removal Set, (RUO)

CD3 Nanobeads, human(RUO)

CD8 Nanobeads, mouse(RUO)

CD11b NanoBeads, human and mouse(RUO)

CD8 Nanobeads, human(RUO)

Streptavidin Nanobeads

Anti-F4/80 Nanobeads, mouse(RUO)

CD49b Nanobeads, mouse(RUO)

阴性分选-有柱式

Mouse T Cell lsolation Kit (Column-Based)

Human NK Cell Isolation Kit (Column-Based)

Mouse CD4 T Cell lsolation Kit (Column-Based)

Mouse Naive CD8 T Cell lsolation Kit (Column-Based)

S0K1004

Human T Cell lsolation Kit (Column-Based)

阴性分选-无柱式

Mouse T Cell lsolation Kit ( Column-Free)

Mouse Naive CD8 T Cell lsolation Kit (Column-Free)

Human NK Cell lsolation Kit (Column-Free)

Human T Cell lsolation Kit (Column-Free)

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