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樱花亭的性质介绍

发布日期:2020/3/4 7:04:13

背景及概述[1-2]

樱花素(樱花亭)5,7-二羟基-4′-苄氧基黄烷酮,最初是由Asahinab从樱花树皮中分离的黄烷酮类物质。日本学者KodamaO,etal(1989年)从稻瘟菌侵染的水稻叶病斑中分离出SA,视为水稻植保素(phytoalexin:PA)。SA对稻瘟菌的孢子萌发(ED50=15)与菌丝生长(ED50=5)均有较强的抑制活性。有报导人工合成SA或SA衍生物制备医药或农药。樱花素(樱花亭)主要存在于杨柳科植物毛白杨、山杨的树皮,桦科植物岳桦Betulaermanii的树皮,无患子科植物车桑子Dodonaeaviscose的叶中,为二氢黄酮类化合物。具有抗炎活性,干扰平滑肌细胞的钙代谢而使平滑肌松弛,对小鼠耐药肿瘤细胞表达p-糖蛋白或MRP1具有有效的调节作用,对哮喘有治疗作用,因其较高的抗氧化活性,能有效对抗黑色素沉积,改善肤色暗沉,起到美白嫩肤的作用,在化妆品市场上备受青睐。目前,樱花素(樱花亭)在国内外市场未见销售,不能进行相关检测。为了满足市场需求,为国内相关机构和企业开展校准、分析评价、仲裁、产品质量控制、实验室认可、能力验证等工作提供准确、及时、可靠、可溯源的技术保障,国家标准化管理委员会批准了樱花素(樱花亭)国家标准样品的研制。同时,作为手性异构体的标准样品示范性研制,得到了质检总局的行业专项资助。

性质[1]

1)物理性质:熔点为mp151~153℃(甲醇)。旋光度[α]25D=-2.4°(c0.5,甲醇)。分子式C16H1405,理论值为C,67.13%;H,4.90%;测定值为C,67.00%;H,5.01%,测定值与理论值一致。2.2.2UV,IRUVλmax(甲醇):288,330nm。IR(KBr)解析结果见表1。

2)HRESI-MSm/z285.0764[M-H]-,与C16H13O5,的理论值(285.0763)一致。

3)NMR测定了1H-NMR,1H-1HCOSY,13CNMR,DEPT,HMQC,HMBC等数据,与文献数据一致。

4)RD甲醇/甲苯室温中获得了0.60mm×0.80mm×0.60mm无色针状晶体,经X-单晶衍射测定认为,该晶体属于单斜晶系,空间群为P21/c,晶胞参数为a=12.8531(12),b=5.7141(3),c=18.0355(12),β=97.333(8)°,V=1313.77(16)3,Z=4,Mr=286.27,μ(MoKα)=0.108mm-1,Dc=1.447g·cm-3,F(000)=600,最终的偏离因子为R=0.0350,wR=0.0859,分子内和分子间存在氢键,D构型与L构型通过分子间较强的π-π作用形成了外消旋。结构鉴定表明樱花素(樱花亭)样品的结构为DL-5,4'-二羟基-7-甲氧基二氢黄酮。

应用[3]

过体外实验证明,樱花素(樱花亭)对犬肾细胞(MDCK)的毒性较低,半数中毒浓度TC50为1709.9mg/L。樱花素(樱花亭)对犬肾细胞感染H5N1病毒具有较明显的抑制作用,半数抑制浓度IC50为10.19,治疗指数TI为(167.8),明显高于阳性对照组金刚胺烷的TI(11.02)。表明体外樱花素(樱花亭)对H5N1病毒有明显抑制作用,且毒性较低。体内樱花素(樱花亭)对H5N1感染小鼠的治疗结果表明,樱花素(樱花亭)可以延长H5N1病毒感染小鼠的生命率,特别是高、中剂量组,死亡保护率显著高于对照组;H5N1病毒感染可引起小鼠病毒性肺炎,炎性渗出使小鼠肺重量增加,肺指数值的大小可表示肺病变的严重程度。实验中樱花素(樱花亭)各剂量组均可不同程度的降低小鼠肺指数,其中高、中剂量组实验结果与对照组比较差异均有显著性。表明各剂量组对小鼠流感肺炎均有抑制作用,其200mg/kg剂量组对感染小鼠的肺炎抑制率为98.05%,死亡保护率为86.00%,优于阳性对照组金刚胺烷;小鼠的死亡保护率、延长生命率和平均肺指数与病毒对照组比较差异有显著性(P<0.05)。体外和体内实验结果均表明,樱花素(樱花亭)对H5N1病毒有明显的抑制作用,其作用效果高于阳性对照金刚烷胺,毒性低于金刚烷胺。

制备[1,3]

方法1:制备取药材4.8kg粉碎,乙醚脱脂,甲醇回流提取物以蒸馏水悬浮,石油醚脱脂后以乙酸乙酯萃取,硅胶柱色谱分离,石油醚-乙酸乙酯(5∶1)洗脱,甲醇重结晶,减压干燥,即得到高纯度的樱花素(樱花亭)2332mg。每瓶5mg密封于2mL棕色玻璃瓶中,共400瓶。

方法2:樱花素(樱花亭)5,7-二羟基-4′-苄氧基黄烷酮生物全合成方法,其合成步骤顺序为:

一、按如下顺序建立非亲和水稻无性细胞系;

(1)通过接种水稻幼穗和种胚筛选出愈伤组织出愈率高的水稻细胞系;

(2)筛选出的水稻细胞系转移到固体继代培养基增殖继代,第二轮筛选出优质无性细胞系;

(3)应用AA培养基逐渐扩大优质无性细胞系液体培养量;

二、按如下顺序进行细胞系樱花素(樱花亭)诱导合成,

(1)选择樱花素(樱花亭)合成诱导子;

(2)将樱花素(樱花亭)合成诱导子投放入步骤二的第(3)步细胞系液体培养液中诱导合成培养不少于72小时,得含樱花素(樱花亭)细胞系粗培养液;

三、水稻无性细胞系诱导合成樱花素(樱花亭)分离纯化,

(1)将含樱花素(樱花亭)诱导合成细胞系粗培养液机械破碎;

(2)加70%甲醇提取,甲醇提取液蒸馏去甲醇,得含樱花素(樱花亭)细胞系培养液提取液;

(3)用乙醇萃取步骤三的第(2)步所得含樱花素(樱花亭)细胞系培养液提取液后,蒸馏去乙醇,浓缩得含诱导合成樱花素(樱花亭)细胞系纯化培养液。

主要参考资料

[1] 樱花素(樱花亭)标准样品的研制

[2] CN200310111564.4樱花素(樱花亭)的生物合成及应用

[3] CN201310111699.4樱花素(樱花亭)及其衍生物用于制备抗H5N1病毒药物的用途

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