小鼠心肌细胞的分离
发布日期:2020/3/10 7:47:18
背景及概述[1-2]
随着“人类基因组计划”完成,功能基因组时代的到来,探索基因的功能则显得格外重要与紧迫。细胞转染与转基因小鼠则是探索基因功能的两种重要技术。为了探索心肌中功能相关基因的作用,需要获得高质量与高产量的小鼠心肌细胞。有实验为观测模拟失重小鼠心肌细胞功能的变化,须建立完善的小鼠心肌细胞分离技术,为后续的实验打下良好的基础。以往普遍采用恒压灌流的Langendorff装置分离成年大鼠心肌细胞,其分离的产量与质量不稳定,主要原因是对消化终点的判断不准确;小鼠心脏较小,且个体差异性较大,消化程度更难以掌握。近年来较多研究采用恒流灌流方法分离成年小鼠心肌细胞,可依赖灌流压力决定消化终点,但细节不甚清楚。
分离
1. 小鼠心肌细胞的分离
小鼠腹腔注射肝素(5000IU/kg),20min后行颈椎脱臼断离脊髓处死。迅速开胸摘取心脏,置含10mmol/LNaHCO3,10mmol/LHEPES,10mmol/LBDM,pH7.20~7.30的Joklik’sMEM培养液(A液)中清洗血液,清理残余肺叶与多余的脂肪组织,迅速行主动脉插管。将心脏悬挂于Langendorff灌流装置上,0号丝线扎紧主动脉于插管上。以37℃A液行恒流非循环灌流,稳定1min后,微调流速使灌流压保持在40mmHg。清洗灌流5min,换用40ml消化酶液(含0.05%胶原酶Ⅰ与0.1%BSA的A液)行循环灌流。当灌流压力降至预定值时,换成A液清洗5min。用压力传感器检测灌流压力的变化,RM6240B型多道生理信号采集与处理系统记录压力变化曲线。
2. 心肌细胞的收集与复钙
取下消化酶作用后的心脏,立刻放入细胞收集与保存液(含1%BSA的A液)中,剪去心房以及其它非心室组织。将心室肌剪成约1mm3的小块,放入离心管中用较大口径的吸管进行轻柔吹吸,直至心肌细胞完全散开。经200目尼龙网过滤。将细胞以100×g离心2min,弃上清液。加入20ml细胞收集与保存液,悬浮心肌细胞后,以100%O2进行氧合,室温下静置30min。采用分步复钙法使溶液内Ca2+浓度达到1.25mmol/L。用血球计数板计数全部细胞,以计算收获量。在固定的视野内,按体视学原则[3]计数长杆状细胞与全部细胞的数量。
存活心肌细胞百分比=(长杆状细胞数量/全部细胞数量)×100%
3. 心肌细胞收缩功能测量
吸取少量心肌细胞悬液至0.3ml容积的灌流槽内,将灌流槽置OlympusIX70倒置显微镜上,静置10min使心肌细胞贴壁。然后,采用100%氧气氧合的HEPES缓冲液行非循环灌流,HEPES缓冲液的组成为(mmol/L):132.0NaCl、4.8KCl、1.2MgCl2、10.0HEPES、10.0葡萄糖、1.8CaCl2,pH7.20。灌流速度为0.3ml/min。使用场刺激引发心肌细胞收缩,方波刺激,波宽5ms,刺激电压15V,刺激频率分别为1.0、2.0和5.0Hz。采用Edge-Detector系统(Crescent,USA)监测心肌细胞两端的缩短幅度变化,Felix软件系统(PTI,USA)采集与分析心肌细胞无负荷收缩信号。按下列公式计算心肌细胞缩短幅度:
心肌细胞缩短幅度=[(心肌细胞舒张长度-收缩末长度)/舒张长度]×100%
4. 结果
1)灌流压力的动态变化:调节灌流量,使初始灌流压稳定在40mmHg。换含胶原酶的消化液灌流后,灌流压逐渐升高,在作用大约5min后达值,然后缓慢下降(图1)。当灌流压高于30mmHg时终止消化,观测5例均只获得少量杆状心肌细胞,且大量细胞聚集成团,存活细胞小于10%;当灌流压为28mmHg时终止消化,观测6例存活细胞均大于70%;当灌流压小于25mmHg时终止消化,观测3例存活细胞波动在20~40)%范围内,且细胞明显消化过度:细胞横纹模糊,折光性差,细胞膜表面可见泡状结构,易死亡。
2)小鼠鼠龄对灌流的影响:随着小鼠鼠龄增加,灌流压力曲线的变化规律并未改变,在初始灌流压保持不变的条件下,初始灌流流速增加,酶消化时间延长(表1)。
3)心肌细胞收获量
每个心脏分离细胞的总量为3.0×106~6.0×106个细胞(n=6)。体视学计数表明,分离即刻,存活心肌细胞为(75.33±10.93)%;复钙后降至(50.17±4.96)%,与分离即刻具有非常显著性差别(P<0.01);静置4h后,存活心肌细胞为(40.67±5.79)%,与复钙后即刻的观测均值间无显著性差别(P>0.05);5.0Hz刺激5min后,存活心肌细胞进一步降低至(33.83±4.67)%,与复钙后即刻及静置4h的观测均值间均具有显著性差别(P<0.05)。
4)心肌细胞质量
采用0.4%台盼蓝排斥试验显示,长杆状心肌细胞均拒染,圆形细胞均被染成蓝色。90%以上的长杆状心肌细胞伸直舒展,细胞无明显搏动,呈现清晰的横纹,细胞膜表面光滑,两端边缘锐利(图3A、B、C、D),折光性较强(图3B)。恢复细胞外钙离子浓度至1.25mmol/L并静置4h后(图3B、C、D),心肌细胞仍能保持这些形态特征。但也有少量心肌细胞横纹模糊,细胞膜表面呈现密集小泡(图3E),或折光性较差,细胞呈透明状(图3F),有些则出现细胞两末端变圆变钝,甚至出现“菜花状”膨大(图3G),有些细胞弯曲或挛缩(图3H)。
5)心肌细胞缩短幅度:在1.0Hz刺激条件下,心肌细胞缩短的幅度为(9.72±0.43)%。2.0Hz刺激使心肌缩短幅度达到(11.28±0.43)%,与1.0Hz相比,两组间差别达显著水平(P<0.05)。在5.0Hz刺激下,心肌细胞缩短幅度进一步增加到(11.40±0.45)%,与1.0Hz相比,具有非常显著性差别(P<0.01)。
主要参考资料
[1] 儿科学辞典
[2] 成年小鼠心肌细胞分离技术
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