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CRISPR/Cas9 载体设计与构建的作用机理

发布日期:2020/2/1 11:46:39

背景及概述[1]

CRISPR/Cas9 (Clustered regulatory interspaced short palindromic repeats/ CRISPR-associated protein 9) 技术是最近发现的一种基因组靶向修饰技术。与之前的技术相比,CRISPR/Cas9技术是通过一段RNA来识别靶位点,因而在设计和构建上更加简单。迄今为止,CRISPR/Cas9技术已成功应用于肺炎链球菌Streptococcus pneumoniae、大肠杆菌Escherichia coli、芽殖酵母Saccharomyces cerevisiae、秀丽线虫Caenorhabditis elegans、果蝇Drosophilamelanogaster、斑马鱼Danio rerio、小鼠Mus musculus、大鼠Rattus norvegicus、拟南芥、玉米Zea mays、水稻和小麦Triticum aestivum以及包括iPS细胞在内的人体外培养细胞系等多个物种内源性基因的定点修饰。因此CRISPR/Cas9 载体设计与构建非常重要。

作用机理[1]

当外源DNA入侵细菌时,其CRISPR系统会特异性地捕获一段被称为proto-spacers的外源DNA序列插入到前导序列与间隔重复序列之间,并伴随一次重复片段的复制,这样就形成了一段新的重复单元,这些重复单元就是细菌特异性免疫的结构基础。需要注意的是,外源DNA的捕获并不是完全随机的,在这些被捕获的DNA序列下游常有一段序列保守的特殊结构,被称为PAM位点PAM位点的存在可能是CRISPR系统区分自身DNA与外源DNA而避免发生自身免疫的机制之一,同时也是基因编辑时靶序列选择的重要要求。之后,形成的重复单元会被转录形成前体CRISPR RNA (Pre-crRNA),在RNase Ⅲ的作用下成熟。成熟的crRNA与tracrRNA通过碱基配对形成双链RNA结构,并进一步与Cas9蛋白结合形成靶向切割复合体对外源DNA进行特异切割,达到识别和降解外源DNA的目的。

根据上述原理,只需合成定制的crRNA,将其插入到合适的质粒中,与分别表达tracrRNA和Cas9蛋白的质粒共转染细胞,或体外转录成RNA后注射到特定细胞中,就可以建立基因敲除的细胞系或动物模型。crRNA的作用是通过碱基配对识别基因组靶序列,而不需要像ZFN和TALEN那样构建复杂的识别蛋白,极大简化了试验流程。另外,与ZFN和TALEN技术中用到的FokⅠ不同的是,Cas9蛋白存在HNH和RuvC两个活性位点可以分别切割与crRNA互补的DNA链和非互补链,从而引入DSB,不需形成二聚体发挥作用,而且切割活性特别高。Jinek等[44]还发现,将crRNA:tracrRNA双链RNA结构改造成单链导向RNA (Single-guide RNA,sgRNA) 同样能够指导 Cas9蛋白特异切割双链DNA,这进一步提高了操作简便性

制备[2-3]

CRISPR/Cas9 载体设计与构建方法1:利用试剂盒快速方便地将gRNA 靶点序列插入到Cas9/gRNA 质粒中。构建好的Cas9/gRNA质粒能够同时表达植物密码子优化的Cas9 蛋白及gRNA,应用CRISPR 技术进行目标基因的敲除和编辑。

CRISPR/Cas9 载体设计与构建方法2:根据NtDXR 基因序列,利用在线工具ZiFiT Targeter Version4.2:选择合适的靶位点,筛选要求为:①靶位点主要包括20 个碱基,并且这20 个碱基后面是NGG(N 为任意碱基)3 个碱基的PAM 区(Protospacer adjacent motif,PAM);②靶位点尽量选择在基因编码区的前端。依据靶位点设计原则设计引物,上游引物DXR-K-F 为5'-GATTGGAGTGGGAT  TTCTGGTAAG-3',下游引物DXR-K-R 为5'-AAACCTTACCAGAAATCCCA CTCC-3'。靶位点DNA双链的退火反应体系:5×Annealing Buffer for DNA Oligos 4 μL,上下游引物各4 μL(50 μmol/μL),Nuclease-free water 补至20 μ L。反应程序:95 ℃ 5 min,每8 s 下降0.1℃,直至25 ℃(约90 min);4 ℃保存。将退火反应得到的产物连接到经Bsa I 酶切的CRISPR/Cas9载体pORE-Cas9/ gRNA上。连接体系:退火产物2μL,酶切产物3 μL,10×T4 DNA Ligase Buffer 2μL,T4 DNA Ligase(400 U/μL)1 μL,无菌水补至20 μL。连接产物转化Trans-T1受态细胞,筛选阳性克隆,用载体上的序列作为上游引物U26-jiance-F(5'-TTAGGTTTACCCGCCAATA-3')、目的基因上靶位点的反向互补序列为下游引物DXR-K-R(5'-AAACCTTACCAGAAATCCCACTCC-3')对菌斑进行菌落PCR。经1%琼脂糖凝胶电泳检测后,进行测序验证。

主要参考资料

[1] CRISPR/Cas9介导的基因编辑技术研究进展.

[2] 利用CRISPR/CAS9 技术编辑水稻香味基因Badh2

[3] 基于CRISPR/Cas9技术的烟草NtDXR基因敲除及功能分析

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