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柏氏血矛线虫PCR试剂盒的应用

发布日期:2023/12/11 8:41:44

背景[1-3]

柏氏血矛线虫PCR试剂盒是一种用于检测柏氏血矛线虫的生物试剂,采用PCR技术进行检测。

柏氏血矛线虫PCR试剂盒可用于科研实验等领域,适用于检测柏氏血矛线虫。它具有即开即用、方便快捷的特点,用户只需要提供样品RNA模板即可进行检测。

柏氏血矛线虫是一种常见的寄生虫,寄生于牛、羊等家畜的消化系统中,对家畜的健康和生产性能产生负面影响。因此,柏氏血矛线虫的检测对于畜牧业的发展和动物疾病的防治具有重要意义。

柏氏血矛线虫PCR试剂盒是一种用于检测柏氏血矛线虫DNA的PCR试剂盒。该试剂盒通常包括以下成分:

PCR反应液:包括PCR缓冲液、dNTPs、引物、Taq聚合酶等。

标准品:用于定量检测柏氏血矛线虫DNA的浓度。

阴性对照:用于排除假阳性结果的可能性。

阳性对照:用于确认试剂盒的准确性和可靠性。

使用柏氏血矛线虫PCR试剂盒时,首先需要提取样本中的DNA,然后将提取的DNA加入到PCR反应液中进行扩增。通过检测扩增产物的荧光信号强度,可以确定样本中是否存在柏氏血矛线虫DNA。该试剂盒具有灵敏度高、特异性强、操作简便等优点,适用于临床诊断和流行病学调查等领域。

柏氏血矛线虫.png

柏氏血矛线虫

柏氏血矛线虫PCR试剂盒的操作步骤如下:

1.样本采集:从患者体内采集血液、粪便、组织等样本,并将其保存在无菌容器中。

2.DNA提取:将采集到的样本进行DNA提取,通常采用柱式或磁珠式DNA提取试剂盒。提取后的DNA应保存在-20°C或更低的温度下。

3.PCR反应体系准备:根据试剂盒说明书的要求,配制PCR反应体系,包括引物、荧光探针、dNTPs、DNA聚合酶等。

4.PCR反应:将提取的DNA加入到PCR反应体系中,进行PCR反应。反应条件和时间根据试剂盒说明书的要求进行设置。

5.结果分析:将PCR反应后的产物进行荧光信号检测,根据荧光信号的出现情况判断是否存在柏氏血矛线虫的感染。

应用[4-5]

柏氏血矛线虫PCR试剂盒可以用于羊捻转血矛线虫ITS基因序列分析及其虫卵PCR检测方法的建立

拟采用柏氏血矛线虫PCR试剂盒PCR技术,对陕西地区捻转血矛线虫分离株的内部转录间隔区(internal transcribed spacer,ITS)基因序列进行扩增、测序和分析,以了解ITS基因的遗传变异情况;根据捻转血矛线虫ITS2基因特点,设计特异性引物并对退火温度进行优化建立粪便虫卵PCR检测方法,将所建立柏氏血矛线虫PCR试剂盒PCR应用于临床奶山羊粪便样品中捻转血矛线虫卵的检测,并与粪便镜检结果进行对比,获得以下结果:

1. 对采自陕西咸阳地区不同年份的44株捻转血矛线虫分离株,进行ITS基因位点的扩增、测序和分析。结果显示,捻转血矛线虫ITS1的长度为400或404 bp、种内变异率为0.0~3.6%,共27个类型,将其与参考序列比对发现存在16个碱基突变位点,ITS2的长度为231bp,种内变异率为0.0~6.9%,共20个基因类型,与参考序列比对发现共15个碱基突变位点。结果表明,陕西咸阳地区2015—2020年之间的羊捻转血矛线虫的ITS rDNA序列的种内变异率较小,且尚未出现种群的分化。种系发育进化树结果显示各国的分离株进化关系较近,且同一地区的不同分离株未汇聚在同一枝,初步分析表明,捻转血矛线虫的ITS基因的变异情况与不同的地理条件之间的相关性不明显,世界各地的捻转血矛线虫分离株之间存在较高的基因相似度。

2.基于特异性引物对(Hc.F、Hc.R)建立的柏氏血矛线虫PCR试剂盒PCR检测方法的特异性良好,能将捻转血矛线虫卵同其他常见线虫卵(细颈线虫、似血矛线虫、兰式毛尾线虫、尖尾线虫、网尾线虫、夏伯特线虫、蛇形毛圆线虫、粗纹食道口线虫、绵羊毛尾线虫等)特异性区分。PCR反应的最佳退火温度为53℃。在DNA模板含量较低(0.298 pg)时,仍能检出,表明其具有较高的灵敏性。85份奶山羊粪便样品,经粪便镜检共检出23份捻转血矛线虫阳性粪样(27.06%,23/85),利用特异性PCR镜检共检出38份捻转血矛线虫阳性粪样(44.71%,38/85),且镜检和PCR方法诊断结果一致性一般(Kappa=0.530)。综上所述,陕西咸阳地区的羊捻转血矛线虫的ITS rDNA基因序列的遗传进化程度较低。所建立的分子生物学方法能准确地将捻转血矛线虫卵从粪便样品中检测出,为临床检测捻转血矛线虫病提供了一种诊断方法。

参考文献

[1]Prevalence and seasonal variation of gastrointestinal nematodes and coccidia infecting ovine grazing on communal rangelands in the Eastern Cape,South Africa[J].Mlungisi S.Jansen;Nkululeko Nyangiwe;Mandla Yawa;Mzwethu Dastile;Vuyiswa Mabhece;Voster Muchenje;Thando C.Mpendulo.Parasitology Research,2020

[2]Helminth infections of great concern among cattle in Nigeria:Insight to its prevalence,species diversity,patterns of infections and risk factors.[J].Ola-Fadunsin Shola David;;Ganiyu Isau Aremu;;Rabiu Musa;;Hussain Karimat;;Sanda Idiat Modupe;;Baba Alhassan Yunusa;;Furo Nathan Ahmadu;;Balogun Rashidat Bolanle.Veterinary world,2020

[3]Vulvar flap morphology of Haemonchus contortus in naturally infected slaughtered goats in Northern area of Bangladesh[J].Nahar L.;Sarder M.J.U.;Rahman M.;Begum M.I.A.;Rahman S..Bangladesh Journal of Veterinary Medicine,2020

[4]Development and field evaluation of a species-specific mt-COI targeted SYBR-Green Real Time PCR for detection and quantification of Haemonchus contortus in cattle in Turkey[J].Onder Duzlu;;Alparslan Yildirim;;Gamze Yetismis;;Zuhal Onder;;Emrah Simsek;;Arif Ciloglu;;Gozde Sahingoz Demirpolat;;Abdullah Inci.Veterinary Parasitology,2020(C)

[5]邹敏.羊捻转血矛线虫ITS基因序列分析及其虫卵PCR检测方法的建立[D].西北农林科技大学,2022.

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