鸡败血支原体PCR试剂盒的应用

背景^[1-3]

鸡败血支原体PCR试剂盒是一种用于检测鸡败血支原体的PCR(聚合酶链式反应)试剂盒。鸡败血支原体是一种常见的细菌病原体，可引起鸡的呼吸道、肠道和生殖系统感染，导致严重的经济损失。

该试剂盒通过PCR技术检测鸡败血支原体的DNA，具有高灵敏度和特异性。使用时，首先需要提取鸡样本中的DNA，然后将提取的DNA加入到PCR反应体系中进行扩增和检测。如果样本中存在鸡败血支原体的DNA，则会显示出阳性结果。

鸡败血支原体PCR试剂盒广泛应用于家禽养殖业中，可以帮助养殖户及时发现和控制鸡败血支原体感染，减少疾病的传播和损失。同时，该试剂盒也可以用于科学研究中，帮助研究人员深入了解鸡败血支原体的生物学特性和致病机制。

鸡败血支原体PCR试剂盒

鸡败血支原体PCR试剂盒是一种用于检测鸡败血支原体的实验工具。试剂盒具有以下特点：

即开即用，用户只需要提供DNA模板。

引物经过精心优化，专一性强，只扩增鸡败血支原体，与其他病原没有交叉反应。

提供阳性对照，便于区分假阴性样品。

PCR mix中含上样染料，PCR后可以直接上样电泳。

鸡败血支原体PCR试剂盒的操作步骤如下：

1.样本采集：从患者体内采集血液、粪便、组织等样本，并将其保存在无菌容器中。

2.DNA提取：将采集到的样本进行DNA提取，通常采用柱式或磁珠式DNA提取试剂盒。提取后的DNA应保存在-20°C或更低的温度下。

3.PCR反应体系准备：根据试剂盒说明书的要求，配制PCR反应体系，包括引物、荧光探针、dNTPs、DNA聚合酶等。

4.PCR反应：将提取的DNA加入到PCR反应体系中，进行PCR反应。反应条件和时间根据试剂盒说明书的要求进行设置。

5.结果分析：将PCR反应后的产物进行荧光信号检测，根据荧光信号的出现情况判断是否存在鸡败血支原体的感染。

应用^[4-5]

鸡败血支原体PCR试剂盒可以用于鸡败血支原体黏附素GapA的表达及基因靶向载体的构建

鸡败血支原体(Mycoplasma gallisepticum,MG)能引起鸡及其它禽类的慢性呼吸道疾病(Chronic respiratory disease,CRD)和火鸡传染性窦炎(Infectious sinusitis),该病广泛分布于世界上所有养禽的国家,且常继发或并发新城疫、传染性支气管炎等其他呼吸道传染病,造成巨大的经济损失。MG感染和寄生最重要的步骤是牢固地黏附在呼吸道黏膜固有层。因此,为了深入研究MG致病机制,本研究对MG主要黏附素GapA的相关免疫特性进行探索,并成功构建MG通用型转座载体和oriC可复制型载体用于MG基因靶向缺失研究。

1鸡败血支原体强弱毒株gapA基因的克隆及序列测定本研究通过鸡败血支原体PCR试剂盒RT-PCR和PCR扩增MG不同毒力毒株的gapA基因N端序列,测定各基因片段序列,并比较其在转录水平、翻译水平和序列之间的差异性。

结果表明:gapA基因存在于一个大型的mRNA转录产物中,与licA、mgc2、crmA三个基因同在一个基因簇中;不同毒株之间,gapA基因N端存在明显的差异,GapA的90～290aa之间即为GapA的高变区。而对于Rhigh,常出现在多个位置插入有单一“A”的现象,如:第105位、385位和910位,导致随后的基因序列移码成TAA终止子,致使翻译提前终止;而对于ts-11株,gapA N端的第142nt处由“C”突变为“A”,形成TAA密码子,致使翻译提前终止。而强毒株Rlow、S6、DC9604和弱毒株F、6/85均能编码gapA基因全长,编码大约110～120kD左右的蛋白。这几个毒株之间的区别在于:GapA的N端100300aa之间存在高变区。这为GapA的表达和抗体制备奠定了基础。

2鸡败血支原体Rlow株GapA氨基端(GapAN)的高效表达本研究通过鸡败血支原体PCR试剂盒PCR扩增GapA蛋白N端多肽(98322aa)(GapAN)和C端(882aa-1115aa),分别连入pGEX-6P-1载体,转化BL21(DE3),经IPTG诱导,结果发现GapAN获得高效表达;而GapA C端未能成功表达。将GapAN亚克隆入pFAST-Bac1载体中,转座DH10Bac细菌,通过转染Sf9细胞,获得GapAN的重组杆状病毒。抗GapAN的多抗利用IFA检测,结果显示:GapAN成功地在杆状病毒中高效表达。

参考文献

[1]Genetic and antigenic characterization of the surface lipoprotein P48 of Mycoplasma bovis.Patrizia Robino;;Alberto Alberti;;Marco Pittau;;Bernardo Chessa;;Marco Miciletta;;Patrizia Nebbia;;Dominique Le Grand;;Sergio Rosati.Veterinary Microbiology,2005

[2]Construction of Mini-Tn 4001 tet and Its Use in Mycoplasma gallisepticum.Ina Pour-El;;Cary Adams;;F.Chris Minion.Plasmid,2002

[3]Construction and Analysis of a Modified Tn 4001 Conferring Chloramphenicol Resistance in Mycoplasma pneumoniae.Tae-wook Hahn;;Elizabeth A.Mothershed;;Robert H.Waldo;;Duncan C.Krause.Plasmid,1999

[4]Isolation and characterization of transposon Tn 4001-generated,cytadherence-deficient transformants of Mycoplasma pneumoniae and Mycoplasma genitalium.Shanker P.Reddy;;Wanda G.Rasmussen;;Joel B.Baseman.FEMS Immunology and Medical Microbiology,1996

[5]赵春梅.鸡败血支原体黏附素GapA的表达及基因靶向载体的构建[D].扬州大学,2009.